Procesamiento citológico y tisular

¿Qué ciencia se encarga de analizar la estructura de células y tejidos?. Citología. Biopsia. Anatomía patológica. Tanatología.

La citotecnología se encarga principalmente de estudiar: Tejidos completos. Piezas quirurgicas. Cambios celulares en muestras analizadas. Protocolos histológicos.

¿ Que estudia específicamente la histotecnologia?. Análisis microscópicos de tejidos. Diagnóstico médico. Cambios celulares individuales. Procesamiento de técnicas histológicas.

La Ley 12/2001 de Ordenación Sanitaria de la Comunidad de Madrid establece que: Las zonas básicas de salud son áreas administrativas complejas. Madrid tiene varias Áreas de Salud independientes. Existe una única Área de Salud dividida en Zonas Básicas de Salud. Las Áreas Sanitarias no tienen carácter funcional.

¿Qué es una Zona Básica de Salud?. Unidad geográfica básica para la atención primaria. Unidad administrativa principal del sistema sanitario. Área exclusiva para especialistas médicos. Área especializada en anatomía patológica.

El Real Decreto 1359/1984 trata sobre: Autorización de centros sanitarios. Normas técnicas para laboratorios. Transferencia de funciones sanitarias a Madrid. Gestión de residuos sanitarios.

¿Cuál normativa establece los requisitos mínimos técnicos para los centros de diagnóstico de AP?. Ley 12/2001. Real Decreto 1277/2003. Decreto 83/1999. Orden 2095/2006.

El área destinada exclusivamente al almacenaje temporal de residuos sanitarios debe ser: Abierta y accesible a todo personal. Ventilada y claramente señalizada. Ubicada en áreas comunes del hospital. Sin necesidad de etiquetado especial.

¿Cuál de estos materiales es considerado inventariable?. Agujas. Centrifuga. Tubos desechables. Guantes de látex.

Un material aforado. Tiene múltiples marcas graduadas. Tiene una o dos marcas específicas. No indica volumen alguno. Es siempre desechable.

Los materiales de vidrio utilizados en laboratorio: Son exclusivamente desechables. No pueden ser esterilizados. Son siempre aforados. Pueden ser reutilizables tras esterilización.

¿Qué se entiende por eficiencia en un laboratorio?. Lograr el objetivo sin considerar el uso de recursos. Conseguir resultados independientemente del costo. Obtener resultados óptimos con mínimo uso de recursos. Capacidad para lograr objetivos rápidamente.

¿Cuál NO es una vía habitual de entrada de agentes biológicos en laboratorio?. Inhalación. Vía parental. Radiación. Salpicaduras sobre piel.

El sistema de emergencia PAS significa: Proteger, Avisar, Socorrer. Proteger, Actuar, Salvar. Prevenir, Asistir, Socorrer. Proteger, Asistir, Señalizar.

¿Cómo debe tratarse el formol (formaldehído) en el laboratorio?. Como residuo halogenado peligroso. Como residuo peligroso no halogenado. Como residuo inerte. Como residuo radiactivo.

¿Qué indica el Decreto 83/1999 de la Comunidad de Madrid?. Transferencia sanitaria a Madrid. Clasificación y gestión de residuos sanitarios. Requisitos mínimos técnicos para laboratorios. Normas generales de centros de salud.

Los residuos halogenados contienen compuestos con: Nitrógeno. Cloro, bromo, flúor, yodo. Carbono únicamente. Oxigeno únicamente.

Para el almacenamiento temporal de residuos sanitarios se recomienda llenar los contenedores hasta: 100% de su capacidad. 90% de su capacidad. 80% de su capacidad. 50% de su capacidad.

¿Cuál es el objetivo del control de calidad en Anatomía Patológica?. Reducir costos exclusivamente. Garantizar la fiabilidad de resultados. Optimizar únicamente los procesos administrativos. Evitar que las muestras sean almacenadas.

¿Qué norma ISO regula específicamente la competencia de laboratorios de ensayo y calibración?. ISO-13485. ISO-15198. ISO-17025. ISO- 9001.

La histología se encarga principalmente de: Visualizar organismos enteros. Identificar virus y bacterias. Preparar muestras celulares para su observación microscópica. Estudiar la estructura y función de células, tejidos y órganos.

¿Qué permite la microscopía óptica?. Observar microestructuras mediante un haz de luz visible. Utilizar un haz de electrones para la observación. Realizar cortes ultrafinos exclusivamente. Visualizar exclusivamente células vivas.

¿Cuál es la fuente de energía utilizada por el microscopio electrónico?. Luz ultravioleta. Luz visible. Haz de electrones. Radiación infraroja.

¿Qué característica define al microscopio estereoscópico (lupa)?. Baja amplificación entre 2x y 30x. Observación exclusiva de células vivas. Alta resolución interna celular. Uso obligado de aceite de inmersión.

¿Cuál de los siguientes microscopios utiliza iluminación lateral para observar muestras sobre fondo oscuro?. Microscopio convencional. Microscopio de campo oscuro. Microscopio de interferencia. Microscopio confocal.

¿Qué microscopio permite observar células sin necesidad de tinción, aprovechando los cambios en los índices de refracción?. Microscopio invertido. Microscopio de contraste de fases. Microscopio electrónico. Microscopio estereoscópico.

¿Cuál de estos microscopios divide la luz en dos haces separados que luego interfieren para formar la imagen?. Microscopio convencional. Microscopio de interferencia (Nomarski). Microscopio de fluorescencia. Microscopio de campo oscuro.

¿Qué particularidad presenta el microscopio invertido?. El sistema de iluminación está encima de la muestra. Requiere el uso de aceites especiales. Utiliza luz polarizada exclusivamente. Sólo observa muestras teñidas.

¿Qué detecta específicamente el microscopio de fluorescencia?. Moléculas refractivas. Moléculas fluorescentes inducidas o naturales. Exclusivamente componentes no fluorescentes. Cambios estructurales por refracción.

¿Cuál es un uso frecuente del microscopio confocal?. Observación en campo oscuro. Observación macroscópica de tejidos. Exámenes rápidos de células no teñidas. Visualización precisa de estructuras subcelulares fluorescentes.

¿Cuál es la función del condensador en un microscopio óptico convencional?. Amplificar la imagen. Concentrar los rayos de luz sobre la muestra. Controlar el enfoque grueso. Regular la distancia focal del ocular.

¿Qué parte del microscopio permite regular la cantidad de luz que llega a la muestra. Platina. Condensador. Diafragma. Revolver.

El objetivo de inmersión (100X) requiere: Observación directa en seco. Lentes polarizadas. Aceite especial para inmersión. Uso exclusivo en microscopios electrónicos.

¿Qué componente del microscopio realiza ajustes de enfoque fino?. Tornillo macrométrico. Tornillo micrométrico. Platina móvil. Revolver de objetivos.

¿Qué microscopio electrónico permite obtener imágenes tridimensionales de superficies?. Microscopio electrónico de transmisión. Microscopio confocal. Microscopio electrónico de barrido. Microscopio de contraste de fases.

¿Cómo se observan las áreas más densas en el microscopio electrónico de transmisión (MET)?. Más claras (electrotransparentes). Más oscuras (electrodensas). Transparentes completamente. Sin diferencias notables.

¿Qué soporte utiliza el microscopio electrónico de transmisión para colocar las muestras?. Portaobjetos de vidrio. Platina convencional. Bandejas de plástico. Rejillas metálicas (níquel o cobre).

La imagen en un microscopio electrónico de barrido se forma a partir de: La transmisión directa de electrones. Los cambios ópticos en las lentes. Electrones secundarios dispersados desde la muestra. Luz fluorescente inducida.

¿Qué diferencia principal existe entre microscopía óptica y electrónica?. La necesidad de usar aceite de inmersión. El tamaño del microscopio. La fuente de energía utilizada (fotones vs electrones). La necesidad de colorantes especiales.

¿Para qué se utiliza principalmente la microscopía electrónica?. Visualizar detalles intracelulares con gran resolución. Observar células vivas en movimiento. Estudiar muestras grandes a baja ampliación. Realizar biopsias rápidas en cirugía.

¿Cuál es el primer paso tras la llegada de una muestra al laboratorio de Anatomía Patológica?. Deshidratación. Tallado. Fijación. Registro.

El aclaramiento en la preparación histológica se realiza con: Alcohol etílico. Xilol. Formaldehido. Parafina.

¿Qué compuesto se utiliza habitualmente para fijar muestras destinadas a microscopía convencional?. Etanol puro. Glutaraldehído. Formol 4%. Ácido acético.

¿Qué información debe incluir obligatoriamente el registro de una biopsia?. Solo datos personales del paciente. Solo diagnóstico preliminar. Solo características macroscópicas. Datos del paciente, diagnóstico preliminar, anamnesis y características macroscópicas.

¿Qué característica NO es esencial en la descripción macroscópica de órganos huecos?. Aspecto de la mucosa. Tamaño y forma. Color del parénquima. Consistencia de la pared.

¿Qué ocurre tras la descripción macroscópica de una muestra?. Infiltración con parafina. Registro automático. Fijación inmediata sin selección. Selección del material por el patólogo para estudio microscópico.

¿Qué importancia tiene la correcta orientación del tejido durante el tallado?. Evita diagnósticos erróneos. Favorece la velocidad de fijación. Mejora la tinción. Acelera el proceso de aclaramiento.

¿Cuál es el propósito principal de la fijación tisular?. Deshidratar rápidamente la muestra. Incrementar la transparencia del tejido. Preservar las características morfológicas y moleculares del tejido. Facilitar la infiltración de parafina.

¿Qué método utiliza la perfusión para la fijación tisular?. Introducción del fijador a través del sistema circulatorio. Sumergir completamente la muestra en fijador. Congelar rápidamente la muestra. Aplicación directa de calor.

¿Qué ventaja ofrece la fijación por congelación?. Excelente infiltración de parafina. Preservación óptima de antígenos y enzimas. Endurecimiento del tejido. Mayor retracción tisular.

¿Qué fijador químico es ideal para preservar ácidos nucleicos, aunque destruye mitocondrias?. Etanol. Ácido acético. Glutaraldehído. Formaldehído.

¿Qué fijador es especialmente útil para microscopía electrónica, pero penetra lentamente en los tejidos?. Etanol. Ácido pícrico. Glutaraldehído. Ácido acético.

¿Cuál es la concentración más comúnmente usada del formaldehído como fijador?. 10%. 4%. 1%. 70%.

¿Cuál es una ventaja de utilizar la mezcla del líquido de Bouin?. Preserva mejor las grasas. Ideal para tejidos blandos y embrionarios. Evita completamente retracciones tisulares. Buena fijación para microscopía electrónica.

¿Qué mezcla de fijadores es especialmente efectiva para observar tejidos mediante microscopía electrónica?. Etanol-ácido acético. Líquido de Karnay. Líquido de Bouin. Glutaraldehído - Tetróxido de osmio.

¿Para qué se realiza la descalcificación tisular?. Para eliminar sales de calcio que impiden el correcto procesado. Para mejorar la fijación del tejido. Para facilitar la infiltración de xilol. Para aumentar la intensidad de tinción.

¿Cuál es la temperatura recomendada para realizar una descalcificación óptima?. 4°C. 37°C. 25°C. 60°C.

¿Qué sustancia se recomienda para neutralizar y lavar las muestras tras finalizar la descalcificación?. Agua corriente. Alcohol absoluto. Xilol. Formaldehído diluido.

¿Cuál de las siguientes causas produce habitualmente pliegues tisulares (artefactos)?. Sobrecalentamiento por parafina. Procesamiento de los cortes histológicos. Exceso de fijación. Uso excesivo de xilol.

¿Qué artefacto puede producir una cuchilla defectuosa en el microtomo?. Exceso de tinción. Retracción tisular. Formación de burbujas. Mellas en la muestra durante el corte.

¿Cuál es el objetivo principal de la inclusión de muestras en parafina?. Permitir obtener cortes finos y conservar la estructura tisular. Endurecer la muestra para evitar su manipulación. Eliminar completamente el agua del tejido. Aumentar la velocidad de congelación del tejido.

¿Qué material se utiliza habitualmente para la inclusión cuando se desea observar la estructura celular mediante microscopía electrónica?. Parafina. Resina (epoxi). Gelatina. Celodina.

¿Cuál de las siguientes sustancias se utiliza como agente aclarante en la inclusión en parafina?. Glicerol. Xilol. Sacarosa. Dimetilsulfóxido (DMSO).

¿Qué función cumple el proceso de deshidratación en la inclusión en parafina?. Endurecer el tejido para que se pueda retallar. Eliminar el agua de la muestra para permitir la penetración de la parafina. Aumentar la viscosidad del medio de inclusión. Facilitar la polimerización de la parafina.

¿Cuál de los siguientes es un agente anticongelante o crioprotector utilizado en el procesamiento de tejidos?. Etanol. Xilol. Sacarosa al 30%. Óxido de propileno.

¿Qué aparato se utiliza para obtener secciones ultrafinas de tejido congelado?. Microtomo de inclusión. Criostato. Estación de inclusión. Molde metálico.

La parafina se mantiene en estado líquido para la inclusión a una temperatura aproximada de: 25°C. 40°C. 60°C. 80°C.

¿Cuál es la principal desventaja del uso de óxido de propileno en la inclusión en resina?. Su baja capacidad de infiltración. Su elevado tiempo de exposición. Su alta toxicidad y elevada viscosidad. Su incompatibilidad con resinas epoxi.

¿Qué consecuencia puede tener el uso directo de etanol de alta graduación en la muestra?. Una mejor infiltración de la parafina. La retracción abrupta y daño irreversible del tejido. La formación de bloques de resina. La eliminación de agentes aclarantes.

Para minimizar la formación de grandes cristales de hielo durante la congelación, se recomienda: Utilizar temperaturas inferiores a -100°C. Usar soluciones anticongelantes y congelación rápida con nitrógeno líquido. Aumentar la concentración de agua en la muestra. Incrementar el tiempo de exposición al etanol.

¿Cuál es el propósito del retallado en la preparación de bloques de parafina?. Aumentar el contenido de agua en el bloque. Formar una pirámide truncada que facilite el corte con el microtomo. Incluir la muestra en la resina. Disminuir la toxicidad de los reactivos.

La inclusión en resina es especialmente recomendada para: Cortes gruesos de tejidos grandes. Visualizar la organización general del tejido. Obtener cortes ultrafinos preservando la composición celular. Procesar órganos completos sin deshidratación.

¿Cuál de los siguientes procesos NO corresponde a la inclusión en parafina?. Deshidratación. Aclaramiento. Infiltración. Congelación.

Respecto a la exposición en los baños de parafina líquida, ¿Cuál es la recomendación general?. Un único baño de 30 minutos. Dos baños: uno de 1 hora y otro de 2 a 4 horas. Tres baños de 10 minutos cada uno. Inmersión continua sin intervalos.

En el proceso de inclusión en resina, ¿qué sustancia se utiliza para sustituir el etanol durante el aclaramiento?. Glicerol. Sacarosa. Óxido de propileno. Acetona.

¿Por qué es importante la orientación de la muestra en el procesamiento histológico?. Para facilitar la deshidratación. Para obtener cortes con valor diagnóstico adecuado según el eje de la estructura. Para evitar el uso de reactivos tóxicos. Para acelerar la polimerización de la resina.

¿Qué tipo de corte se realiza en paralelo a la mayor dimensión de la estructura?. Transversal. Tangencial. Longitudinal. Oblicuo.

¿Cómo se denomina el corte que se realiza de manera perpendicular al eje longitudinal?. Oblicuo. Longitudinal. Tangencial. Transversal.

En el contexto del procesamiento histológico, ¿qué significa "embebido" o "infiltración"?. La eliminación del agua de la muestra. La inmersión de la muestra en una sustancia líquida (parafina o resina) que posteriormente se solidifica. La orientación de la muestra en el molde. El retallado del bloque para formar la pirámide truncada.

¿Cuál es la función principal del microtomo de congelación?. Incluir la muestra en resina. Retallar los bloques de parafina. Cortar secciones ultrafinas de muestras congeladas. Incrementar la viscosidad de los reactivos.

¿Por qué se recomienda el uso de xilol con precaución en el proceso de inclusión en parafina?. Por su baja velocidad de acción. Porque puede endurecer los tejidos si se usa en exceso. Porque es insoluble en agua. Porque acelera la evaporación del etanol.

¿Qué técnica de inclusión se usa para órganos completos sin deshidratación?. Inclusión en parafina. Inclusión en resina. Inclusión en gelatina. Inclusión en celodina.

¿Cuál es la diferencia entre la inclusión en parafina y en resina?. La resina preserva mejor la estructura celular. La parafina se usa en microscopía electrónica. La resina requiere menos deshidratación. La parafina es más tóxica.

¿Cuál de los siguientes materiales se utiliza para la realización de frotis citológicos?. Tubos de ensayo. Portaobjetos y cubreobjetos. Autoclaves. Pipetas serológicas.

¿Qué reactivo se utiliza como fijador en citología y conserva bien la morfología celular?. Alcohol etílico al 96%. Xilol. Formaldehído. Acetona.

¿Cuál de los siguientes equipos es imprescindible en el procesamiento de muestras citológicas?. Centrífuga. Microscopio. Procesador de tejidos. Todas las anteriores.

¿Cuál de los siguientes reactivos NO se recomienda para la fijación de muestras citológicas?. Formol. Alcohol isopropílico. Sprays fijadores. Alcohol etílico.

¿Cuál es el objetivo principal de la citología exfoliativa corporal?. Diagnosticar infecciones bacterianas. Evaluar las características morfológicas de las células descamadas. Medir la cantidad de electrolitos en sangre. Detectar alteraciones en la inmunidad celular.

¿Cuál es la sustancia utilizada como medio de transporte y conservación de células en citología líquida?. Xilol. PreservCyt. Hematoxilina. Eosina.

¿Cuál es la tinción de elección en citología ginecológica?. Diff-Quick. PAS. Papanicolaou. Hematoxilina-eosina.

¿Para qué se usa la tinción de Papanicolaou?. Diferenciar bacterias en frotis. Resaltar las características nucleares y citoplasmáticas de las células. Identificar células cancerígenas en biopsias. Detectar la presencia de hongos en orina.

¿Qué técnica permite concentrar células en un portaobjetos a partir de un líquido biológico?. CitoCentrifugación. Homogenización. Dispersión. Evaporación.

¿Qué sustancia se utiliza como aclarador en histotecnología?. Acetona. Xilol. Formaldehído. Hematoxilina.

¿Cuál de los siguientes líquidos biológicos puede analizarse mediante citología?. Líquido cefalorraquídeo. Líquido pleural. Orina. Todas las anteriores.

¿Qué significa la técnica ThinPrep en citología?. Un método para fijar células en portaobjetos. Un sistema automatizado para preparar muestras citológicas líquidas. Un proceso para eliminar contaminantes celulares. Un tipo de tinción diferencial.

¿Cómo se debe recolectar el esputo para su análisis citológico?. Por la mañana antes de comer o beber. Mezclado con suero fisiológico. Centrifugado inmediatamente. En tubos con formol al 10%.

¿Cuál es la principal función de los sprays fijadores en citología?. Evitar la deshidratación y mantener la morfología celular. Colorear las muestras. Endurecer los tejidos. Disolver los restos celulares.

¿Qué técnica de tinción se emplea para la diferenciación de células sanguíneas en muestras citológicas?. Giemsa. Hematoxilina-eosina. Papanicolau. PAS.

¿Cuál es el punto de fusión de la parafina utilizada en histotecnología?. 37-40°C. 57-60°C. 70-75°C. 100°C.

¿Cuál es la función principal del alcohol etílico en el procesamiento de muestras?. Fijar y deshidratar tejidos. Aclarar tejidos. Desnaturalizar proteínas. Proteger la morfología celular.

¿Cuál es la velocidad recomendada para centrifugar muestras de citología exfoliativa?. 500 rpm. 1000 rpm. 1500 rpm. 3000 rpm.

¿Cuál de los siguientes líquidos no se utiliza en citología exfoliativa?. Orina. Líquido peritoneal. Plasma sanguíneo. Líquido pleural.

¿Cuál de las siguientes técnicas se utiliza para el diagnóstico de hongos en citología?. PAS. Grocott. Giemsa. Shorr.

¿Qué colorante se emplea en la tinción de Hematoxilina-Eosina para resaltar los núcleos celulares?. Eosina. Hematoxilina. PAS. Azul de metileno.

¿Qué función tiene la citología en líquidos corporales?. Determinar la osmolaridad del líquido. Detectar células malignas o anormales. Medir la cantidad de proteínas. Evaluar la acidez del líquido.

¿Cuál es la diferencia entre la Hematoxilina progresiva y regresiva?. La progresiva tiñe hasta el punto terminal, la regresiva sobretiñe y se diferencia después. La progresiva tiñe el citoplasma y la regresiva el núcleo. La regresiva se usa solo en tejidos fijados con formol. No existe diferencia entre ambas.

¿Cuál es la técnica más empleada para la detección de alteraciones celulares en el tracto respiratorio?. Hematoxilina-eosina. Papanicolaou. PAS. Giemsa.

¿Cuál es el principal riesgo del uso de xilol en laboratorios?. Es explosivo. Es tóxico y volátil. Es incoloro. Puede disolver proteínas.

¿Cuál es la función principal de un microtomo?. Fijar los tejidos antes del procesamiento. Obtener secciones finas de tejido para su análisis microscópico. Hidratar las muestras antes de teñirlas. Realizar tinciones en tejidos biológicos.

¿Cuál de los siguientes microtomos es más adecuado para obtener cortes ultrafinos para microscopía electrónica?. Microtomo de rotación. Criostato. Ultramicrotomo. Microtomo de deslizamiento.

¿Qué tipo de microtomo se utiliza comúnmente para cortar muestras embebidas en parafina?. Criostato. Microtomo de rotación. Ultramicrotomo. Microtomo de cuchilla vibrante.

¿Cuál es el grosor típico de los cortes obtenidos con un microtomo de rotación?. 2-50 µm. 100-200 nm. 1-10 mm. 100-500 µm.

¿Qué material se usa para incluir los tejidos en el procesamiento histológico estándar?. Glicerol. Gelatina. Parafina. Alcohol.

El criostato es un tipo especial de microtomo que trabaja a temperaturas de aproximadamente: 10-15°C. -14 a -20°C. -50°C. 0°C.

¿Cuál es la función principal de la solución anticongelante en el criostato?. Fijar las muestras antes del corte. Evitar la formación de cristales de hielo. Acelerar el proceso de inclusión. Disolver la parafina antes de la tinción.

¿Cuál es la ventaja principal del uso de criostatos sobre otros microtomos?. No requiere el uso de parafina. Permite cortes más gruesos. Reduce la necesidad de tinciones. Facilita la rehidratación de las muestras.

El microtomo de cuchilla vibrante se utiliza principalmente para cortar: Muestras fijadas en parafina. Tejidos en fresco o fijados sin incluir. Secciones ultrafinas para microscopía electrónica. Muestras descalcificadas.

¿Qué solución se usa comúnmente en el baño de flotación para ayudar a la manipulación de las secciones?. Xileno. Agua destilada. Etanol 96%. Formaldehído.

Si las secciones presentan arrugas o compresiones, ¿cuál podría ser la causa?. La cuchilla está mellada. El bloque está congelado. El baño de flotación está demasiado caliente. Se utilizó un fijador inadecuado.

¿Qué equipo permite realizar cortes semiautomáticos en bloques de tejido grandes?. Criostato. Microtomo de oscilación. Microtomo de deslizamiento. Ultramicrotomo.

¿Cuál es el paso previo a la colocación del bloque en el microtomo de rotación?. Calentarlo en una placa a 50°C. Retallarlo para mejorar la calidad del corte. Sumergirlo en etanol. Fijarlo con formalina.

El principal inconveniente del microtomo de mano es: Solo permite cortes ultrafinos. Produce cortes irregulares. No se puede usar con muestras frescas. No permite tinciones posteriores.

¿Cómo se deben colocar las secciones en el baño de flotación?. Directamente desde el microtomo sin manipulación. Con un pincel y a temperatura entre 40-45°C. En frío para evitar deformaciones. Con etanol para mejorar la adhesión.

¿Cuál de los siguientes microtomos se usa principalmente en estudios de botánica y fisiología vegetal?. Microtomo de oscilación. Microtomo de mano. Ultramicrotomo. Criostato.

¿Cómo se obtiene una correcta orientación del bloque en el microtomo?. Ajustando la inclinación del portabloques. Usando una cuchilla curva. Sumergiendo el bloque en xileno antes del corte. Aplicando una capa gruesa de parafina en la superficie.

¿Cuál es la principal función del sistema de freno en el microtomo?. Controlar el grosor del corte. Evitar el movimiento no deseado de la cuchilla. Regular la temperatura de la muestra. Facilitar el montaje de las secciones.

¿Qué problema puede presentarse si la cuchilla no está bien alineada en el microtomo?. Secciones con dobleces o deformaciones. Cortes excesivamente finos. Fijación inadecuada de la muestra. Formación de burbujas en el baño de flotación.

Si una sección se desprende del portaobjetos, ¿Qué solución se recomienda?. Aplicar xileno. Sumergir en solución de gelatina al 1%. Rehidratar en etanol. Volver a cortar la muestra.

¿Cuál es el propósito de la impregnación con parafina en el procesamiento de tejidos?. Aumentar la resistencia del tejido. Facilitar el corte con microtomo. Evitar la deshidratación. Eliminar burbujas de aire.

El ultramicrotomo es el equipo ideal para cortes de: 10-80 nm. 2-5 µm. 50-100 µm. 1-2 mm.

¿Cómo se evita la formación de burbujas en el baño de flotación?. Agitando el agua. Usando agua destilada. Aumentando la temperatura del baño. Aplicando xileno.

Si el bloque de parafina está demasiado caliente durante el corte, ¿qué problema puede presentarse?. Fragmentación de la muestra. Secciones con arrugas o deformaciones. Pérdida de contraste en la tinción. Secciones extremadamente delgadas.

El criostato es especialmente útil en estudios de: Biología molecular. Inmunohistoquímica. Histología vegetal. Parasitología.

¿Cuál es el principal objetivo de las técnicas histológicas de tinción?. Deshidratar la muestra. Facilitar la inclusión en parafina. Cortar la muestra en secciones muy finas. Diferenciar estructuras específicas y alteraciones patológicas.

¿Qué técnica de tinción es más adecuada para identificar carbohidratos como glucógeno?. Tricrómico de Masson. Azul alcián. PAS. Sudán Negro B.

¿Qué técnica histológica detecta actividad enzimática específica en tejidos?. Histológicas generales. Histoquímicas. Enzimohistoquímicas. Impregnaciones metálicas.

La tinción por impregnación metálica se basa en: Unión química directa con estructuras celulares. Atracción electrostática de cargas opuestas. Depósito de metales sobre estructuras específicas. Adhesión física del colorante.

¿Cuál es un ejemplo de tinción metacromática?. Hematoxilina. Azul alcián. Azul de toluidina. Eosina.

La hematoxilina es un colorante: Aniónico. Metacromático. Catiónico (básico). Físico (sin carga).

En la tinción Hematoxilina-Eosina, los núcleos se observan de color: Rosado. Naranja. Azul/violeta. Rojo.

La tinción regresiva con hematoxilina implica: Eliminar el exceso de colorante después de teñir la muestra en exceso. Incrementar el tiempo en colorante para intensificar la tinción. Usar exclusivamente colorantes ácidos. No realizar ningún lavado posterior.

¿Qué colorante es específico para detectar lípidos?. Azul alcián. PAS. Sudán III. Rojo Congo.

¿Qué sustancia detecta principalmente la técnica PAS?. Lípidos. Proteínas. Carbohidratos (glucógeno). Hierro.

¿Qué técnica es adecuada para identificar mucopolisacáridos ácidos?. PAS simple. Tricrómico de Masson. Azul alcián. Gram.

El tricrómico de Masson es especialmente útil para resaltar: Ácidos nucleicos. Fibras de colágeno. Lípidos. Microorganismos.

¿Qué técnica se utiliza principalmente para teñir fibras reticulares?. Reticulina de Gomori. Sudán negro B. Azul alcián. Orceína.

¿Qué tinción identifica específicamente bacterias ácido-alcohol resistentes como Mycobacterium tuberculosis?. Ziehl-Neelsen. Gram. Azul de metileno. Reticulina de Gomori.

¿Cómo se ven las bacterias grampositivas tras la tinción Gram?. Púrpura. Rojas. Amarillas. Azules claras.

¿Qué técnica histológica se utiliza para identificar depósitos de hierro?. PAS. Rojo Congo. Azul de Perls (Pursia). Von Kossa.

¿Cuál es el resultado visual característico de la técnica de Von Kossa?. Depósitos de hierro en azul. Depósitos de calcio en negro. Glucógeno en rojo. Grasas en negro.

¿Qué técnica se utiliza principalmente para detectar placas amiloides y ovillos neurofibrilares en Alzheimer?. Gram. Fontana-Masson. Rojo Congo. Bielschowsky.

El contraste en microscopía electrónica generalmente se obtiene mediante: Colorantes básicos. Metales pesados. Tinciones histoquímicas. Agua destilada.

¿Qué compuesto se utiliza frecuentemente para fijar tejidos destinados a microscopía electrónica?. Formaldehído al 4%. Etanol puro. Glutaraldehído. Azul alcián.

¿Qué técnica utiliza anticuerpos para localizar moléculas específicas en tejidos?. Microscopía electrónica. Cromatografía. Microscopía óptica convencional. Inmunohistoquímica.

La inmunohistoquímica se basa principalmente en la interacción específica: Antígeno-antígeno. Antígeno-anticuerpo. Anticuerpo-anticuerpo. Epítopo-epítopo.

¿Qué componente se une específicamente al antígeno para facilitar su visualización?. Anticuerpo marcado. Parafina. Colorante H&E. Xilol.

¿Qué parte del anticuerpo es responsable de reconocer específicamente al antígeno?. Región constante. Cadena ligera solamente. Cadena pesada solamente. Región variable.

¿Qué es un epítopo?. Un anticuerpo específico. Un tipo de enzima. Una molécula fluorescente. La parte específica del antígeno reconocida por un anticuerpo.

¿Qué caracteriza a los anticuerpos monoclonales?. Reconocen múltiples epítopos diferentes. Derivan de un solo clon de linfocitos B. Son menos específicos. Son más económicos y rápidos de producir.

¿Cuál es una ventaja de los anticuerpos policlonales?. Alta especificidad para un solo epítopo. Baja probabilidad de reacción cruzada. Reproducibilidad superior. Alta sensibilidad para detectar múltiples epítopos.

¿Cuál de estos anticuerpos sería ideal para terapia dirigida contra un único epítopo específico, como en el cáncer de mama (HER2)?. Policlonales. Monoclonales. Poliésteres. Autoanticuerpos.

¿Cuál es el fijador más comúnmente utilizado en inmunohistoquímica?. Glutaraldehído. Formalina (formol) al 4%/10%. Alcohol absoluto. Xilol puro.

¿Qué proceso se utiliza para recuperar la inmunorreactividad de antígenos tras la fijación?. Inclusión en parafina. Recuperación antigénica (desenmascaramiento). Corte con microtomo. Deshidratación con alcohol.

¿Qué grosor suelen tener los cortes histológicos en inmunohistoquímica?. 10-20 µm. 50-100 nm. 2-5 µm. 0.5-1 mm.

¿Por qué se bloquean las enzimas endógenas antes del procedimiento de inmunohistoquímica?. Para hidratar los tejidos. Para aumentar la adherencia al portaobjetos. Para cortar las muestras más finamente. Para evitar reacciones inespecíficas.

¿Cuál es el propósito del anticuerpo secundario en inmunohistoquímica?. Amplificar la señal del anticuerpo primario. Fijar el tejido en parafina. Revelar directamente el antígeno. Bloquear las enzimas endógenas.

¿Cuál es la última etapa del procedimiento inmunohistoquímico básico?. Aplicación del anticuerpo primario. Recuperación antigénica. Bloqueo enzimático. Contraste y montaje.

¿Qué anticuerpos tienen mayor riesgo de reacciones cruzadas?. Policlonales. Monoclonales. Recombinantes. Autoanticuerpos.

¿En qué caso elegirías anticuerpos policlonales sobre monoclonales?. Para máxima especificidad terapéutica. En estudios donde la especificidad es crítica. En estudios exploratorios donde prima la sensibilidad. Cuando necesitas reproducibilidad estricta.

¿Qué método suele emplearse para visualizar los anticuerpos en inmunohistoquímica convencional?. Enzimas cromogénicas. Microscopía electrónica directa. Aceite de inmersión. Alcohol absoluto.

Un anticuerpo marcado con fluoróforos se visualiza mediante: Microscopía electrónica. Coloración H&E. Microtomo ultrafino. Microscopía fluorescente.

¿Qué región del anticuerpo permite la unión a receptores celulares (macrófagos, eosinófilos)?. Región variable. Región constante. Epítopo. Sitio activo.

¿Cuál es la principal limitación del uso de anticuerpos monoclonales en inmunohistoquímica?. Menor especificidad. Alto costo y dificultad en producción. Alta probabilidad de reacción cruzada. Falta de reproducibilidad.