PREGUNTAS BLOQUE 3 BM (ROSA LEÓN UHU)

La rotura celular por choque osmótico. Puede aplicarse a células vegetales. Rompe los enlaces b-1-4 de los péptido glucanos. Se basa en añadir grandes cantidades de sal a la suspensión celular. Se basa en añadir detergentes a la suspensión celular. Todas las demás respuestas son falsas.

La lisozima. Es una enzima abundante en lágrimas y saliva. Se utiliza para la lisis de células bacterianas. Rompe los enlaces b-1-4 de los péptido glucanos. Todas las demás respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

Si a un extracto celular acuoso le añadimos un volumen de Fenol:cloroformo y mezclamos. El ADN se extraerá a la fase orgánica. El ADN se extraerá a la fase acuosa. El ADN permanecerá en la interfase. Todas las demás respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

El aislamiento del ARN. Es mucho más fácil que el aislamiento de ADN. Es delicado por la abundancia de ARNasa en el interior celular y el ambiente. Implica el autoclavado de todo el material para incactivar las ARNasas. Todas las demás respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

En una electroforesis en gel, los fragmentos de ADN. Migrarán hacia el electrodo negativo. Nunca se separarán. Migrarán más despacio a mayor voltaje aplicado. Migrarán hacia el electrodo positivo. Todas son falsas.

Para poder visualizar el resultado de una electroforesis en gel, se suele utilizar como agente intercalante. Agarosa. Poliacrilamida. Bromuro de etidio. Todas las respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

El buffer de carga. Se utiliza como agente intercalante para visualizar el resultado de la electroforesis. Se utiliza para poder estimar de forma absoluta el tamaño de los amplicones generados por PCR. Se añade al gel durante su preparación. Añade densidad a la muestra y permite visualizar el frente de electroforesis. Todas las demás respuestas son falsas.

En cuanto al tampón de electroforesis. a) Habitualmente suele utilizarse como tampón agua destilada. b) Sirve para conducir la electricidad y para controlar el pH. c) Suele utilizarse TBE o TAE. d) b y c son correctas. e) Todas las demás respuestas son falsas.

Los geles de agarosa. Tienen mayor resolución y son más tóxicos que los de poliacrilamida. Suelen utilizarse para separar proteínas. Permiten separar fragmentos de ADN de distinto peso molecular empleando para ello distintas concentraciones de agarosa. Todas las respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

En una electroforesis en gel de agarosa, los fragmentos de ADN más grandes migrarán. a) Más rápido que los fragmentos más pequeños. b) A la misma velocidad que los fragmentos más pequeños. c) Más despacio que los fragmentos más pequeños. c) a) y b) son correctas. d) Todas las demás respuestas son falsas.

Utilizar un marcador de pesos moleculares en una electroforesis en gel, es útil para. Poder visualizar bajo luz ultravioleta el resultado de la electroforesis. Poder estimar el tamaño de las moléculas separadas. Aumentar la densidad de la muestra y visualizar el frente de la electroforesis. Todas las respuestas son correctas. Todas las demás respuestas son falsas.

En una electroforesis en gel de agarosa, las moléculas de ADN se separan en función de su. Carga y tamaño. Carga. Tamaño. Una electroforesis no permite separar fragmentos de ADN. Todas las demás respuestas son falsas.

Has medido la absorbancia de una muestra de ADN a una longitud de onda de 260 nm, obteniendo un valor de 0.85. La muestra fue diluida 20 veces antes de la medición. Sabes que el coeficiente de extinción molar del ADN a 260 nm es de 0.02 (µg/mL)-1 cm-1 (OD = 50 µg/mL para ADN de doble cadena). ¿Cuál es la concentración de ADN en la muestra original (antes de la dilución)?. a) 42.5 ng/microL. b) 42.5 micro g/mL. c) 850 ng/microL. d) 850 micro g/mL. e) a) y b) son verdaderas. f) c) y d) son verdaderas.

Las enzimas de restricción tipo II. a) Tienen actividad de restricción y de metilación. b) Reconocen secuencias específicas y hacen el corte de la doble cadena de ADN en la secuencia diana. c) Reconocen y metilan la misma secuencia diana específica de reconocimiento. d) Reconocen secuencias específicas e hidrolizan el ADN en sitios: distanciados hasta 1000 pb de las secuencias de reconocimiento. e) a) y b) son ciertas.

Los isoesquizómeros. a) Son endonucleasas de restricción que cortan por el mismo punto al ADN. b) Son enzimas de restricción que generan fragmentos con extremos romos. c) Reconocen la misma secuencia diana. d) Reconocen la misma secuencia diana y cortan por el mismo punto. e) C) y d) son ciertas.

Durante la obtención del ADN complementario por retrotranscripción a partir de ARN, hay un paso en el que se utiliza una enzima para eliminar el ARN del híbrido ADN/ARN formado. Qué enzima utilizarías. DNAase I. ARNase H. ARNase A. EcoRI. Ninguna es correcta.

El denominado fragmento klenow se obtiene mediante la digestión proteolítica de la ADN pol I de E. coli (103 Kd) con tripsina. De las tres actividades de la poli que actividad o actividades son las retenidas por el en fragmento Klenow. Solo actividad polimerasa 5’→ 3’. exonucleasa 3’→ 5’ o actividad correctora de fallos. actividad polimerasa 5’→ 3’ y exonucleasa 5’→3’. actividad polimerasa 5’→ 3’ y exonucleasa 3’→5’. actividad polimerasa 3’→ 5’ y exonucleasa 5’→3’.

La estabilidad de los híbridos de ácidos nucleicos. Aumenta al aumentar la temperatura. Aumenta al disminuir la concentración salina. Es mayor en fragmentos cortos que largos. Es mayor en fragmentos con alto contenido A+T. Todas las demás respuestas son falsas.

Para el marcaje interno de las sondas de ADN. Puede usarse DNAasaI para introducir mellas que se rellenaraán nucleótidos marcados. Puede usarse la técnica denominada Nick translation. Se utiliza marcaje enzimático. Se incorporan nucleótidos con grupos marcadores. Todas las respuestas anteriores son correctas.

En la técnica Western Blot. Hay que desnaturalizar la muestra mediante un tratamiento con alcali. Las proteínas son transferidas a una membrana de nitrocelulosa. Se utiliza para detectar ADN. Todas son verdaderas. Todas son falsas.

Para obtener información sobre el nivel de expresión de los genes técnica de blotting más adecuada es: Dot blot. Nortern blot. Southern blot. Todas las respuestas anteriores son falsas. Todas las respuestas anteriores son correctas.

La técnica FISH. Es una técnica de hibridación en fase sólida. Se utiliza para identificar especies de pescado. Es una técnica de hibridación in situ. Todas las respuestas anteriores son falsas. Todas las respuestas anteriores son correctas.

La fibrosis quística es una enfermedad autosómica recesiva, que reduce la esperanza de vida de quienes la padecen a seis meses en los países más pobres y a unos 35 años en los más ricos. El mapa de restricción de EcoRI (R) en los alelos silvestre y mutante del gen de la fibrosis quística se muestra en la Figura. Se obtuvieron muestras de ADN de un feto (F) y sus padres (M y P), que fueron sometidas a una electroforesis en gel de agarosa seguida de una transferencia a membrana por el método de Southern. La membrana fue hibridada con una sonda FQ marcada radiactivamente, obteniéndose la autorradiografía de la Figura. ¿Padecerá el feto la enfermedad?. No, pero será portador. Si porque sus progenitores también la padecen. No, aunque sus progenitores si la padecen. Si, porque sus progenitores son portadores. No, aunque sus progenitores si la padecen.

Viendo este gel de agarosa, correspondiente a la separación electroforética de los fragmentos obtenidos tras la digestión de un plásmido con varias enzimas de restricción. ¿podrías indicar el número de sitios de restricción que tiene el plásmido para cada una de las enzimas?. 4 para ambas enzimas. 4 para EcoRI y 3 para HindIII. 3 para EcoRI y 3 para HindIII. 3 para EcoRI y 4 para HindIII. Ninguna es correcta.

La mutación responsable de la anemia falciforme destruye una diana de restricción y puede detectarse por RFLP. Si usamos una sonda que hibrida con el fragmento señalado en la figura en color morado. ¿Qué bandas obtendrías en un estudio mediante Southern de ese polifmorfismo en el caso de individuos homozigóticos y hetercigóticos con esta esta mutación?. Una banda de 0.2 Kb en el caso de homocigóticos y ninguna en el caso de los heterocigóticos. Una banda de 1.3 Kb en el caso de homocigóticos y dos bandas de 0.2 y 1.1 Kb en el caso de los heterocigóticos. Una banda de 1.3 Kb en el caso de homocigóticos y dos bandas de 0.2 y 1.3 Kb en el caso de los heterocigóticos. Una banda de 1.3 Kb en el caso de homocigóticos y una de 0.2 Kb en el caso de los heterocigóticos. Ninguna de las anteriores es cierta.

En el caso de la pregunta anterior sobre la anemia falciforme, cuantas bandas se obtendrían en un experimento de Southern con la misma sonda del ejercicio anterior para un individuo sano, que no tiene la mutación que destruye la díana para en ninguno de sus alelos? (Sonda fragmento señalado en morado). Una banda de 1.1 Kb. Una banda de 1.3 Kb. Una banda de 0.2 Kb. Dos bandas, de 0.2 Kb y de 1.1 Kb. Dos bandas, de 0.2 Kb y de 1.3 Kb.

En la figura se muestra un mapa de restricción en el que la línea gruesa representa un fragmento de ADN que se utiliza como sonda en Southern blot. ¿Cuantas bandas se obtendrían en un Southern blot si se digiere el ADN solamente con BamHI, se separa y se analiza mediante Southern blot? ¿y si se digiere simultáneamente ADN con BamHI y EcoRI, se separa y se analiza mediante Southern blot?. SI digerimos con BamHI, 2 bandas (0,3 Kb, 3,6Kb) y si digerimos con BamHI +EcoRI 4 bandas. SI digerimos con BamHI, 1 banda de 3,9 Kb y si digerimos con BamHI +EcoRI 4 bandas. SI digerimos con BamHI, 1 banda de 3,6 Kb y si digerimos con BamHI +EcoRI 2 bandas, de 1.2 y 0.7Kb. SI digerimos con BamHI, 1 banda de 3,6 Kb y si digerimos con BamHI +EcoRI 4 bandas, de 0.3, 1.2, 0.7 y 1.7Kb. BamHI 2 bandas y si digerimos con BamHI +EcoRI 4 bandas.

La reacción en cadena de la polimerasa. Se basa en el uso de proteasas termoresistentes. Es una técnica que imita el proceso natural de trascripción del ADN. Es una técnica que permite amplificar una determinada región del ADN. Todas las respuestas son correctas.

Para conseguir un buen diseño de primers. Es recomendable utilizar cebadores largos, de más de 30 nucleótidos. Es imprescindible que éstos amplifiquen una única secuencia. Únicamente hay que tener en cuenta la especificidad de los mismos, mejorar el resto de parámetros no va a aumentar la calidad del ensayo. Se recomienda que las temperaturas de melting del forward y del reverse difieran en más de 5ºC.

El objetivo de la reacción en cadena de la polimerasa es. Separar fragmentos de ADN en función de su peso molecular. Obtener muchas copias de un fragmento de ADN particular. Obtener un cDNA a partir de una molécula de ARN. Ninguna respuesta es correcta.

Los primers o cebadores son. Cofactores de la polimerasa. Secuencias cortas que flanquean la secuencia de interés. El sustrato que utiliza la ADN polimerasa para ejercer su acción. Las enzimas responsables de la replicación del ADN.

En una PCR multiplex. Se amplifica una única secuencia utilizando distintas parejas de primers para ello. No es necesario utilizar dNTPs. Se amplifican varias secuencias distintas utilizando una única pareja de primers. Ninguna respuesta es correcta.

En una PCR, la fase de annealing. Es aquella en la que los primers se unen a su secuencia de ADN complementaria. Es aquella en la que se activa la polimerasa. Es aquella en la que se separa la doble hélice. Ninguna de las respuestas es correcta.

En una PCR, el NTC sirve para. Comprobar que la técnica está funcionando correctamente. Descartar errores durante el pipeteo. Descartar posibles contaminaciones en los reactivos utilizados (non template). Ninguna respuesta es correcta.

Para llevar a cabo una PCR vamos a utilizar una pareja de primers a una concentración final de 500 nM. Si nuestro stock inicial está a 0,1 mM y vamos a preparar la reacción en 20 µl, ¿qué volumen tendremos que añadir de cada primer?. 0,1 µl. 10 µl. 0,01 µl. 100 µl.

En una PCR, el control positivo de reacción. a) Es una muestra en la que están todos los reactivos excepto el ADN. b) Sirve para comprobar que la técnica funciona correctamente. c) Sirve para descartar posibles contaminaciones durante el pipeteo. d) b y c son correctas.

Calcula la temperatura de melting del siguiente primer usando la fórmula de Marmur 5´ TAAGGTCTAATAAGGCAGAAGC 3´. Necesito más información para poder calcular la temperatura de melting. Tm = 62ºC. Tm = 57ºC. Ninguna respuesta es correcta.

Los primers o cebadores. Flanquean la región de interés. Permiten a la polimerasa iniciar la reacción. Suelen medir unos 20 nucleótidos. Todas las respuestas son correctas.

De los siguientes cebadores, ¿cuál o cuáles crees que cumplen mejor los criterios recomendados para el diseño de primers? primero: 5´ TAACCCCCCGTAAGGGGGGGGC 3´ segundo: 5´ TAAGGTCTAATAAGGCAGAAGC 3´ tercero: 5´ TAAGGTCTAA 3´. Todos ellos. El segundo y el tercero. El segundo. Ninguno de ellos.

En la PCR anidada. a) Se disminuye la especificidad y sensibilidad de la técnica. b) Se amplifica una región adyacente a una secuencia conocida. c) El producto de una amplificación se usa como molde para realizar una segunda amplificación. d) a y c son correctas.

La PCR a tiempo real. Puede llevarse a cabo en el mismo termociclador que una PCR tradicional. Puede llevarse a cabo con o sin fluoróforo. Permite seguir la evolución de la reacción de amplificación en tiempo real. Todas las opciones anteriores son verdaderas.

La tecnología Taqman. Se basa en la actividad exonucleasa 5`-3`de la polimerasa. Es más específica que las PCR a tiempo real con fluoroforos inespecíficos. Utiliza una sonda específica. Todas las opciones anteriores son ciertas.

En la PCR a tiempo real. A mayor cantidad de DNA molde mayor será el Ct observado en la qPCR. A mayor cantidad de DNA molde menor será el Ct observado en la qPCR. El valor de Ct es independiente de la cantidad de ADN molde. El valor de Ct es siempre constante.

En el laboratorio de calidad de una industria alimentaria, se chequea de forma rutinaria si existe contaminación por Salmonella typhi. De cada lote de producto que va a salir al mercado, se toman al azar tres muestras y se hace el análisis por PCR convencional. En la siguiente imagen se puede observar el resultado obtenido de uno de esos chequeos. El orden de carga de las calles 1 a 5 respectivamente es: control positivo, control negativo, muestras 1, 2 y 3. La PCR no ha funcionado. Alguno de los reactivos se ha contaminado. Todas las muestras están infectadas. No se ha detectado infección por Salmonella typhi.

En el mismo laboratorio, en uno de los chequeos rutinarios se obtiene el siguiente resultado. Todas las muestras son positivas para Salmonella typhi. La PCR no ha funcionado. Alguno de los reactivos de la PCR se ha contaminado. El chequeo ha salido correcto por lo que el lote puede salir a la venta.

¿Qué ocurre cuando se utiliza un dideoxinucleótido en el método de Sanger?. La cadena de ADN se sigue extendiendo indefinidamente. La cadena de ADN se detiene en la incorporación del dideoxinucleótido. Se añade un nuevo nucleótido a la cadena. Se elimina el nucleótido anterior.

¿Qué se utiliza en el método de Sanger para marcar los fragmentos de ADN?. Radiación UV. Isótopos radiactivos o fluoróforos. Proteínas fluorescentes. ARN mensajero.

¿Qué técnicas permiten la secuenciación de millones de fragmentos de ADN de forma paralela?. Secuenciación de Sanger. Secuenciación de Maxam y Gilbert. Secuenciación de nueva generación (NGS). Todas las anteriores son correctas.

¿Cuál es una ventaja principal de los métodos de secuenciación de nueva generación (NGS) sobre el método de Sanger?. Generan lecturas más largas. Son más rápidos y más baratos. No requieren PCR. Utilizan menos tecnología informática.

¿Cuál de los siguientes métodos de secuenciación se incluye dentro de las tecnologías NGS?. Secuenciación de 454. Secuenciación de Sanger. Secuenciación de Maxam and Gilbert. Ninguno de estos métodos corresponde a tecnologías NGS.

¿Qué tecnología se utiliza para la separación de los fragmentos de ADN en el método de Sanger automatizado?. Electroforesis capilar. Ultracentrifugación. Cromatografía líquida. Filtración por tamaño.

¿En qué año fue completado el primer borrador del Genoma Humano?. 1991. 1995. 2001. 2010.

¿Cuál de los siguientes es un ejemplo de tecnología utilizada en la secuenciación de nueva generación?. PacBio. Microscopía electrónica. Cromatografía de gases. Espectrometría de masas.

¿Qué técnica de secuenciación fue utilizada por el consorcio público HUGO durante la secuenciación del primer borrador del Proyecto Genoma Humano?. Secuenciación de Maxam y Gilbert. Secuenciación de Sanger automatizada. Secuenciación por fluorescencia. Secuenciación por tecnologías de NGS.

¿Cuál es el objetivo principal de los métodos de secuenciación de segunda generación?. Secuenciar un único fragmento de ADN. Secuenciar miles o millones de fragmentos simultáneamente. Aumentar la longitud de las lecturas de ADN. Secuenciar un único fragmento de ARN o ADN.

¿Qué tecnología de secuenciación utilizaba la PCR en emulsión (emPCR) para la amplificación clonal del ADN?. PacBio. Illumina. 454 Life Sciences (Roche). Todas las anteriores.

¿Qué tipo de detección usa la pirosecuenciación para identificar la incorporación de nucleótidos?. Cambios de pH. Cambios en el voltaje debido a la liberación de protones. Emisión de luz. Liberación de oxígeno al incorporar nucleótidos.

¿Cuál es uno de los principales problemas del sistema de secuenciación Illumina?. El tamaño pequeño de las lecturas. La incapacidad para secuenciar genomas eucariotas. La imposibilidad de realizar análisis de expresión génica. El uso de tecnología obsoleta.

¿Cuál de las siguientes plataformas de NGS es más utilizada a nivel mundial actualmente?. Illumina. 454 Life Sciences. SOLiD. Ion Torrent.

¿Cómo se realiza la amplificación clonal en Illumina?. Mediante PCR en emulsión. Usando placas de microtitulación. Mediante PCR de puente en celdas de flujo. Usando la secuenciación por ligación.

¿Qué es el "emPCR" utilizado en la secuenciación 454?. Un proceso de amplificación clonal por PCR en emulsión. Un método para de amplificación en puente. Una técnica para el análisis de homopolímeros. Un sistema para reducir la longitud de las lecturas.

¿Qué tecnología de secuenciación fue la primera en ser disponible en el mercado dentro de los métodos de segunda generación?. Pirosecuenciación (454 Life Sciences). Illumina-Solexa. Ion Torrent. SOLiD.

¿Cuál de las siguientes técnicas de nueva generación no utiliza una enzima polimerasa?. PacBio y Oxford Nanopore. Oxford Nanopore e Ilumina. Ilumina. Oxford Nanopore.

¿Qué tipo de información del ADN se pierde durante la amplificación en los métodos de segunda generación?. Mutaciones genéticas. Modificaciones epigenéticas. Variantes genéticas comunes. Todas son ciertas.

¿Cuál es la principal ventaja de las tecnologías de tercera generación de secuenciación, respecto a las de segunda generación?. El tamaño de las lecturas es mucho mayor. No requieren amplificación previa del ADN. Son más económicas que las de segunda generación. Todas son ciertas.

¿Cuál fue el último reto importante en la secuenciación del genoma humano?. El cromosoma X. El cromosoma 1. El cromosoma Y. El ADN mitocondrial.

La genómica inversa. Se basa en observar un fenotipo y estudiar el gen afectado. Se basa en alterar un gen y secuenciarlo. Se basa en alterar un gen y observar el fenotipo generado. Todas las anteriores son verdaderas. Todas son falsas.

La genómica inversa. Solo puede llevarse a cabo mediante la tecnología CRISPR. Permite descubrir la relación entre un gen y su función. Siempre se basa en enzimas con actividad nucleasa. Todas las anteriores son verdaderas. Las respuestas b y c con verdaderas.

La reparación de la ruptura de la doble hebra del ADN. Solo puede llevarse a cabo mediante recombinación homóloga. Es lo que permite generar mutaciones. Siempre se basa en la unión de extremos no homólogos. Todas las anteriores son verdaderas. Todas las anteriores son falsas.

La proteína Cre. Es una recombinasa de la familia de las integrasas. Puede eliminar secuencias Loxeadas de un genoma. Reconoce regiones específicas y promueve la recombinación entre ellas. Todas las anteriores son verdaderas. Todas las anteriores son falsas.

Los motivos de dedos de Zink. a) Son motivos estrucuturales proteícos que permiten la unión a regiones concretas de una cadena polipétidica. b) Se unen a la proteína Cas9 para dirigirla a zonas concretas del ADN. c) Pueden unirse a tres aminoácidos específicos. d) Las respuestas a y c son ciertas. e) Todas las anteriores son falsas.

Los sistemas TALEN. Reconocen unas secuencias específicas denominadas loxP6. Se basan en un proteína del bacteriófago P1. Contienen dominios de unión al ADN unidos a la enzima FokI. Tienen motivos estruturales ββα coordinados con un átomo metálico. Todas son falsas.

La enzima FokI. a) Es capaz de hidrolizar simultáneamente las dos hebras del ADN. b) Es la base de los sistemas TALEN y ZFN de edición genómica. c) Tiene actividad recombinasa que le permite realizar ediciones génicas. d) a y b son ciertas. e) Todas son ciertas.

Los sistemas CRISPR. Se descubrieron en el bacteriófago lamda. Fueron denominados así por las investigadoras J. Doudna y E. Charpentier. Se encuentran de forma natural en más del 40% de las bacterias y células eucariotas. Constituyen un rudimentario sistema inmune adaptativo frente a infecciones virales. Todas las anteriores son verdaderas.

Los loci CRISPR que se encuentran de forma natural en las bacterias. Contienen una serie de regiones repetitivas en tandem denominadas espaciadores. Contienen una serie de regiones repetitivas en tandem de origen viral. Contienen regiones Cas que codifican nucleasas de origen viral. Todas las anteriores son verdaderas. Todas las anteriores son falsas.

Los loci CRISPR que se encuentran de forma natural en las bacterias. a) Contienen, además de las regiones repetitivas y espaciadoras, regiones Cas. b) Alojan ADN de origen viral. c) Las regiones espaciadoras codifican enzimas con actividad nucleasa. d) a y b son ciertas. e) Todas son ciertas.

La tecnología de edición de genomas CRISPR Cas. Solo puede aplicarse a genomas bacterianos. Solo puede aplicarse a genomas eucariotas. Puede utilizarse para la edición de cualquier genoma procariota o ecuariota. Todas las anteriores son falsas.

Los sistemas CRISPR fueron denominados así. Por dos investigadoras que recibieron el premio Nobel. Por el investigador del MIT, Feng Zhang. Por la investigadora española Margarita Salas. Ninguna de las anteriores es cierta.

La enzima DICER. Debe su nombre a que tiene una estructura en forma de cubo. Fragmenta el ARN de doble cadena en fragmentos más pequeños de 20-25 nt. Se une al ARN interferente y lo dirige hacia la secuencia de ARN que va a degradarse. Forma parte del complejo RISC.

El complejo RISC. Tiene actividad nucleasa. Contiene una hebra de ARN monocatenaria. Se une al ARN interferente y lo dirige hacia la secuencia de ARN que va a degradarse. Todas son ciertas. Todas son falsas.

¿En qué consiste fundamentalmente la clonación de ADN?. En la síntesis química directa de proteínas recombinantes. En la introducción de un fragmento de ADN (inserto) dentro de una molécula de ADN(vector)que puede replicarse de manera autónoma. En la extracción exclusiva de ADN genómico para su posterior secuenciación. En la eliminación de genes de resistencia en bacterias seleccionadas.

¿Cuál es una característica específica de las endonucleasas de restricción de Tipo II?. Requieren ATP para realizar el corte de la doble cadena. Tienen actividad tanto de restricción como de metilación. Reconocen secuencias específicas y cortan la doble cadena en el mismo punto de la secuencia diana. Cortan el ADN al azar en cualquier punto de la cadena.

Sobre la ligasa de T4, ¿cuál de las siguientes afirmaciones es correcta?. Solo puede unir extremos cohesivos y requiere NAD+. Une moléculas de ADN tanto por extremos romos como cohesivos y requiere ATP. Funciona de manera óptima a 37ºC para el apareamiento de extremos. Es incapaz de formar enlaces fosfodiéster entre dos moléculas de ADN.

¿Para qué se utiliza el tratamiento con fosfatasa alcalina en el proceso de clonación?. Para aumentar la eficacia de la ligación de extremos romos. Para degradar el ARN mensajero tras la síntesis de ADNc. Para evitar la autoligación del vector al eliminar el fosfato de los extremos 5'. Para facilitar la entrada del ADN por electroporación.

¿Qué vector de clonación tiene una capacidad de carga de entre 100 y 1000 kb?. Plásmidos pUC. Bacteriófago lambda. Cósmidos. Cromosomas artificiales de levadura (YAC).

En el método de selección por el gen lacZ (beta-galactosidasa), ¿qué indican las colonias blancas?. Que las bacterias no han incorporado ningún plásmido. Que el plásmido se ha recircularizado sin el inserto. Que las colonias contienen el vector recombinante (con el inserto), ya que el gen lacZ ha sido inactivado. Que la enzima beta-galactosidasa está activa y degradando el sustrato X-Gal.

¿Cuál es el origen de una genoteca de ADNc?. Todo el genoma de un organismo cortado con enzimas de restricción. Copias obtenidas mediante retro-transcriptasa a partir de ARN mensajeros de un tejido o célula. Fragmentos de ADN genómico insertados únicamente en fagos. ADN purificado directamente del núcleo sin modificaciones.

¿Cuál es la principal diferencia entre la transfección estable y la transitoria en células animales?. La transfección transitoria requiere siempre de selección con antibióticos. En la transfección estable, el ADN se integra en el genoma de la célula, asegurando su perpetuidad. La transfección transitoria es menos eficaz que la estable. En la estable, el ADN se degrada tras unas pocas generaciones.

¿Qué son los lipoplexos en el contexto de la transfección química?. Complejos de ADN con polímeros catiónicos como el PEG. Precipitados de ADN con fosfato cálcico. Complejos formados por la interacción entre ADN/ARN y lípidos catiónicos (liposomas) que favorecen la endocitosis. Microbolas de oro recubiertas de material genético.

Las células HeLa, fundamentales en la investigación biomédica, provienen de. Un cultivo primario de células de ratón. Un tumor de cuello de útero de la paciente Henrietta Lacks en 1952. Células madre embrionarias humanas. Células vegetales tratadas con el plásmido Ti.

¿Qué define a un animal "knock-out"?. Un animal al que se le han adicionado múltiples transgenes de distintas especies. Un animal utilizado exclusivamente para la producción de proteínas en la leche. Un tipo de transgénico en el que se han eliminado específicamente genes de interés. Un animal clonado mediante transferencia nuclear de células somáticas.

En la terapia génica "ex vivo": El vector terapéutico se administra directamente al individuo enfermo por vía intravenosa. La administración del vector se realiza fuera del cuerpo, sobre células obtenidas por biopsia y cultivadas. Solo se pueden utilizar oligonucleótidos antisentido (ASO). El tratamiento se realiza mediante el disparo de microbolas sobre la piel del paciente.

¿Cuál es el papel de la secuencia de Kozak en células eucariotas?. Actuar como origen de replicación en plásmidos mixtos. Facilitar la identificación del codón de inicio AUG por el ribosoma para la traducción. Servir como terminador de la transcripción y adición de cola poli-A. Permitir la integración del ADN en el genoma mediante recombinación.

¿Qué método es el más utilizado para la transformación de células vegetales aprovechando la naturaleza?. Microinyección pronuclear. Utilización del plásmido Ti de Agrobacterium tumefaciens. Transfección con fosfato cálcico. Uso de vectores basados en el virus SV40.

¿Qué principio biológico permite que una planta completa se regenere a partir de un callus transformado?. La inactivación insercional. La transducción viral. El principio de totipotencia. El control relajado de la replicación.