Inmunodiagnóstico

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente: Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Durante la separación de células sanguíneas en gradiente de Ficoll, ¿Qué ocurre cuando las células dejan de moverse a lo largo del gradiente?. La densidad de la célula es menor que la del entorno. La densidad de la célula es mayor que la del entorno. La densidad de la célula es la misma que la del entorno.

Prueba donde se utilizan micropartículas marcadas con proteínas HLA y anticuerpos marcados fluorescentemente: Microlinfocitotoxicidad. Elisa. Luminex.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías la capacidad de fagocitosis: Incubando las células junto con células diana a las que previamente se les había tratado con sustancias radioactivas. Colocando las células en una cámara superior separada de otra mediante un filtro con poros que presenta sustancias que las atraen. Incubando las células con latex y NAT.

En la prueba de diagnóstico de la tuberculosis: Uno de los test mas usados es el de Sabin-Feldman. La prueba es positiva si el infiltrado supera los 5 mm de diámetro. El diámetro de la induración es directamente proporcional a la hipersensibilidad del paciente.

Señala la afirmación correcta relacionada con un cultivo celular primario: Se puede obtener de un explante primario. Se puede obtener de suspensiones de células disgregadas. Ambas opciones son correctas.

Componente del citómetro de flujo que generan pulsos eléctricos cuando la célula pasa enfrente del rayo luminoso: Amplificador. Detectores. Fuente de luz.

En un ensayo luminex dos pacientes son compatibles para realizar un transplante cuando: Se obtiene radioactividad. Se obtiene fluorescencia. No se obtiene fluorescencia.

Prueba de diagnóstico in vitro: Determinación de la IgE total. Prueba de liberación de marcadores. Todas son correctas.

Prueba en la que se le coloca una gota del alérgeno al paciente y posteriormente se realiza una punción atravesando la gota: Determinación de la IgE total. Método intradérmico. Método de punción.

Tratamiento para analizar mediante citometría de flujo células de un tumor sólido: Obtener una suspensión celular empleando detergentes. Lisar el tumor empleando agua destilada. Realizar una suspensión celular empleanto técnicas enzimáticas.

Las inmunodeficiencias primarias: Son producidas por el VIH. Son aquellas que han sido provocadas por unas patologías adquiridas. Son consecuencia de defectos hereditarios en el sistema inmunológico.

En el proceso de cuantificación de subpoblaciones de linfocitos B se utilizan anticuerpos monoclonales: Anti-CD25. Anti-CD19. Anti-CD3.

El tipaje de los antígenos de histocompatibilidad es fundamental en el: Trasplante de órganos y tejidos. Ambas respuestas son correctas. Conocimiento e identificación de poblaciones celulares.

Conjunto de proteínas plasmáticas capaces de activarse frente a determinados estímulos en forma de cascada y que forma parte de la inmunidad inespecífica del organismo: Complejo mayor de histocompatibilidad. Sistema del antígeno leucocitario humano (HLA). Sistema del complemento.

Linfocitos T colaboradores: Células CD4. Células CD8. Células CD34.

Técnica de separación basada en una prueba funcional: Microlinfocitotoxicidad. Separación basada en marcadores de membrana. Estimulación blástica.

Acción final del sistema del complemento: Reconocimiento de microorganismo. Reconocimiento de complejos antígeno-antiuerpo. Ataque lítico de las membranas celulares extrañas.

Prueba en la que se le inyecta al paciente directamente el alérgeno a testar: Prueba de liberación de marcadores. Método mediante micromatrices. Prueba intradérmica.

En la citometría de flujo: Se procede al recuento de células en un soporte sólido. Las células pasan por un haz de luz láser que nos proporciona información del volumen celular y el contenido citoplasmático. Los anticuerpos monoclonales están marcados con un sustrato colorimétrico.

Método de roseta E: Técnica de separación basada en los antígenos de membrana. Técnica de separación basada en marcadores y receptores de membrana. Técnica de separación basada en pruebas funcionales.

Sustancia que se emplea para activar la respuesta proliferativa in vitro de los linfocitos T: Aloantígenos. Mitógenos. Todas las respuestas son correctas.

Técnica empleada para la tipificación serológica de proteínas HLA: Separación magnética. Cultivo de leucocitos. Microlinfocitotoxicidad.

Tipo de inmunodeficiencia que afecta principalmente a los linfocitos T: Secundaria. Humoral. Celular.

La creación “in vitro” de tejidos u órganos que sean completamente funcionales y que puedan ser usados posteriormente en trasplantes se realiza en: Explantes primarios. Cultivos histotípicos y organotípicos. Cultivos en suspensión.

Técnica que mide la expresión de una proteína de membrana de los basófilos usando dos tipos de anticuerpos y el citómetro de flujo: Test de transformación linfoblástica. Prueba de liberación de marcadores. Prueba de activación de basófilos.

Los HLA tipo I se encuentran: Hematíes. Membrana de todas las células nucleadas. Ambas respuestas son correctas.

Finalidad de la técnica en la que se enfrenta un linfocito T CD8 a una célula blanco con cromo en su interior: Separar linfocitos T de eritrocitos y plaquetas. Tipificación serológica de antígenos. Determinar la actividad citotóxica de los linfocitos T.

Parte del citómetro de flujo que permite que las células pasen de una en una a través del rayo de luz: Sistema de inyección. Fuente de luz. Cámara de flujo.

Un extracto de planta puede utilizarse como: Aloantígeno. Autoantígeno. Mitógeno.

Células que presentan la proteína CD3 y CD8+: Linfocito B. Linfocito T helper. Linfocito T citotóxico.

El ensayo de la linfolisis mediada por células: A mayor cantidad de Cromo 51 liberado, mayor actividad citotóxica. Permite valorar la funcionalidad de los linfocitos T CD8. Ambas respuestas son correctas.

Técnica sustituida en la actualidad por el citómetro de flujo que separa poblaciones de linfocitos T utilizando eritrocitos de carnero: Estimulación blástica. Hibridación con sondas específicas de secuencia. Método de Roseta E.

Característica de las células tumorales: Son células genéticamente estables. Dejan de crecer debido al proceso de senescencia. Son inmortales.

Prueba en la que se captura la IgE presente en el suero del paciente en una fase sólida. Posteriormente se utiliza un anticuerpo secundario anti-IgE marcado: Ambas respuestas son correctas. Determinación de la IgE específica. Determinación de la IgE total.

Hipersensibilidad producida cuando los anticuerpos se unen a los antígenos presentes en la superficie celular: Hipersensibilidad tipo I. Hipersensibilidad tipo II. Hipersensibilidad tipo III.

A la hora de realizar un estudio de histocompatibilidad, a veces es conveniente realizar la separación de linfocitos B y T. ¿Con cual de las siguientes opciones podrías realizarlo?: Inmunohistoquímica. En base a los antígenos de membrana. Todas las opciones son correctas.

Característica de una línea celular: Se obtienen por transformación. El número de generaciones obtenidas es ilimitado. Tienen una vida finita.

La hipersensibilidad tipo III puede deberse a la unión: De alérgenos a las IgE de los basófilos. De autoantígenos endógenos y los autoanticuerpos. De los anticuerpos a los antígenos de la superficie celular.

Prueba de proliferación in vitro para el diagnóstico de alergias: Utilizada en reacciones alérgicas inmediatas. Mide la capacidad funcional de proliferar que tienen los linfocitos T frente a un estímulo inducido por un antígeno. Los basófilos sensibilizados expresan una alta densidad de CD63 sobre su superficie Retroalimentación.

¿Qué ocurre cuando un cultivo de células NO tumorales alcanza el estado de confluencia?: Las células siguen creciendo formando una doble capa. Una célula crece tanto que ocupa toda la superficie del soporte. se detiene el crecimiento y se require el subcultivo de la misma.

Dos pacientes son compatibles para realizar un transplantes cuando en la prueba de cultivo mixto de leucocitos: No se obtiene fluorescencia. Se obtiene radioactividad. No se obtiene radioactividad.

El cultivo celular primario se obtiene a partir de: Explantes primarios. Ambas respuestas son correctas. Suspensiones celulares disgregadas.

Número de exposiciones requeridas con el alérgeno para desarrollar hipersensibilidad de tipo I: 3. 1. 2.

En el estudio de la linfolisis mediada por células (CML), ¿qué indica una mayor cantidad de cromo radioactivo? : Ninguna de las opciones es correcta. La incorporación del cromo al ADN de los nuevos linfocitos. La destrucción de las células diana debido a una alta actividad citotóxica de los linfocitos.

En los cultivos celulares: Todas las células presentan la misma tasa de crecimiento. El número de subcultivos que se pueden realizar antes de que el cultivo muera es independiente del tipo celular. Ninguna opción es correcta.

Utilizando el método de detección de anticuerpos citotóxicos, que resultado debe de salir cuando el transplante ha sido exitoso: No aparecen células marcadas fluorescentemente. Aparecen células teñidas. No aparecen células teñidas.

Prueba de diganóstico in vivo: Determinación de la triptasa. Pruebas de liberación de marcadores. Método intradérmico.

Técnica donde se emplea una superficie de plástico con diferentes anticuerpos que reconocerán marcadores específicos de linfotitos: Inmunohistoquímica. Método Roseta E. Panning.

¿Cuántos sistemas de dispersión de luz tiene un citómetro de flujo?: 3. 4. 2.

Tratamiento para analizar mediante citometría de flujo células nucleadas de sangre: Incubar las células con anticuerpos primarios marcados con un fluorocromo. Realizar una disgregación mecánica y añadir detergentes. Lisar los eritrocitos con agua destilada.

Técnica de Terasaki: Método de microlinfocitotoxicidad. Ambas respuestas son correctas. Técnica sencilla para llevar a cabo la determinación de los antígenos HLA-A, HLA-B y HLA-C.

Molécula que se analiza en la prueba de liberación de marcadores: Anti-IgE. Vasopresina. Histamina.

En la determinación de la IgE total: La obtención de un valor normal de IgE en suero es indicativo de ausencia de alergia. La obtención de un valor normal de Ig E en suero no es indicativo de ausencia de alergia. Se puede determinar con exactitud la presencia de alergia dada su gran especificidad.

Problemática que puede ocurrir durante un transplante de órganos: Alo-transfusión. Alo-inmunización. Alo-reconocimiento.

Conjunto de proteínas humanas presente en la superficie de las células utilizadas por el sistema inmune para determinar si son células extrañas o propias: CHM. DRB. HLA.

Pruebas diagnósticas in vivo. Método intradérmico: Se suministra el alérgeno de forma intracutánea mediante el empleo de una aguja de 8 mm, con la que se va a inyectar la disolución que contiene dicho alérgeno. La prueba se suele leer a los 50-60 minutos. Ambas son correctas.

Cómo se determina la representación de los datos de un citómetro de flujo donde se enfrentan dos señales y se representa mediante puntos: Tabla. Histograma de frecuencias. Escategrama.

Tratamiento para analizar los núcleos de células tumorales: Realizar una suspensión celular por medio de enzimas. Lisar las células tumorales con agua destilada. Disgregación mecánina y empleo de detergentes.

Tipo de inmunodeficiencia ocasionada por otras enfermedades como el SIDA: Celular. Humoral. Primaria.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:101. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:100. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:99. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:88. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:77. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:55. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:44. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:33. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:22. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:11. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:61. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:7. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:8. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:9. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:1. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:2. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:3. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente:4. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente5. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.

Con cuál de las siguientes técnicas analizarías el funcionamiento del sistema del complemento de un paciente6. Separación por gradiente de Ficoll y cuantificación en cámara de Neubauer. Espectofotometría. Método CH50.