88 PREPOLICIAL

1. La aplicación del torniquete por más de 1 minuto puede producir hemoconcentración y elevar falsamente analitos como proteínas totales, calcio y hematocrito. V. F.

2. El uso de un torniquete durante la venopunción aumenta temporalmente la concentración de proteínas totales y hematocrito, pero no tiene efecto sobre enzimas intracelulares como LDH o CK a menos que exista hemólisis. V. F.

3. La recolección de sangre en tubos de citrato para pruebas bioquímicas que requieren suero puede causar falsos aumentos de calcio y magnesio debido a la interferencia del anticoagulante. V. F.

4. Administrar líquidos intravenosos antes de la extracción sanguínea puede causar hemoconcentración aparente y aumentar la concentración de hematocrito y proteínas plasmáticas. V. F.

5. La aplicación de torniquete por más de un minuto durante la venopunción puede provocar hemoconcentración, lo que altera solo los analitos celulares y no afecta los solutos plasmáticos como proteínas y electrolitos. V. F.

6. La hemólisis causada por una punción traumática en la extracción de sangre puede aumentar falsamente los niveles de potasio, LDH y AST en la muestra. V. F.

1. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Ayuno inadecuado. Hemólisis de la muestra. Uso incorrecto del anticoagulante. Torniquete prolongado. Identificación incorrecta del paciente.

2. Empareja los tubos de extracción de sangre de la columna A con su aditivo o función principal en la columna B. Tubo rojo. Tubo amarillo con gel separador. Tubo lavanda/morado. Tubo azul celeste. Tubo verde.

3. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Torniquete. Antisepsia con alcohol al 70%. Técnica de inversión de tubos. Presión después de la punción. Evitar hemólisis.

4. Instrucción: Relacione cada situación preanalítica (Columna A) con el analito o efecto alterado (Columna B). Muestra de sangre extraída de una vena con infusión intravenosa de solución salina. Exposición prolongada de la muestra de bilirrubina a la luz. Uso accidental de tubo con EDTA para pruebas bioquímicas. Retraso prolongado en el procesamiento de una muestra de sangre total. Ejercicio físico intenso previo a la toma de muestra.

5. Relacione cada factor preanalítico del paciente o de la recolección de la muestra (Columna A) con su efecto o consecuencia en el resultado del laboratorio (Columna B). Cambio de posición del paciente de decúbito a posición de pie antes de la extracción. Consumo reciente de alimentos ricos en grasas antes del análisis. Variación circadiana en la secreción hormonal. Recolección incompleta de una muestra de orina de 24 horas. Residencia del paciente en zonas de gran altitud.

1. Durante la extracción de sangre, se aplica torniquete por más de 2 minutos. ¿Cuál es el efecto preanalítico más probable?. Aumento de enzimas intracelulares como LDH y CK. Hemoconcentración, elevando proteínas totales, calcio y hematocrito. Disminución de glucosa sérica. No hay efecto significativo sobre analitos plasmáticos.

2. Durante la extracción, la sangre se recoge en un brazo con vía intravenosa activa de solución salina. ¿Qué analitos se alteran más?. Sodio elevado y hematocrito disminuido. Potasio elevado y glucosa disminuida. Creatinina elevada. Bilirrubina disminuida.

3. Una muestra de gases arteriales se recoge en un tubo de plástico y se deja reposar 45 minutos a temperatura ambiente. ¿Cuál es el error preanalítico más probable?. Aumento de glucosa. Hemólisis de eritrocitos. Disminución de O₂ y aumento de CO₂. Falsamente elevado bicarbonato.

4. En la toma de muestra capilar de un recién nacido, ¿cuál es el error preanalítico más probable si se exprime demasiado el talón para obtener sangre?. Disminución de glucosa. Hemólisis y aumento falso de potasio. Falsamente bajo hematocrito. Ningún efecto significativo.

5. Un paciente toma ácido acetilsalicílico de forma crónica y se extrae sangre para pruebas de coagulación. ¿Cuál es el efecto preanalítico más probable si no se registra este medicamento?. Falsamente prolongado tiempo de protrombina (PT) y tiempo de tromboplastina parcial (aPTT). Falsamente disminuido PT. No hay efecto en pruebas de coagulación. Aumento de plaquetas.

6. Un paciente permanece en ayuno prolongado (>24 horas) antes de la extracción de sangre para perfil lipídico. ¿Cuál es la alteración más probable?. Aumento de triglicéridos. Disminución de glucosa y proteínas plasmáticas. Aumento de creatinina. Disminución de potasio.

7. Se extrae sangre de un brazo con hematoma extenso. ¿Cuál es la alteración más probable en bioquímica sérica?. Falsamente bajo sodio. Falsamente bajo glucosa. Falsamente elevado potasio. No hay efecto significativo.

8. Un paciente realiza ejercicio intenso 1 hora antes de la extracción de sangre para pruebas hepáticas. ¿Cuál es el efecto preanalítico más probable?. Disminución de AST. No hay efecto sobre enzimas hepáticas. Hipoglucemia aparente. Aumento de AST, ALT y CK.

9. Un paciente llega para extracción de sangre. Durante la preparación, el técnico accidentalmente aplica presión excesiva en el sitio de punción y agita vigorosamente el tubo antes de procesarlo. ¿Cuál de los siguientes analitos es más probable que se vea falsamente elevado debido a este error preanalítico?. Glucosa en ayunas. Sodio sérico. Creatinina. Lactato deshidrogenasa (LDH).

10. Seleccione los departamentos básicos de un laboratorio. Uroanálisis, coproanalisis y biología molecular. Biología molecular, hematología y química clínica. Inmunología, microbiología y Patología. Química clínica, hematología, microbiología, uroanálisis y coproanálisis.

11. El trabajo en el laboratorio clínico se clasifica en tres grandes grupos temáticos: Preanalítica, analítica y post analítica. A Y B son correctas. análisis de muestras Y entrega de resultados. Ninguna es correcta.

12. Nombre del utensilio que se ocupa para cultivar bacterias utilizado en el área de microbiología. Tubo de ensayo. Asa bacteriológica. Mechero de bunsen. Jeringuilla.

13. ¿Cuál de los siguientes factores preanalíticos puede causar hemólisis durante la toma de muestra sanguínea?. Uso de torniquete por menos de 30 segundos. Extracción con aguja de calibre adecuado y técnica correcta. Mezclado vigoroso de la muestra o succión fuerte durante la punción. Reposo del paciente previo a la extracción.

14. El orden correcto de llenado de los tubos de extracción de sangre evita: La contaminación cruzada de aditivos. La formación de coágulos en todos los tubos. La hemólisis únicamente en tubos de gel. Que la muestra esté lipémica.

1. En una anemia ferropénica típica se observa disminución del VCM, disminución de la HCM y aumento del RDW. V. F.

2. La prueba de tiempo de protrombina (TP) evalúa principalmente la vía intrínseca de la coagulación. V. F.

3. La prueba de tiempo de protrombina (TP) evalúa principalmente la vía intrínseca de la coagulación. V. F.

4. La presencia de neutrófilos con hipersegmentación nuclear en el frotis sanguíneo es característica de anemias megaloblásticas. V. F.

5. Los leucocitos neutrófilos en un frotis citológico muestran núcleo segmentado y son los primeros en responder a infecciones bacterianas agudas. . V. F.

6. La detección de anticuerpos IgM frente a un patógeno específico indica infección reciente o aguda, mientras que la presencia de IgG indica inmunidad pasada o infección crónica. . V. F.

7. La aglutinación pasiva en serología utiliza partículas inertes recubiertas con antígeno para detectar anticuerpos en suero del paciente. V. F.

1. Instrucciones: Empareje el hallazgo (Columna A) con la interpretación fisiopatológica (Columna B). RDW elevado con VCM disminuido. Esquistocitos en frotis periférico. Reticulocitosis con hemoglobina baja. VCM elevado + neutrófilos hipersegmentados. CHCM elevada.

2. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. CK-MB. Troponina I cardíaca. LDH1. Mioglobina. BNP.

3. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Células T reguladoras (Tregs). Interleucina-12 (IL-12). Complejo mayor de histocompatibilidad clase II (MHC II).

4. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Ácido úrico. Colesterol total. Triglicéridos. Alanina aminotransferasa (ALT/TGP). Aspartato aminotransferasa (AST/TGO).

5. Instrucciones: Empareje cada hallazgo bioquímico (Columna A) con su interpretación clínica más probable (Columna B). Creatinina elevada. Urea elevada con creatinina normal. Hipernatremia. Hipopotasemia. Bicarbonato bajo.

1. La presencia de cilindros granulosos oscuros y epiteliales degenerados en el sedimento urinario, junto con proteinuria no selectiva, sugiere: Infección urinaria baja. Nefropatía glomerular crónica. Necrosis tubular aguda. Litiasis renal.

2. En orinas acidificadas, la presencia de cristales en forma de aguja agrupados en “puntas de lanza” es característico de: Oxalato de calcio monohidratado. Fosfato triple. Cistina. Ácido úrico.

3. La leucocituria significativa con ausencia de bacterias en el sedimento urinario puede indicar: Contaminación de la muestra. Infección viral del tracto urinario. Enfermedad intersticial renal. Litiasis urinaria.

4. El hallazgo de cristales de amonio-magnesio-fosfato (triple fosfato) en orina alcalina sugiere principalmente: Infección por bacterias ureasa-positivas. Nefrolitiasis por oxalato. Deshidratación fisiológica. Proteinuria glomerular.

5. La técnica de flotación con solución salina o azúcar concentrada es más útil para detectar: Trofozoítos de Giardia. Ooquistes de Cryptosporidium. Huevos de helmintos ligeros como Enterobius. Quistes de Entamoeba histolytica.

6. La observación de ooquistes de Cryptosporidium spp. en heces requiere preferentemente: Examen fresco con luz normal. Técnicas de concentración y tinción ácido-resistente. Tinción de Gram. Cultivo en medio selectivo.

7. La combinación de técnicas de sedimentación y flotación en coproparasitario permite: Mejorar la recuperación de diferentes tipos de huevos y. Sustituir el examen microscópico directo. Detectar únicamente protozoos. Evitar la necesidad de tinciones especiales.

8. Un paciente tiene los siguientes resultados: • Glucosa: 55 mg/dL • Sodio: 128 mmol/L • Potasio: 6.2 mmol/L ¿Cuál es la interpretación más probable?. Hiperglucemia con deshidratación. Hipoglucemia con alteraciones electrolíticas graves. Síndrome nefrótico. Insuficiencia hepática aguda.

9. En un frotis de sangre periférica, la presencia de neutrófilos con núcleos segmentados y granulación citoplasmática normal indica: Leucemia mieloide aguda. Linfoma. Plaquetario aumentado. Respuesta inflamatoria normal.

10. La trombocitopenia inducida por fármacos se caracteriza por: Conteo plaquetario normal con agregación excesiva. Conteo plaquetario disminuido con riesgo de hemorragia. Aumento de plaquetas gigantes funcionales. Producción acelerada de plaquetas sin alteraciones clínicas.

11. En la anemia hemolítica microangiopática, un hallazgo característico en el frotis periférico es: Células grandes. Esferocitos pequeños. Esquistocitos (fragmentos eritrocitarios). Macrocitos hipercromáticos.

12. La prueba de Coombs directa se utiliza para: A) Detectar anticuerpos libres en el plasma. B) Medir niveles de hemoglobina intracelular. C) Detectar anticuerpos o complemento adheridos a la superficie de los eritrocitos. D) Evaluar la agregación plaquetaria.

13. ¿Cuál de las siguientes inmunoglobulinas es la principal en la respuesta inmune primaria?. IgG. IgA. IgM. IgE.

1. En hematología, la desviación estándar (SD) y el coeficiente de variación (CV) calculados a partir de controles de rutina permiten evaluar la precisión del método, mientras que la media de los controles indica la exactitud. V. F.

2. La participación en programas de control de calidad externo (proficiency testing) garantiza automáticamente la exactitud de todos los resultados clínicos del laboratorio, sin necesidad de controles internos diarios. V. F.

3. El uso de gráficos de Levey-Jennings combinados con reglas de Westgard permite detectar errores sistemáticos y aleatorios, y la violación de más de una regla simultáneamente indica necesidad de investigar inmediatamente el proceso analítico. V. F.

4. La incertidumbre de la medición en un método analítico incluye componentes provenientes tanto de la imprecisión aleatoria como de fuentes sistemáticas de error, por lo que su estimación es importante para interpretar la confiabilidad del resultado reportado al clínico. V. F.

5. La comparación inter-laboratorios se utiliza únicamente para evaluar la precisión analítica de un método y no tiene utilidad para identificar sesgos sistemáticos entre laboratorios. V. F.

6. El concepto de Six Sigma aplicado al laboratorio clínico se basa en la relación entre el error total permitido, el sesgo del método y la imprecisión analítica para evaluar el desempeño global del proceso. V. F.

7. La repetibilidad y la reproducibilidad son sinónimos en validación analítica y describen exactamente el mismo tipo de variabilidad de medición. V. F.

1. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Error sistemático. Control externo de calidad. Gráfico de Levey-Jennings.

2. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Reglas de Westgard. Coeficiente de variación (CV). Control interno de calidad.

3. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Sigma metric. Tendencia (trend). Sesgo positivo persistente. Desviación estándar (SD). Gráfico de Levey-Jennings.

4. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Error aleatorio. Error sistemático. Regla 4-1s. Delta check. TEa (Error total permitido).

1. En un laboratorio clínico, el gráfico de Levey-Jennings se utiliza principalmente para: Medir la concentración exacta de un analito en muestras de pacientes. Evaluar la variabilidad y el control de calidad de un procedimiento analítico. Determinar la prevalencia de enfermedades en la población. Sustituir la participación en programas de control externo.

2. ¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre las reglas de Westgard es correcta?. Una sola violación de la regla 1-2s siempre indica un error crítico. La regla 1-3s se utiliza para detectar errores aleatorios significativos. La regla 2-2s indica un posible error sistemático y requiere investigación. Las reglas de Westgard reemplazan la necesidad de controles internos diarios.

3. El coeficiente de variación (CV) en un control de laboratorio se utiliza para: Evaluar la igualdad del método. Reemplazar los controles externos. Determinar la concentración de un analito desconocido. Evaluar la precisión del método.

4. En control de calidad externo, un laboratorio obtiene resultados muy distintos al grupo de referencia. ¿Qué debe hacer?. Ignorarlos si el control interno está en rango. Revisar procedimientos, calibraciones y personal antes de emitir resultados. Ajustar los resultados para coincidir con la media. Suspender el control externo.

5. En un laboratorio clínico, el gráfico de Levey-Jennings se utiliza principalmente para: Evaluar la variabilidad y el control de calidad de un procedimiento analítico. Medir la concentración exacta de un analito en muestras de pacientes. Determinar la prevalencia de enfermedades en la población. Sustituir la participación en programas de control externo.

6. ¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre las reglas de Westgard es correcta?. Una sola violación de la regla 1-2s siempre indica un error crítico. La regla 1-3s se utiliza para detectar errores aleatorios significativos. La regla 2-2s indica un posible error sistemático y requiere investigación. Las reglas de Westgard reemplazan la necesidad de controles internos diarios.

7. En control de calidad externo, un laboratorio obtiene resultados muy distintos al grupo de referencia. ¿Qué debe hacer?. Ignorarlos si el control interno está en rango. Ajustar los resultados para coincidir con la media. Revisar procedimientos, calibraciones y personal antes de emitir resultados. Suspender el control externo.

8. Un método analítico presenta alta precisión, pero baja exactitud. Esto significa que: Los resultados son cercanos al valor verdadero, pero con alta dispersión. Los resultados son reproducibles, pero se alejan sistemáticamente del valor verdadero. El método no tiene error sistemático. El método presenta solo error aleatorio.

9. Durante la revisión de un gráfico de control se observa que siete puntos consecutivos se encuentran en el mismo lado de la media, aunque dentro de ±2SD. Esto sugiere: Error aleatorio. Error de transcripción. Funcionamiento óptimo del método. Error sistemático o desplazamiento del método.

10. El propósito principal de la calibración analítica en un instrumento de laboratorio es: Establecer la relación entre la señal del instrumento y la concentración del analito. Reducir el error aleatorio del método. Sustituir el control interno de calidad. Eliminar la variabilidad biológica del paciente.

11. Durante la validación de un método analítico, la exactitud se evalúa comúnmente mediante: Repeticiones múltiples de una misma muestra. Comparación con un método de referencia o material certificado. El cálculo del coeficiente de variación. La aplicación de reglas de Westgard.

12. Cuando un laboratorio implementa un nuevo método analítico, la primera actividad de control de calidad que debe realizar es: Aplicar reglas de Westgard inmediatamente. Comparar únicamente con controles comerciales. Reportar resultados directamente a pacientes. Verificar precisión y sesgo bajo condiciones del laboratorio.

13. En un gráfico de Levey-Jennings, si un resultado de control cae fuera de ±3 desviaciones estándar, según las reglas de Westgard esto generalmente indica: Variación biológica normal. Necesidad de repetir el control externo. Resultado clínicamente crítico del paciente. Probable error analítico significativo.

14. En un método analítico, el error total permitido (TEa) representa: La suma del error sistemático y el error aleatorio aceptable para un analito. La desviación estándar del método. La concentración promedio del analito. El número total de controles realizados.

1. Los hongos levaduriformes se observan típicamente como hifas septadas en frotis de laboratorio clínico. V. F.

2. En un frotis Gram de una muestra respiratoria, la presencia de cocos Gram positivos en cadenas junto con leucocitos polimorfonucleares sugiere Streptococcus pneumoniae como posible agente infeccioso. V. F.

3. La tinción de Ziehl-Neelsen permite identificar micobacterias ácido-alcohol resistentes en frotis clínicos, pero no distingue entre Mycobacterium tuberculosis y otras micobacterias no tuberculosas. V. F.

4. La PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa) requiere ADN molde, primers, nucleótidos y polimerasa, pero no es sensible a la temperatura de los ciclos de desnaturalización, alineamiento y extensión. V. F.

5. El ARN mensajero (ARNm) transcrito a partir del ADN se traduce directamente en proteínas sin necesidad de ribosomas ni factores de traducción. V. F.

6. La PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa) permite amplificar segmentos específicos de ADN a partir de cantidades mínimas, y requiere ADN molde, primers, nucleótidos, polimerasa y ciclos de temperatura. V. F.

7. El cariotipo humano normal tiene 46 cromosomas: 22 pares de autosomas y 2 cromosomas sexuales, XX en mujeres y XY en hombres. V. F.

1. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Strongyloides stercoralis (larva filariforme). Entamoeba histolytica (quiste). Trichuris trichiura (huevo bipolar).

2. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Prueba de aglutinación directa. Western blot. Anticuerpos IgM vs IgG en infecciones.

3. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. Prueba de Coombs indirecta. Titulación de anticuerpos. VDRL (Venereal Disease Research Laboratory).

4. Empareja los términos de la columna A con la descripción correcta de la columna B. PCR en tiempo real (qPCR). RFLP (Polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción). Electroforesis en gel de agarosa.

Empareje cada bacteria (Columna A) con su característica de laboratorio más relevante (Columna B). Escherichia coli. Staphylococcus aureus. Pseudomonas aeruginosa. Streptococcus pyogenes. Clostridium perfringens.

1. ¿Cuál de los siguientes mecanismos es principalmente responsable de la resistencia a antibióticos β-lactámicos en bacterias gramnegativas?. Alteración de la bomba de protones. Producción de β-lactamasas. Mutación en el ribosoma 30S. Inhibición de la síntesis de ácido fólico.

2. La formación de biofilm por Pseudomonas aeruginosa en catéteres urinarios se asocia principalmente con: Protección frente a la respuesta inmune del huésped. Mayor sensibilidad a antibióticos. Eliminación rápida del patógeno del catéter. Inhibición de la adhesión bacteriana.

3. En el cultivo de anaerobios estrictos, ¿cuál de los siguientes factores es más crítico para su crecimiento?. Alta concentración de oxígeno. Ausencia de oxígeno y presencia de agentes reductores. pH alcalino y aerobiosis parcial. Luz ultravioleta para activación.

4. La tinción de Ziehl-Neelsen se utiliza principalmente para: Visualizar bacterias Gram positivas. Detectar micobacterias ácido-alcohol resistentes. Diferenciar levaduras de hongos filamentosos. Observar esporas bacterianas.

5. En la tinción de Wright-Giemsa de un frotis sanguíneo, la observación de cuerpos de Howell-Jolly indica principalmente: Infección bacteriana activa. Deficiencia de vitamina B12. Leucemia mieloide crónica. Esplenectomía funcional o deficiencia esplénica.

6. La toxina termolábil de Escherichia coli enterotoxigénica (ETEC) actúa principalmente mediante: Inhibición de la síntesis proteica en ribosomas. Activación de la adenilato ciclasa y aumento de AMPc. Lisis de células intestinales por peroxidación. Bloqueo de canales de potasio en neuronas.

7. En la prueba de complemento (CH50), se mide: La concentración de anticuerpos IgG en suero. La actividad total del sistema del complemento a través de lisis de eritrocitos sensibilizados. La capacidad fagocítica de los neutrófilos. La proliferación de linfocitos T.

8. La técnica de PCR permite: Secuenciar proteínas. Amplificar fragmentos específicos de ADN para diagnóstico genético. Analizar exclusivamente ARN ribosomal. Detectar únicamente mutaciones cromosómicas grandes.

9. La anemia falciforme se produce por: Deleción de todo el cromosoma 11. Trisomía del cromosoma 21. Expansión de tripletes CGG en el gen FMR1. Mutación puntual en el gen de la β-globina que provoca sustitución de glutamato por valina.

10. ¿Cuál de las siguientes características distingue principalmente a Staphylococcus aureus de otros estafilococos coagulasa-negativos?. Es Gram negativa. Produce coagulasa positiva. Forma esporas. Es anaerobia estricta.

11. La prueba de catalasa permite diferenciar: Bacilos Gram negativos de Gram positivos. Micrococos de Corynebacterium únicamente. Estreptococos (catalasa negativa) de estafilococos (catalasa positiva). Enterobacterias productoras de β-lactamasa.

12. En un frotis de piel con KOH 10% se observan hifas septadas y células redondeadas con cápsula. ¿Cuál es la interpretación más probable?. Candida albicans. Artefacto del frotis. Aspergillus únicamente. Infección por dermatofitos y Cryptococcus (mixta).

13. Para cultivo de heridas profundas, ¿cuál es la forma más adecuada de tomar la muestra para obtener resultados confiables?. Frotis superficial de la piel circundante. Recolectar pus de la superficie con hisopo estéril. Mezclar secreciones con suero fisiológico antes del envío. Aspirado o biopsia de tejido profundo, evitando pus superficial.