Cuestionario de inmunologia clinica

¿Qué es un antígeno?. Sustancia que inhibe la respuesta inmune. Sustancia que desencadena una respuesta inmune.

¿Qué es un epítopo?. Región del antígeno reconocida por el anticuerpo. Región del anticuerpo que se une a la célula.

¿Qué son los anticuerpos?. Lípidos que destruyen bacterias. Glicoproteínas producidas por estimulación antigénica.

¿Cuál inmunoglobulina puede cruzar la placenta?. IgG. IgM.

¿Cuál inmunoglobulina predomina en mucosas?. IgE. IgA.

¿Qué inmunoglobulina actúa principalmente en respuestas tempranas?. IgM. IgD.

¿Qué significa “valencia” en inmunoglobulinas?. Tipo de enlace químico. Número de sitios de unión al antígeno.

¿Cuántos sitios de unión tiene un anticuerpo monomérico?. 1. 2.

La reacción antígeno-anticuerpo ocurre en: Dos etapas. Una sola etapa.

La primera etapa de la reacción Ag-Ab es: Manifestación visible. Interacción fisicoquímica.

Una característica de la interacción Ag-Ab es: Rápida y reversible. Lenta e irreversible.

¿Qué tipo de enlaces predominan en la interacción Ag-Ab?. No covalentes de baja energía. Covalentes fuertes.

¿Qué es afinidad?. Fuerza total de múltiples uniones. Fuerza de unión en un solo sitio Ag-Ab.

¿Qué es avidez?. Fuerza total de múltiples uniones. Unión débil de un solo sitio.

La reacción cruzada ocurre cuando: El anticuerpo reacciona con un antígeno diferente pero similar. El anticuerpo solo reconoce su antígeno original.

En la precipitación, el antígeno es: Soluble. Particulado.

La zona donde Ag y Ab están en concentración equivalente se llama: Prozona. Zona de equivalencia.

La aglutinación ocurre con: Antígenos solubles. Antígenos particulados.

¿Qué inmunoglobulina es mejor aglutinador?. IgM. IgG.

En la fijación del complemento, si hay unión Ag-Ab: Se produce hemólisis. No ocurre ningún cambio.

ELISA utiliza principalmente: Anticuerpos radiactivos. Anticuerpos unidos a enzimas.

ELISA permite detectar: Sustancias solubles como proteínas o anticuerpos. Solo células completas.

Western blot permite: Medir tamaño celular. Detectar proteínas por peso molecular.

La inmunofluorescencia utiliza: Anticuerpos con fluoróforos. Enzimas.

La citometría de flujo permite analizar: Características físicas y químicas de células individuales. Solo líquidos.

¿En qué consiste la técnica de precipitación?. Formación de complejos insolubles entre antígenos solubles y anticuerpos. Unión de células completas.

¿En qué consiste la técnica de aglutinación?. Formación de agregados visibles con antígenos particulados. Reacción con antígenos solubles.

¿Qué significa ELISA?. Ensayo de fluorescencia celular. Ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas.

¿Qué permite el ELISA?. Cuantificar moléculas como proteínas o anticuerpos. Medir únicamente células.

¿Cuál es un componente esencial del ELISA?. Anticuerpo sin especificidad. Anticuerpo conjugado a una enzima.

En ELISA directo: El anticuerpo primario está marcado con enzima. Se usa anticuerpo secundario.

El ELISA directo es: Más rápido y simple. Más complejo que el indirecto.

Una desventaja del ELISA directo es: Alta amplificación de señal. Menor sensibilidad por falta de amplificación.

La alta sensibilidad del ELISA indirecto se debe a: La amplificación de señal por la unión de múltiples anticuerpos secundarios. La unión única del anticuerpo primario sin amplificación.

Una limitación del ELISA indirecto es: La ausencia total de interacción entre anticuerpos. La posible reactividad cruzada del anticuerpo secundario que genera señal inespecífica.

El ELISA sándwich se basa en: La captura del antígeno entre dos anticuerpos específicos dirigidos contra él. La unión de un solo anticuerpo directamente al antígeno sin detección adicional.

La alta especificidad del ELISA sándwich se debe a: El reconocimiento del antígeno por un único anticuerpo de baja afinidad. El reconocimiento del antígeno por dos anticuerpos distintos.

Una limitación del ELISA sándwich es que: El antígeno debe permitir la unión simultánea de dos anticuerpos. El antígeno solo puede unirse a un anticuerpo en cualquier condición.

El Western blot permite: Detectar proteínas directamente sin necesidad de separación previa. Detectar proteínas específicas tras su separación por peso molecular y carga eléctrica.

La electroforesis en Western blot tiene como objetivo: Fijar proteínas directamente en la membrana sin separación. Separar proteínas según su tamaño antes de su detección inmunológica.

El SDS en Western blot: Desnaturaliza proteínas y les confiere carga negativa para su separación por peso molecular. Mantiene la estructura tridimensional de las proteínas sin modificar su carga.

La transferencia en Western blot consiste en: Eliminar proteínas del gel para su análisis directo. Mover proteínas del gel a una membrana conservando su patrón de separación.

La inmunodetección en Western blot se realiza mediante: Reactivos inespecíficos sin reconocimiento antigénico. Anticuerpos específicos que reconocen la proteína de interés.

La inmunofluorescencia permite: Visualizar proteínas en su contexto celular mediante anticuerpos con fluorocromos. Detectar proteínas únicamente por cambios de color sin fluorescencia.

En inmunofluorescencia indirecta: El anticuerpo secundario marcado reconoce al anticuerpo primario no marcado. El anticuerpo primario está directamente conjugado al fluorocromo.

La mayor sensibilidad de la inmunofluorescencia indirecta se debe a: La ausencia de anticuerpos secundarios. La amplificación de señal mediante anticuerpos secundarios.

El fotoblanqueo se refiere a: El aumento de fluorescencia por exposición a la luz. La pérdida de fluorescencia por exposición prolongada a la luz.

La inmunohistoquímica se utiliza para: Detectar únicamente células en suspensión sin tejido. Detectar antígenos en tejidos mediante reacciones inmunoenzimáticas.

En el método inmunohistoquímico indirecto: Se amplifica la señal mediante capas sucesivas de anticuerpos o marcadores. Se utiliza un solo anticuerpo sin amplificación.

La citometría de flujo permite: Analizar múltiples características celulares simultáneamente en células en suspensión. Analizar únicamente una característica celular en tejidos sólidos.

El parámetro FSC en citometría de flujo indica: La granularidad celular mediante dispersión lateral. El tamaño celular mediante la dispersión frontal de la luz.

El sistema de fluidos en el citómetro: Mezcla las células de forma aleatoria para su análisis simultáneo. Alinea las células para que pasen individualmente por el haz de luz.

El sistema óptico del citómetro: Ilumina las células y dirige la luz dispersada hacia detectores. Solo transporta las células sin interacción con la luz.

El sistema electrónico del citómetro: Convierte señales luminosas en señales eléctricas analizables. Genera la fluorescencia en las células.

Los anticuerpos monoclonales en citometría de flujo: Se unen de forma inespecífica a cualquier célula. Se unen a antígenos específicos y permiten identificar poblaciones celulares.

Una ventaja de la citometría de flujo es: Permite analizar rápidamente un gran número de células individuales. Solo permite analizar pocas células por muestra.