AP 1

Señala la incorrecta: El material histologico proviene normalmente de cadaveres. El material histologico proviene de invividuos sanos. El material anatomopatologico proviene de invididuos sanos. El material anatomopatologico proviene de necropsias, biopsias, extensiones citologicas y patologia experimental.

Cual No es un tipo de muestra que provenga de un material anatomopatologico: Biopsias y necropsias. Cadaveres. Extensiones citologicas. Muestras para estudios experimentales.

Que colorante usaremos en una tincion supravital: Azul de metileno. Azul de tolouidina. Azul de tripan. Hay mas de una opcion correcta.

Que tipo de estudio se realiza sobre celulas vivas unidas al organismo: Tincion vital. Tincion supravital. Tincion postvital. Todas con correctas.

Señala la incorrecta sobre las tinciones postvitales: No se hara fijacion quimica. Usaremos Isopentano -50C. En el estudio inmunohistoquimico aparecen fragmentos cuboidales. Para el estudio en microscopia electronica usaremos glutaraldehido 2,5%.

Que tecnica sirve para diferenciar celulas vivas y muertas: Vital. Supravital. Postvital. Ninguna de las anteriores.

Señala la incorrecta: Una bipsia es una porcion de un tejido vivo, y existen 2 tipos (diagnostica y extemporanea). Una pieza quirurgica incluye la totalidad de una lesion u organo. Una biopsia intraoperatoria se remite en fresco sin fijar pero se mantiene en gasas humedas con suero fisiologico. Todas son correctas.

La prostata es una organo que se incluye en su totalidad, en un cassette incluiremos colo maximo: 1 gr. 0,5 gr. 2 gr. 2,5 gr.

La tinta china usada para marcas los limites de reseccion quirurgica, se fijara con: Acido acetico. Acido formico. Acido cromico. Ninguna es correcta.

Las zonas de tejido que incluiremos en un cassette durante el estudio macroscopico no deben superar los: 2 cm. 0,5 cm. 1 cm. 1,5 cm.

Señala la incorrecta: La fijacion habitual se realiza con formol al 10%. La proporcion respecto a la muestra y el fijador es 1:10. La fijacion se hace a pH=neutro. Todas son correctas.

Cuales son las medidas de un portaobjetos: 26x76x1,2 mm. 22x74x1,3 mm. 28x76x1,3 mm. 23x73x1,2 mm.

El proceso que consiste en interrumpir el proceso de degradacion que aparece tras la mueste celular tratando de conservar la arquitectura y composicion se denomina: Fijacion. Deshidratacion. Aclaramiento. Inclusion.

La imagen equivalente, señala la incorrecta: Aparece antes de la fijacion. Debe tener constancia y repsoductibilidad. Puede tener artefactos. Ninguna es incorrecta.

Cual NO es un principio general de la fijacion: El metodo universal de fijacion es el formol 10%. No todos los fijadores conservan indefinidamente. Un defecto de fijacion no puede ser corregido. Una mala fijacion provoca retraccion y desgarres en el tejido.

A que concentracion se debe hacer la fijacion para evitar retraccion o desgarres en el tejido: 300 mili moles. 600 mili moles. 400 mili moles. 500 mili moles.

Señala la incorrecta: A un organo solido se le realizan cortes seriados sin trasfisiarlos por completo. Una lesion quistica se fija directamente en formol 10%. Piezas milimetricas las teñire con hematoxilina o mercurio romo y usare cestillas especificas. Miembros enteros amputados congelare previamente para cortes transversales.

Que tipo de muestra fijare e incluire directamente: Piezas pequeñas. Piezas milimetricas. Piezas de gran tamaño. Lesiones quisticas.

Que nos permiten las fijaciones por metodos fisicos: Estudios morfologicos. Estructura antigenica. Contenido enzimatico. Todas son correctas.

El propilenglicol -40C es un tipo de fijacion: Quimica por deshidratacion tisular. Fisica por criosustitucion. Fisica por liofiliacion. Fisica por criodesecacion.

El isopentano a -50C, lo guardare a: -70C. -80C. -50C. -60C.

Que mecanismo fisico de fijacion requiere 2 manipulaciones del tejido: Liofiliacion. Criodesecacion. Criosustitucion. Hay mas de una opcion correcta.

Cual NO es un mecanismo de fijacion quimica: Deshidratacion tisular. Criosustitucion Isopentano -40C. Formacion de sales en los tejidos. Reticulacion de las proteinas.

Que fijador que actua por deshidratacion tisular preserva glucogeno y la actividad de algunas enzimas, ademas de precipitar el glucogeno y proteinas: Alcohol etilico. Alcohol metilico. Acetona. Cloroformo.

Que corresponde a la estructura quimica CH3CH2OH: Alcohol etilico. Acetona. Acido acetico glacial. Acido picrico.

Que fijador pierde actividad progradivamente: Alcohol etilico. Formol. Ambos son correctos. Ninguna es correcta.

Señala la incorrecta: El alcohol metilico provoca el fenomeno de desplazamiento de sustancias. La acetona es un fijador ideal para la estructura antigenica. El acido picrico es incompatible con la celoidina. El dicromato potasico fija limpidos complejos (reaccion cromafin).

Que fijador no puede actuar mas de 2h y a -40C disuelve las grasas: Alcohol etilico. Acetona. Acido picrico. Cloroformo.

Que fijador es exclusivo para extensiones hematologicas: Alcohol metilico. Acido picrico. Acido acetico. Todas se pueden usar para extensiones hematologicas.

Señala la incorrecta: El acido acetico en estado puro se conoce como glacial. El acido acetico tiene una composicion quimica CH3COOH. Fija estructuras nerviosas. Destruye mitocondrias y es mal fijador para membranas.

Cual es el punto isoelectrico de las proteinas: 5,8. 5,6. 5,4. 5,7.

Que fijador es incompatible con formol y alcoholes y puede producir una impregnacion de color verdoso: Acido cromico. Acido picrico. Acido acetico. Acido tricloroacetico.

Que fijador es el de eleccion para patologias renales y hematologicas: Cloruro de mercurio sublimado. Dicromato potasico. Acido picrico. Acido cromico.

Señala la incorrecta sobre el cloruro de mercurio: Excelente fijador para caracteristicas morfologicas. Eleccion para patologia renal y hematologica. En necrosis produce intensa basofilia citoplasmatica. Provoca precipitados metalicos de color pardo.

Que fijador usamos para lipidos complejos (reaccion cromafin) y lavamos con solucion salina o tamponada: Dicromato potasico. Acido cromico. Acido tricloroacetico. Formol 10%.

Señala la correcta sobre el acido picrico: Actua por reticulacion de las proteinas. Poder decalcificante leve. Compatible con parafina y celoidina. Actua por deshidratacion del tejido.

Señala la incorrecta sobre el formol: Su formula quimica es CHOH. Se suele usar al 10%. Su concentracion habitual es 4%. Todas son correctas.

Que fijador estructura es el mejor para microscopia electronica: Tetraoxido de osmio. Glutaraldehido 2,5%. Acetato de uranilo. Formol tamponado 10%.

Que fijador es incompatible con el formol y la tincion PAS, ademas de inactivar enzimas: Tetraoxido de osmio. Glutaraldehido (1-3%). Acido cromico. Acido picrico.

Que fijador puede producir nucleos fantasmas: Formol 10%. Acido formico. Acido acetico. Glutaraldehido 2,5%.

Que compuesto NO contiene el liquido de Bouin: Formalina. Acido acetico glacial. Acido picrico. Acetato neutro de cobre.

Que mezcla fijadora usaremos para prganos quebradizos como la piel, testiculos o tejido embrionario: Bouin. Bouin Hollander. Bouin alcoholico / Dubosq-Brasil. Podemos usar cualquiera de ellos.

Señala la incorrecta sobre liquido de Bouin: Podemos usarlo para fijar biopsias renales. Tiempo de fijacion de 4-24h. Se lava despues con alcohol 70. Es la alternativa a la formalina.

Que tipo de mezcla fijadora tiene en su composicion acetato neutro de cobre, se suele usar para medulas oseas y su tiempo de fijacion es de 48-72h: Bouin. Bouin Hollander. Bouin alcoholico. Bouin Dubosq-Brasil.

Señala la incorrecta: Bouin lo lavaremos con alcohol 70. Bouin Hollander lo lavaremos con alcohol. Gendre lo lavaremos con alcoholes crecientes. B5 / zenker-formol / liquido de helly lo lavaremos con agua corriente y no se fijara mas de 4h.

El bouin alcoholico: Tiene en su composicion alcohol etilico 80. Tiene en su composicion alcohol etilico 70. Tiene en su composicion alcohol metilico 80. Tiene en su composicion alcohol metilico 80.

Que mezcla fijadora fija glucogeno y pigmentos derivados de la hemoglobina: Liquido de Bouin. Liquido de Gendre. Liquido de Muller. Liquido de Orth.

Señala la incorrecta sobre la mezcla fijadora Muller: Posee dos sales (dicromato potasico 2,5% + sulfato sodico) + agua destilada. A partir de él, formamos el liquido de Orth y de Zenker. Se lava con alcohol 70. Todas son correctas.

Que mezcla fijadora tiene estas caracteristicas: - Sirve para demostrar reaccion cromafin - Fija bien tejido nervioso - Se lava con agua corriente - Fijacion tiempo 48h - Se conserva con alcohol 70 - Posee formalina concentrada. Orth. Bouin. Carnoy. Muller.

Cual de estas mezclas fijadoras no contienen formol en su composicion: Zenker. Carnoy. Ambos no tienen formol. Ambos tienen formol.

Cual es el mejor fijador para el glucogeno: Carnoy. Zenker. Formol 10%. Helly.

Señala la incorrecta sobre la descalcificacion: Relacion volumen 1:20. Temperatura ideal 25C. No aconsejado para enfermedades oseas metabolicas. Todas son correctas.

Cual de estos NO es un acido decalcificador inorganico: Acido formico. Acido nitrico. Acido clorhidrico. Acido sulfuroso.

Que decalcificador es el mas usado, cuyo tiempo medio es de 1-3 dias y necesita neutralizacion con sulfato sodico al 5% y agua destilada: Formalina-acido nitrico. Acido nitrico. Acido formico. Acido tricloroacetico.

Que decalcificador no necesita neutralizacion ni maceracion tisular y ademas es incompatible con las pruebas rutinarias de decalcificacion: Liquido de Perenyi. Acido formico. Acido nitrico. Formalina-acido nitrico.

Sobre el acido tricloroacetico: Fija y decalcifica a la vez. Es una solucion acuosa al 100%. Necesita lavado con alcohol 70. Todas son correctas.

La solucion de Schmorl y la de Kajin, se usan en el decalcificador: Acido formico. Acido nitrico. Formalina-acido nitrico. Liquido de Perenyi.

Que decalcificador es especifico para dientes: Solucion acuosa de acido formico. Acido formico. Acido nitrico. Cualquiera se puede usar.

La solucion de Goodingy y de Stewart, señala la incorrecta: Mezcla acido formico y formalina. Mezcla acido formico y formol. Se usa para piezas oseas. Decalcifica de 5 a 6 dias.

Que soluciones fijadoras tienen poder decalcificante: Bouin. Bouin Hollander. Zenker. Todas tienen poder decalcificante leve.

El citrato sodico y el hexametafosfato son: Decalcificadores por sales sodicas. Decalcificadores fisicos. Decalcificadores quimicos. Decalcificadores por sales neutras.

La decalcificacion la puedo acelerar usando: Agitacion. Adicion resina EDTA. Ultrasonido (quimica). Todas son correctas.

Temperatura ideal para la decalcificacion por electrolisis (interfieren dos corrientes electricas continuas): 30-45C. 20-25C. 25-35C. Ninguna es correcta.

La prueba de control para la decalcificacion, mediante control quimico usamos el oxalato calcico, el resultado no es fiable si hay mas de 10% de acidos, en ese caso q haremos con el bloque de parafina: Sumergirlo en liquido de Perenyi. Sumergirlo en acido formico 50%. Sumergirlo en solucion Endrum HCl 2%. Todas son correctas.

Una decalcificacion no tendra un resultado fiable si: >10% acidos. >20% acidos. < 10% acidos. < 20% acidos.

En la patologia vascular y cardiaca, es super importante un proceso, para evitar la perdida de coagulos, de que proceso se trata: Tallado / muestreo. Aclarado. Fijacion. Inclusion.

Señala la incorrecta sobre la coloracion de los cassettes: Azul para muestra diagnostica (gastrica). Amarillo para urgentes y tumores. Verde para infecciones. Naranja para urgentes.

El grosor de la pieza para incluir en un cassete tendra un tamaño de: 1 a 3 cm. 3 a 5 cm. Inferior a 2 cm. Superior a 5 cm.

Para la deshidratacion usaremos normalmente alcohol etilico tanto en microscopia optica como el eletronica: Si por norma general. No, para microscopia electronica usaremos acetona. No, para la deshidratacion usaremos normalmente xileno. No, usaremos alcohol metilico.

Señala la incorrecta: La deshidratacion consiste en la eliminacion del agua de la pieza en alcoholes crecientes. El aclaramiento consiste en sustituir el agente deshidratante por una sustancia miscible con el medio de inclusion. En el aclaramiento normalmente usaremos xilol, aunq tambien podemos usar cloroformo. Ninguna es incorrecta.

La celoidina (ditrato celulosa) es soble en;. Agua. Alcohol-eter 50%. Benzoato de metilo. Hay mas de una opcion correcta.

Que medio de inclusion se utiliza para piezas grandes, a una temperatura de 37C y no hace falta deshidratar el tejido: Parafina. Celoidina. Gelatina. Resina.

Que medio de inclusion se describe como "plexiglas" por ser muy duro y requerir metacrilato de butilo, y ademas, los cortes no superan 1 micra: Parafina. Celoidina. Gelatina. Resinas.

Señala la incorrecta: Para tejido conjuntivo y musculo usare celoidina. Para ojos usare gelatina. Para huesos, dientes y cartilago usare celoidina-parafina o parafina dura. Para lipidos y tejidos con mucha agua usare gelatina.

El metacrilato como medio de inclusion lo usare en: Cortes ultrafinos. Ojos. Glucogeno y tejido nervioso. Lipidos.

Señala la incorrecta: La solicificacion del bloque de parafina se realiza entre 10-15C. El corte del bloque se realiza entre 10-15C. La camara de congelacion del criostato esta a -20C. Todas son correctas.

En el criostato realizaremos cortes de: 3-4 micras. 4-6 micras. 10 micras. 8 micras.

Que decreto regula la policia sanitaria mortuoria: 2263 / 1974, 20 julio. 2263 / 1974, 21 julio. 2465 / 1978, 20 julio. 2465 / 1978, 21 julio.

La ley de suelo de residuos contaminados, a que grupo de la clasificacion de residuos pertenece: Grupo 1: asimilables a urbanos. Grupo 3: residuos peligrosos sanitarios. Grupo 6: citostaticos. Grupo 5: quimicos.

Señala la incorrecta: Principal riesgo quimico en el laboratorio de anatomia el formol y el xilol. Iluminacion de la sala de tallado es de 100 lux. Residuos grupo 1 bolsas color negro, grupo 2 marron y grupo 3 rojo. Si se vierte fomol al fregadero se lavara con abundante agua.