BIOLOGIA MOLECULAR

Se denomina medio de cultivo a: Un gel sólido sin nutrientes. El conjunto de nutrientes y factores de crecimiento que forman de manera artificial, condiciones idóneas para microorganismos. Solo extractos vegetales. Solo agua destilada y sales.

El agar en un medio de cultivo se utiliza para: Proporcionar nutrientes. Actuar como gelificante y dar solidez al cultivo. Mantener el pH. Inhibir el crecimiento de microorganismos.

Los extractos en un medio de cultivo: Son compuestos químicos sintéticos. Son tejidos animales o vegetales deshidratados en polvo para simular un medio natural. Solo se usan para cultivos anaerobios. Inhiben bacterias no deseadas.

Las peptonas son: Mezclas de compuestos orgánicos y sales minerales obtenidas mediante digestión enzimática o química. Agentes reductores. Indicadores de pH. Gelificantes.

Los fluidos corporales en el medio de cultivo: Ajustar la solidez. Sangre o plasma para conseguir las condiciones del organismo a cultivar. Reducir oxígeno. Mantener el pH.

Los sistemas amortiguadores se utilizan en cultivos para: Mantener el pH óptimo para su crecimiento. Inhibir microorganismos. Dar solidez. Aumentar la temperatura.

El indicador de pH se usa en medios de cultivo para: Detectar variaciones de pH. Aumentar la concentración de nutrientes. Gelificar el medio. Reducir oxígeno.

Los agentes reductores en un medio de cultivo permiten: Mantener condiciones aerobias. Simular ambientes anaerobios o con oxígeno reducido. Inhibir todos los microorganismos. Cambiar el color del medio.

Los agentes selectivos se usan para: Inhibir el crecimiento de algunos microorganismos y favorecer otros. Mantener pH estable. Gelificar el medio. Proporcionar fluidos corporales.

¿Cuál de estas afirmaciones es incorrecta sobre los componentes del medio de cultivo?. El agar proporciona solidez. Los extractos simulan un medio natural. Los agentes reductores simulan anaerobiosis. Los agentes selectivos siempre permiten crecer a todos los microorganismos.

Actualmente, la gran mayoría de los medios de cultivo se comercializan: Líquidos y listos para usar. Liofilizados. Congelados. En placas Petri ya preparadas.

Para preparar un medio de cultivo liofilizado, la rehidratación debe hacerse: Con agua destilada en cualquier proporción. Con agua destilada en las proporciones indicadas por el fabricante. Con agua del grifo. Solo después de transferir a placas Petri.

¿Cuál de estas afirmaciones sobre la rehidratación es incorrecta?. Se utiliza agua destilada. Se sigue la proporción indicada por el fabricante. Se puede rehidratar sin medir el volumen. La rehidratación completa permite el crecimiento óptimo de microorganismos.

El objetivo principal de la esterilización del medio de cultivo es: Aumentar la solidez del agar. Asegurar la asepsia del cultivo. Mejorar el color del medio. Reducir nutrientes.

Después de esterilizar el medio, se debe: Transferir inmediatamente a las placas calientes. Dejar enfriar antes de usar. Añadir extractos vegetales. Rehidratar nuevamente.

Después de esterilizar un medio liofilizado, el siguiente paso es: Transferir el medio frío a placas Petri en ambiente aséptico. Rehidratar de nuevo. Mantener caliente antes de usar. Añadir agentes selectivos.

¿Por qué se conserva el medio a 4 °C antes de usarlo?. Para favorecer el crecimiento rápido. Para evitar deshidratación. Para esterilizar automáticamente. Para cambiar la solidez del agar.

¿Cuál de estas afirmaciones sobre el traslado del medio de cultivo a placas Petri es incorrecta?. Se realiza con el medio frío. Se conserva a 4 °C hasta su uso. Se realiza en ambiente aséptico. Se puede transferir al aire libre sin riesgo.

¿Cuál de estas afirmaciones sobre la transferencia del medio de cultivo es incorrecta?. Se realiza en ambiente aséptico. Se transfiere frío para evitar daño de nutrientes. Se puede transferir caliente sin riesgo. Se conserva a 4 °C hasta su uso.

Después de la esterilización, el medio de cultivo debe dejarse enfriar antes de transferirlo a las placas Petri porque: A 4 °C se conserva la esterilidad y se evita deshidratación. A 10 °C se evita la contaminación y mejora el crecimiento. A 25 °C es ideal para mantener nutrientes sensibles al calor. A 37 °C se asegura que el medio esté activo para el cultivo.

Un medio general se caracteriza por: Favorecer el crecimiento de distintos microorganismos. Inhibir el crecimiento de ciertos microorganismos. Diferenciar microorganismos según cambios visibles. Enriquecer microorganismos específicos.

Los medios selectivos: Solo permiten el crecimiento de todos los microorganismos. Favorecen el crecimiento de algunos microorganismos e inhiben otros. Permiten diferenciar microorganismos según cambios visibles. No tienen efecto sobre el crecimiento.

Un medio diferencial: Inhibe el crecimiento de microorganismos indeseables. Permite diferenciar microorganismos mediante cambios visibles en su crecimiento. Favorece el crecimiento de todos los microorganismos. Solo se usa para enriquecer microorganismos específicos.

Los medios de enriquecimiento: Favorecen el crecimiento de microorganismos específicos, pero no inhiben a otros. Inhiben a todos los microorganismos no deseados. Permiten diferenciar bacterias mediante cambios de color. Son medios generales.

Los cultivos histotípicos se caracterizan por: Constituir cultivos de un solo tipo celular y alta densidad similar a los tejidos. Tener varios tipos celulares intentando simular la estructura original. Ser muy fáciles de mantener. Requerir solo líquido sin soporte sólido.

Los cultivos organotípicos: Constituyen un solo tipo celular. Constan de varios tipos celulares intentando simular la estructura original. No necesitan soporte sólido ni interfase líquido-gas. Son más simples que los histotípicos.

La técnica de cultivo de órganos se realiza: Solo líquido. Dejando el órgano en una rejilla en interfase líquido-gas o líquido-sólido, obteniendo los nutrientes. Directamente en incubadora sin soporte. Medio general líquido a temperatura ambiente.

Un cultivo celular primario se realiza a partir de: Explante de tejidos, órganos o células disgregadas. Solo células madre ya diferenciadas. Medio de cultivo liofilizado. Bacterias.

Las células en un cultivo primario: No se reproducen. Se reproducen y proliferan en el medio de cultivo. Solo crecen si son transformadas genéticamente. No requieren medio de cultivo.

En un cultivo en suspensión: Las células crecen adheridas a un soporte sólido. Las células crecen dispersas en el medio. Solo se utilizan células epiteliales. Requiere placas Petri especiales con agar.

El cultivo en monocapa se caracteriza por: Las células crecen adheridas a un soporte sólido apropiado para su proliferación. Las células crecen dispersas en el medio. Es exclusivo de células hematopoyéticas. No requiere nutrientes específicos.

El cultivo en suspensión es casi exclusivo de: Células epiteliales. Células hematopoyéticas y células madre. Células del hígado. Células fibroblásticas.

El subcultivo consiste en: Extraer unas pocas células de un cultivo primario a otro recipiente. Congelar las células sin moverlas. Añadir nutrientes al mismo recipiente. Mezclar células muertas con vivas.

La senescencia celular se produce cuando: Las células se dividen demasiado rápido. Los nutrientes se agotan y detienen su división. Las células se subcultivan. Se añade medio fresco.

En un cultivo adherido, las células se subcultivan: Simplemente transfiriendo el medio viejo al nuevo. Despegándolas mediante procedimientos enzimáticos o mecánicos (raspado) y sembrando un pequeño trozo en otro recipiente. Congelando todo el cultivo. Mezclando con células en suspensión.

En un cultivo en suspensión, para subcultivar se puede: Diluir en un medio nuevo o tranportar una pequeña cantidad del medio viejo a uno nuevo. Transferir las células adheridas directamente. Añadir células de otra especie. Raspar las células del fondo.

Para transportar un cultivo en suspensión de un medio viejo a uno nuevo: Se centrifuga el medio viejo, introducir un asa de siembra y transferir al medio nuevo. Se raspan células del fondo del tubo. Solo añadir medio fresco al mismo recipiente. Congelar el medio viejo sin centrifugar.

¿Cuál es el método de conservación más recomendable para detener completamente el ciclo celular?. Liofilización. Congelación a -140 °C con nitrógeno líquido y al 20 % con glicerol (para crioproteger la célula). Suspensión en agua destilada. Transferencia a medio fresco.

La congelación de células a largo plazo requiere que: La congelación y descongelación sean rápidas para asegurar el mantenimiento de las células. Se mantenga a temperatura ambiente. Solo se use glicerol al 5 %. No se utilice nitrógeno líquido.

¿Cuál de estas afirmaciones sobre la congelación de células a largo plazo es incorrecta?. Es muy costosa y con más riesgos. Permite parar el ciclo celular completo. Se realiza a -20 °C con glicerol. Es un método de conservación a largo plazo.

La liofilización consiste en: Congelar células y almacenarlas en nitrógeno líquido. Eliminar el agua de la muestra mediante liofilizadores. Suspender las células en agua estéril. Subcultivar células en monocapa.

¿Cuál es el almacenamiento típico de células liofilizadas?. -140 °C. -20 °C. 20 °C máximo 40 años. 4 °C.

La conservación de células en agua destilada permite mantener algunas células durante: Más de 5 años. Detener completamente el ciclo celular. Subcultivar sin riesgo de senescencia. Congelar las células automáticamente.

¿Cuál de estos métodos se usa típicamente para hongos filamentosos y algunas bacterias?. Congelación a -140 °C. Liofilización. Suspensión en agua destilada. Subcultivo adherido.

La conservación de células en agua destilada consiste en: Congelar las células a -140 °C. Suspender un corto número de células en agua estéril. Liofilizar las células. Transferir células adheridas a otro medio.

¿Cuál de estos métodos se considera de conservación a largo plazo?. Suspensión en agua destilada. Congelación y liofilización. Subcultivo adherido. Cultivo en monocapa.

¿Cuál de estas opciones es de conservación de células a corto plazo?. Congelación con glicerol a -140 °C. Liofilización a 20 °C. Suspensión en agua estéril de un pequeño número de células. Subcultivo en monocapa.

¿Cuál de estas opciones describe correctamente las fases de la liofilización?. Precongelar las células → Sublimación (elimina la mayor parte de agua) → Secado secundario (elimina el agua restante). Secado secundario → Sublimación del agua → Precongelar las células. Sublimación del agua → Precongelar las células → Secado secundario. Suspender las células en agua estéril → Precongelar → Secado secundario.

¿Cuál es el primer paso en el proceso de liofilización?. Secado secundario. Precongelar las células. Eliminar el agua por sublimación. Transferir células a medio fresco.

El paso de sublimación en la liofilización consiste en: Congelar las células. Eliminar la mayor parte del agua por sublimación. Eliminar toda el agua por secado secundario. Suspender células en agua estéril.

El secado secundario en la liofilización sirve para: Congelar las células. Transferir células a medio nuevo. Eliminar el agua restante después de la sublimación. Detener completamente el ciclo celular.

Los métodos de sacrificio celular incluyen: Inhibidores de crecimiento, ruptura de membrana y deshidratación. Solo ruptura de membrana y deshidratación. Congelación y liofilización. Subcultivo adherido, suspensión y monocapa.

El método de inhibidores de crecimiento consiste en: Romper la membrana celular por entrada excesiva de agua. Deshidratar la célula introduciéndola en un medio hipertónico. Detener la reproducción mediante inhibidores químicos. Congelar las células.

La ruptura de membrana provoca la muerte celular porque: Se detiene la reproducción. Entra un exceso de agua al interior de la célula por difusión pasiva. La célula carece de agua. Se añade un inhibidor químico.

La deshidratación como método de sacrificio celular: Provoca que la célula carezca de agua necesaria y muera al deshidratarse. Introduce agua excesiva al interior de la célula. Detiene la reproducción pero no mata. Solo funciona en células madre.

¿Cuál de estas afirmaciones sobre métodos de sacrificio celular es correcta?. Inhibidores de crecimiento detienen la reproducción mediante químicos. Ruptura de membrana ocurre por exceso de agua. Deshidratación ocurre por falta de agua. Todos los métodos son correctos.

El método de ruptura de membrana provoca la muerte celular porque: La célula carece de agua. Se detiene la reproducción. Se introduce un exceso de agua en la célula, rompe la membrana y por ende la muerte celular. Se añade un inhibidor químico.

¿Cuál es la principal diferencia entre ruptura de membrana y deshidratación?. Ruptura de membrana: escasez de agua; deshidratación: exceso de agua. Ruptura de membrana: exceso de agua en medio hipotónico; deshidratación: escasez de agua en medio hipertónico. Ruptura de membrana se realiza en medio hipertónico; deshidratación en medio hipotónico. No hay diferencia, ambos métodos usan inhibidores químicos.

Si queremos provocar la muerte celular por falta de agua, el método adecuado es: Ruptura de membrana. Deshidratación. Inhibidores de crecimiento. Subcultivo adherido.

Si queremos provocar la muerte celular por entrada excesiva de agua, el método adecuado es: Ruptura de membrana. Deshidratación. Inhibidores de crecimiento. Congelación.

Cuando se manipula una placa con cultivos celulares, se debe trabajar a: Menos de 25 cm del mechero Bunsen. Más de 50 cm del mechero. A temperatura ambiente. A 4 °C.

Al trabajar con cultivos en suspensión, acercar la boca del tubo al mechero sirve para: Enfriar el medio de cultivo. Desinfectar la boca del soporte de vidrio en el mechero Bunsen, al iniciar y al finalizar. Evitar la evaporación del medio. Romper la membrana celular.

Al introducir y extraer un utensilio en un cultivo: Incineración del utensilio y enfriamiento por unos segundos al iniciar y finalizar para evitar que mueran las células. Solo enfriamiento del utensilio. Añadir medio fresco al mismo recipiente. Transferir el utensilio sin esterilizar.

En la manipulación de cultivos celulares, la protección personal incluye: Guantes, bata y gafas. Solo bata. Solo guantes. No es necesaria ninguna protección.

¿Cuál es el primer paso para evitar la contaminación de la muestra?. Incinerar el utensilio. Desinfectar la boca del soporte de vidrio. Encender el mechero Bunsen y, si es necesario, usar la campana. Manipular la preparación.

Al manipular un utensilio en un cultivo, debemos: Sumergirlo directamente en el medio. Incinerarlo y dejar enfriar unos segundos. Lavar con agua destilada. Introducirlo sin ninguna precaución.

Antes de manipular la preparación, se deben desinfectar: Los guantes únicamente. Las manos. Solo la superficie del medio de cultivo. Ninguna parte.

Al finalizar la manipulación, debemos: Guardar el medio sin más precaución. Incinerar nuevamente el utensilio y desinfectar la boca del soporte. Solo cerrar la placa. Transferir a otro medio sin incinerar.

¿Cuál es el orden correcto de los pasos para evitar contaminación?. Desinfectar manos → manipular → incinerar utensilio → desinfectar boca del soporte. Encender mechero y campana si es necesario → desinfectar manos → incinerar utensilio → desinfectar boca del soporte → manipular → finalizar incinerando utensilio y desinfectando boca del soporte. Manipular → desinfectar manos → incinerar utensilio. Solo encender el mechero y manipular directamente.

El recuento celular se realiza en: Microscopio óptico simple. Cámara de Neubauer también llamado hemocitómetro. Placa Petri. Tubo de ensayo.

¿Cuál es la aplicación principal de la cámara de Neubauer?. Contar células en un volumen conocido. Determinar el pH del medio. Esterilizar muestras. Separar células por centrifugación.

Al contar células en la cámara de Neubauer, es importante: Contar solo en cualquier recuadro al azar. Diferenciar entre tipos celulares según los recuadros específicos. No usar microscopio. Realizar subcultivo antes del recuento.

La fórmula correcta para calcular leucocitos en la cámara de Neubauer es: C = N ⋅ 10 ⋅ dil. C = N ⋅ 10⁴ ⋅ dil. C = (N / 4) / 10 ⋅ dil. C = N ⋅ 100 ⋅ dil.

El cálculo del número de eritrocitos en la cámara de Neubauer se realiza mediante: C = N ⋅ 10 ⋅ dil. C = (N / 4) ⋅ 10⁻⁶ ⋅ dil. C = N ⋅ 10⁴ ⋅ dil. C = N ⋅ 100 ⋅ dil.

En la fórmula de recuento celular ¿qué representa N?. Número de células por ml. Células que se encuentran en el área del recuadro. Factor de conversión para pasar a ml. Factor de dilución.

En la fórmula de recuento celular ¿qué representa C?. Número de células por ml. Factor de conversión. Número de células contadas en el área. Factor de dilución.

En la fórmula de recuento celular ¿qué representa Dil?. Factor de dilución. Número de células por ml. Número de células contadas. Factor de conversión.

En la fórmula de recuento celular ¿Qué representa 10?. Factor de dilución. Factor de conversión para hacer el paso a ml. Número de células contadas. Número de eritrocitos.

¿Dónde se deben contar los glóbulos blancos en la cámara de Neubauer?. En los recuadros centrales. En los recuadros amarillos de las esquinas. En cualquier recuadro del hemocitómetro. Solo en placas Petri.

¿Dónde se deben contar los glóbulos rojos en la cámara de Neubauer según la imagen?. En los recuadros amarillos de las esquinas. En los recuadros centrales pequeños. En cualquier recuadro del hemocitómetro. Solo en placas Petri.

¿Cuál es la función principal de los contadores de células electrónicos?. Contar células manualmente con mayor precisión. Permitir el recuento rápido, con precisión y automático de células, además de medir concentración y tamaño celular. Solo medir la densidad de glóbulos rojos. Preparar placas de cultivo automáticamente.

En relación con la viabilidad celular y los métodos de detección, señala la opción correcta: La viabilidad celular mide el porcentaje de células muertas de la población. La LDH se usa para teñir células vivas y muertas. Los colorantes como el azul de tripano tiñen células muertas, mientras que las células vivas lo excluyen. Tras la muerte celular, la membrana plasmática siempre impide la salida de sustancias al medio extracelular.

Señala la correcta en cuanto al método de liberación de sustancias al medio extracelular: La LDH tiñe células muertas para poder contarlas. La LDH permanece dentro de la célula aunque esta muera. Tras la muerte celular, la LDH se libera al medio extracelular y su aumento indica más muertes. Este método solo sirve para teñir células vivas.

La LDH: Tiñe células muertas para poder contarlas. Permanece dentro de la célula aunque esta muera. Es una enzima de la glicólisis que se libera al medio extracelular tras la muerte celular. Solo sirve para células vivas.

Tras la muerte celular, ¿qué ocurre con la membrana plasmática?. Mantiene su actividad normal de intercambio de materiales y reacciones químicas. Se modifica su actividad de intercambio de materiales y reacciones químicas. Se vuelve impermeable a todo tipo de moléculas. Solo permite el paso de enzimas al exterior.

En los ensayos funcionales de viabilidad celular, se evalúa: La cantidad de células muertas únicamente. La actividad metabólica de la célula. Solo el tamaño de las células. La coloración de la membrana plasmática sin relacionarla con la actividad celular.

En los métodos de cuantificación de ATP para evaluar viabilidad celular, una reducción de ATP indica: Las células están activamente produciendo energía. Las células muertas liberan ATP al medio. Se está produciendo muerte celular, ya que la producción de ATP se detiene. Solo se mide el tamaño de las células, no su viabilidad.

¿Cuál es la función principal de los biosensores de fluorescencia en estudios celulares?. Medir directamente la viabilidad celular contando células muertas. Marcar proteínas para hacerlas fluorescentes y medir actividad celular. Cuantificar contenido iónico en cultivos celulares. Todas son correctas.

En el análisis de morfología celular para estudiar viabilidad, se considera como célula no viable aquella que: Tiene el mismo tamaño y forma que las células normales. Muestra cambios en la morfología respecto a las células normales. Presenta fluorescencia. Todas son correctas.

¿Qué indica un cambio en los niveles de potasio, sodio o cloro en un microanálisis por energía de rayos X?. Que la célula está aumentando su proliferación. Que se está produciendo muerte celular. Que la proteína fluorescente está activa. Todas son correctas.

¿Cuál es la principal ventaja de la tinción in vivo en cultivos celulares?. Permite observar células en su ubicación y con morfología original. Siempre requiere fijación de las células. Solo se aplica a células muertas. Todas son correctas.

¿Qué característica distingue a la tinción in vitro de la in vivo?. Se realiza en células vivas. Permite observar la ubicación original de las células. Sigue un protocolo común de fijación y tinción. Proporciona contraste solo en células muertas.

Cuál de las siguientes afirmaciones sobre tinción in vivo es incorrecta?. Permite observar detalles de la citoestructura. Permite observar la ubicación celular. Se realiza fuera del organismo en un cultivo celular. Proporciona contraste en algunas estructuras.

La tinción in vivo: Se realiza sobre células muertas para observar su morfología. Permite teñir células vivas, provocando que algunas estructuras adquieran contraste. Siempre tiñe todas las células de manera uniforme. Solo se aplica en cultivos in vitro.

En el manejo de muestras celulares, ¿Cuál es la medida más eficaz frente a la contaminación?. Aplicar tratamientos posteriores a la contaminación. Lavar las células repetidamente. La prevención mediante técnicas estériles y manejo cuidadoso. Añadir antibióticos a todas las muestras.