BIOLOGIA MOLECULAR

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre electroforesis horizontal y vertical es correcta?. La electroforesis horizontal se utiliza únicamente para ácidos nucleicos pequeños. La electroforesis vertical se utiliza para ácidos nucleicos grandes. La electroforesis horizontal se usa para ácidos nucleicos grandes y la vertical para ácidos nucleicos pequeños. Ambas técnicas requieren alternar la dirección del campo eléctrico para separar fragmentos grandes.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la electroforesis vertical es correcta?. Se utiliza para ácidos nucleicos grandes y gel de agarosa. Solo se usa para ácidos nucleicos de pequeño tamaño y se emplea gel de poliacrilamida. Alterna la dirección del campo eléctrico para separar ADN muy grande. Solo se aplica en electroforesis de campo pulsante.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la electroforesis horizontal es correcta?. Solo se utiliza para ácidos nucleicos de pequeño tamaño. Se usa exclusivamente en gel de poliacrilamida. Solo se utiliza para ácidos nucleicos grandes. Alterna la dirección del campo eléctrico como en campo pulsante.

Señala la opción correcta sobre la electroforesis horizontal y vertical: Solo la electroforesis horizontal puede ser continua o discontinua. Solo la electroforesis vertical puede ser continua o discontinua. Ambas se pueden utilizar en electroforesis continua o discontinua. Ninguna de las dos técnicas puede ser discontinua.

Señala la opción correcta sobre electroforesis continua y discontinua: La electroforesis continua utiliza dos geles distintos separados por tramos. La electroforesis discontinua utiliza un único tipo de gel. La electroforesis continua utiliza un único tipo de gel y la discontinua utiliza dos geles distintos separados por tramos. Ambas utilizan siempre geles de agarosa.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la preparación del gel en electroforesis es correcta?. Se deposita el gel y no necesita cubrirse con tampón, ya que el calor no afecta la muestra. La muestra se aplica directamente sobre el gel sin realizar huecos. Se deposita el gel y se cubre con una solución tampón para evitar que se deshidrate la muestra por el calor generado; la muestra se aplica realizando un pequeño hueco en el gel. El gel se coloca al aire y se deja secar antes de aplicar la corriente.

Para realizar una electroforesis en una PCR, si tenemos tamaños de moléculas de ADN normales o grandes, ¿Qué tipo de gel y de electroforesis realizaremos?. Gel de agarosa y electroforesis vertical. Gel de acrilamida y electroforesis vertical. Gel de agarosa y electroforesis horizontal. Gel de agarosa y electroforesis pulsante.

Para realizar una electroforesis en una PCR, si tenemos tamaños de moléculas de ADN muy grandes, ¿Qué tipo de gel y de electroforesis realizaremos?. Gel de acrilamida y electroforesis vertical. Gel de agarosa y electroforesis de campo pulsante. Gel de agarosa y electroforesis horizontal. Gel de agarosa y electroforesis vertical.

Para realizar una electroforesis en una PCR, si tenemos tamaños de moléculas de ADN muy pequeños, ¿Qué tipo de gel y de electroforesis realizaremos?. Gel de agarosa y electroforesis vertical. Gel de acrilamida y electroforesis vertical. Gel de agarosa y electroforesis horizontal. Gela de acrilamida y electroforesis pulsante.

Si tenemos una muestra de ADN con fragmentos de 500 pb y otra de 25.000 pb, ¿Qué combinación de gel y tipo de electroforesis sería correcta para separar ambas?. Gel de acrilamida y electroforesis pulsante para los fragmentos de 500 pb. Gel de agarosa al 1% y electroforesis horizontal para los fragmentos de 25.000 pb. Gel de acrilamida y electroforesis vertical para los fragmentos de 500 pb; gel de agarosa y electroforesis de campo pulsante para los fragmentos de 25.000 pb. Gel de agarosa y electroforesis vertical para todos los tamaños de ADN.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre los transiluminadores es correcta?. Permite observar únicamente proteínas y no ácidos nucleicos. Permite observar moléculas de ADN, ARN y proteínas. Solo funciona con luz azul. No es necesario para visualizar ADN tras electroforesis.

¿Qué caracteriza al transiluminador de luz UVA?. Utiliza luz ultravioleta para excitar los fluorocromos que emiten una luz y así visualizar la posición del ADN. Es más seguro que la luz azul y excita más fluorocromos. Solo se usa para proteínas grandes. Funciona en longitudes de onda entre 470 y 530 nm.

Señala la afirmación correcta sobre el transiluminador de luz azul: Utiliza luz ultravioleta y es más dañino que la luz UVA. Emite luz entre 470 y 530 nm, es más seguro que la luz UV y sirven para un mayor numero de fluorocromas. Solo permite visualizar ADN de más de 10.000 pb. No se utiliza para fluorocromos.

¿Cuáles de las siguientes son variantes de la PCR utilizadas en laboratorio?. Nested PCR o PCR anidada. Multiplex PCR, técnica MLPA. PCR a tiempo real, PCR con transcripción inversa (RT-PCR). Todas las anteriores.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la PCR anidada es correcta?. Se realiza una única PCR con cebadores internos para aumentar la especificidad. Se realizan dos PCR sucesivas con distintos pares de cebadores, primero externos y luego internos, para incrementar especificidad y sensibilidad. Se amplifican varios fragmentos a la vez usando múltiples cebadores. No tiene riesgo de contaminación del ADN.

En la PCR anidada, ¿qué se hace primero?. PCR con primers internos y luego externos. PCR con primers externos (F1 y R1) para amplificar la región ADN y luego internos (F2 y R2) para amplificar aun mas. Todos los primers en la misma reacción. Una única PCR con primers externos.

La PCR anidada ¿Cuáles son sus variantes?. Multiplex y qPCR. Semi-nested y Drop-In/Drop-Out. Nested y RT-PCR. PCR convencional y MLPA.

¿Cuál es una característica de la PCR anidada (Nested PCR)?. Menor sensibilidad y menor riesgo de contaminación. Mayor sensibilidad y mayor riesgo de contaminación del ADN. Solo se realiza una PCR y no hay riesgo de contaminación. Amplifica varios fragmentos a la vez sin riesgo de contaminación.

¿Para qué se utiliza la PCR anidada (Nested PCR)?. Para disminuir la sensibilidad y amplificar varios fragmentos a la vez. Para incrementar la especificidad y sensibilidad del ensayo. Para amplificar únicamente ARN. Para reducir la contaminación al mínimo.

¿Para que se utiliza la PCR multiplex?. Amplifica un único fragmento de ADN por reacción. Amplifica varias secuencias de ADN en un único tubo y pocillo de gel usando varios primers (hasta 8). Solo se usa para cuantificar ADN en tiempo real. Requiere realizar PCR anidada.

¿Cuál es una limitación de la PCR multiplex?. Alta sensibilidad y bajo riesgo de errores. Baja sensibilidad. Solo permite amplificar un fragmento a la vez. No necesita cebadores.

¿Cómo se diferencian los distintos fragmentos amplificados en una PCR multiplex?. Todas las bandas se ven iguales y no se pueden diferenciar. Se observan distintas bandas marcadas con un fluorocromo diferente. Solo se observa la banda más grande. No se utilizan fluorocromos, se diferencian por color del gel.

En PCR multiplex, los cebadores deben: Ser independientes, no interactuar entre sí y tener temperaturas de hibridación similares, si no las tienen se modificaran geneticamente. Tener temperaturas de hibridación totalmente diferentes para cada par. Interactuar entre sí para aumentar la amplificación. Amplificar varias secuencias del mismo tamaño sin fluorocromos.

Si dos fragmentos amplificados tienen tamaños similares, ¿Qué se hace?. Se omite uno de los fragmentos. Se añade un marcador fluorescente a los cebadores para diferenciarlos. Se realiza PCR anidada. Se amplifican en tubos separados sin cambio.

En PCR multiplex, ¿Qué característica deben tener las parejas de cebadores?. Amplificar varias secuencias del mismo tamaño para mayor eficiencia. Amplificar únicamente una secuencia de ADN, y cada secuencia debe ser de diferente tamaño. Todos los cebadores deben amplificar la misma región del gen. No importa el tamaño de las secuencias que amplifican.

En una PCR con cuatro fluorocromos distintos (T1 rojo, T2 amarillo, T3 verde, T4 azul), ¿Qué permite hacer esta estrategia?. Separar las reacciones en distintos pocillos porque no se pueden mezclar. Combinar los resultados de las 4 reacciones y aplicar la mezcla a un mismo pocillo del gel de electroforesis. Solo detectar un fluorocromo por reacción. Evitar la desnaturalización de las hebras de ADN.

Detección de fluorocromos durante la electroforesis En PCR multiplex con varios fluorocromos, ¿Cómo detecta el sistema las diferentes bandas?. Solo al final de la electroforesis, cuando todas las bandas han llegado al final del gel. Conforme las bandas pasan por el haz láser, midiendo su color y presencia. No se pueden detectar más de un color por reacción. Solo se mide el tamaño de las bandas, no su color.

En una PCR o secuenciación marcada, ¿qué indica el color de cada banda?. El tamaño total del fragmento de ADN. La cantidad de ADN presente. La base presente en el extremo 3’ del fragmento, correspondiente al dideoxinucleótido marcado. La velocidad de migración en el gel.

¿Para qué sirve el registro informatizado de los cuatro perfiles de color en PCR o secuenciación?. Para observar solo la banda más grande. Para combinar los perfiles de color y obtener la secuencia de ADN completa. Para eliminar fragmentos contaminantes. Para aumentar la velocidad de migración en el gel.

¿Qué caracteriza a la (RT-PCR) transcripción inversa?. Parte de ADN y no necesita transcriptasa inversa. Parte de ARN en lugar de ADN mediante la enzima transcriptasa inversa o retrotranscriptasa para sintetizar una cadena de ADN complementaria al ARN, denominada ADNc. Amplifica directamente ARN sin producir ADNc. Solo se utiliza para detectar proteínas.

En la transcripción inversa, después de obtener la doble cadena a partir de ARN ¿Qué se hace a continuación?. Se analiza directamente el ARN sin amplificación. Se realiza una PCR convencional para amplificar la molécula obtenida. Se vuelve a convertir a ARN con transcriptasa inversa. Se observa bajo microscopio sin necesidad de PCR.

¿Cuál es la característica principal de la PCR en tiempo real o PCR cuantitativa (qPCR)?. Permite cuantificar el ADN en tiempo real sin necesidad de electroforesis. Requiere electroforesis obligatoria después de cada ciclo. Solo sirve para amplificar ARN sin convertirlo en ADN. No utiliza termociclador.

En la qPCR (PCR cuantitativa) o en tiempo real, el colorante fluorescente más utilizado es: Ethidium bromide. SYBR Green. Propidio de ioduro. DAPI.

Durante la PCR en tiempo real, la señal de fluorescencia aumenta porque: El colorante fluorescente se degrada durante la amplificación. El colorante fluorescente se une al ADN de doble cadena generado en cada ciclo. La fluorescencia depende únicamente del termociclador. La fluorescencia es independiente de la cantidad de ADN.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones es incorrecta sobre la PCR en tiempo real?. Permite monitorizar la amplificación de ADN durante la reacción. Se necesita un software y hardware especiales. Siempre es necesario hacer electroforesis para visualizar los productos. El colorante SYBR Green aumenta la fluorescencia según la cantidad de ADN.

La PCR en tiempo real o cuantitativa (qPCR) se diferencia de la PCR convencional porque: No requiere electroforesis, utiliza un software y hardware para captar la fluorescencia dentro de un termociclador especial. Necesita realizar electroforesis obligatoria después de cada ciclo. Solo sirve para amplificar ARN sin convertirlo en ADN. Se realiza sin termociclador.

¿Cuál es el propósito del software y hardware en la PCR en tiempo real?. Medir la fluorescencia de las muestras durante la amplificación. Sustituir la fase de elongación del ciclo. Detectar únicamente la temperatura del termociclador. Visualizar los productos de PCR mediante gel de agarosa.

El termociclador especial usado junto con el gel SYBR green en qPCR sirve para: Detectar fluorescencia a medida que se amplifica el ADN. Calentar la muestra únicamente. Sustituir el colorante fluorescente. Visualizar el ADN en gel.

El incremento de repeticiones de trinucleótidos en el ADN puede causar: Enfermedades multisistemáticas, la mayoría neurológicas y neurodegenerativas. Solo enfermedades cardiovasculares. Únicamente enfermedades infecciosas. Ninguna enfermedad asociada.

Respecto a la atrofia muscular bulboespinal, señale lo correcto: Se localiza en el brazo q del cromosoma X. Las personas sanas presentan más de 50 repeticiones. Es una enfermedad autosómica dominante. Se estudia únicamente mediante electroforesis.

La enfermedad de Huntington se caracteriza por: Afectar al brazo corto del cromosoma 4. Ser causada por enfermedad degenerativa. Personas sanas presentan menos de 26 repeticiones del triplete. Todas las anteriores.

La enfermedad de Steinert se caracteriza por: Ser una distrofia miotónica tipo 1 y enfermedad degenerativa autosómica dominante. Ser una enfermedad degenerativa autosómica dominante. Tener expansión anormal de tripletes en el gen DMPK. Todas son correctas.

Respecto a la enfermedad de Steinert, señale lo correcto: Es autosómica recesiva. Es autosómica dominante. Se hereda ligada al cromosoma X. Solo afecta a mujeres.

La enfermedad de Steinert se produce por: Más de 2000 repeticiones del triplete CTG en la región no traducida del gen DMPK Cromosoma 19q13.3. Menos de 50 repeticiones. Una sola mutación puntual en el gen DMPK. Expansión de tripletes en el gen HTT.

El gen DMPK asociado a la enfermedad de Steinert se encuentra en: Cromosoma 19q13.3. Cromosoma 4p. Cromosoma Xq. Cromosoma 21.

La enfermedad de Steinert es: Una distrofia muscular degenerativa. Una enfermedad infecciosa. Una enfermedad autoinmune. Ninguna de las anteriores.

En la atrofia muscular bulboespinal, el número de repeticiones de trinucleótidos en personas sanas y enfermas es: Entre 10 y 36 sanas, mas de 40 enfermas. Menos de 10. Más de 40. Exactamente 50.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la atrofia muscular bulboespinal es correcta?. Es una enfermedad neuromuscular. Afecta al brazo q del cromosoma X. Personas sanas tienen 10–36 repeticiones y enfermas mas de 40. Todas son correctas.

En la enfermedad atrofia de Huntington las personas presentan: Menos de 26 repeticiones del triplete CAG/GTC las sanas. Afecta al brazo corto del cromosoma 4. Mas de 40 repeticiones las enfermas. Todas son correctas.

Los protooncogenes son genes que: Activan el inicio de la división celular. Frenan el ciclo celular. Siempre provocan cáncer. Son solo marcadores de mutaciones.

Cuando un protooncogén se transforma en oncogén: La división celular se detiene. La división celular se realiza de manera constante. Se producen deleciones y duplicaciones automáticamente. Se detiene la expresión de genes supresores.

La PCR y electroforesis se utilizan para: Detectar mutaciones en protooncogenes y genes supresores para diagnóstico precoz. Estudiar únicamente proteínas. Observar la célula en microscopía. Diagnosticar cualquier cáncer sin necesidad de marcadores.

Para detectar deleciones o duplicaciones en un gen mediante PCR, se necesitan: Marcadores que indiquen el tamaño normal del gen. Colorantes fluorescentes como SYBR Green. Microscopía de alta resolución. Solo termociclador, sin comparación de tamaño.

En ciertos cánceres agresivos, como mama o útero: Se realizan controles periódicos. La PCR es suficiente para prevenir la enfermedad. Solo se controla mediante electroforesis. Ninguna de las anteriores.

En microbiología, la PCR es útil porque: Permite detectar microorganismos difíciles de cultivar. Sustituye la necesidad de un microscopio. Elimina la necesidad de cualquier análisis genético. Solo sirve para virus, no bacterias.

Un ejemplo clínico de microorganismo detectado por PCR es: SARS-CoV-2 (Covid). Influenza A únicamente. Todos los protozoos. Ninguna infección viral.

En arqueología y forense, la PCR permite: Amplificar pequeñas cantidades de material genético. Analizar únicamente proteínas. Reemplazar el análisis de huellas dactilares. Observar cambios morfológicos en tejidos sin ADN.

La PCR ayuda en investigaciones criminales porque: Permite obtener suficiente ADN para comparativas con muy poca muestra inicial. Solo sirve para muestras de sangre. Sustituye la necesidad de peritos forenses. No se utiliza en desapariciones.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la PCR en microbiología y forense es correcta?. Puede detectar microorganismos difíciles de cultivar. Permite estudiar cambios en el ADN de organismos. Amplifica pequeñas cantidades de material genético. Todas son correctas.

El ADN polimórfico se refiere a: Regiones del ADN que son idénticas en todos los individuos. Regiones del cromosoma que varían de un individuo a otro. Regiones exclusivas del ADN mitocondrial. Fragmentos de ARN utilizados en PCR.

El ADN “fingerprinting” también se denomina: Electroforesis convencional. Huella genética o tipaje genético. Secuenciación de proteínas. Cariotipo molecular.

La huella genética permite: Identificar el origen de una muestra de ADN. Determinar el grupo sanguíneo exclusivamente. Detectar únicamente enfermedades hereditarias. Identificar solo muestras de ARN.

Examinando varias regiones polimórficas de un mismo individuo se obtiene: Un patrón de ADN único para cada individuo, excepto en gemelos. Un patrón idéntico en todos los miembros de una familia. Un patrón exclusivo de las células tumorales. Una secuencia de proteínas específica.

Respecto al patrón de ADN obtenido mediante huella genética, señale la correcta: Es único en todos los individuos sin excepción. Es único en cada individuo, excepto en gemelos. Es igual entre madre e hijo. Solo cambia en enfermedades infecciosas.

Normalmente, en un test de paternidad, se suelen utilizar: 3 marcadores genéticos. 5 marcadores genéticos. 13 marcadores genéticos. 25 marcadores genéticos obligatoriamente.

El uso de 13 marcadores genéticos permite un porcentaje de acierto aproximado de: 80 %. 90 %. 95 %. 99,9 %.

En un test de paternidad, el hijo debe compartir marcadores genéticos con: Solo la madre. Solo el padre biológico. La madre y el padre biológico. Ninguno de los dos progenitores.

Si un supuesto padre no comparte ningún marcador genético con el hijo: Puede ser el padre igualmente. Se considera compatible al 50 %. Queda excluido como padre biológico. Debe repetirse siempre el análisis porque no es concluyente.

En los test de paternidad, cada mancha de colorante en el gel simula: Una proteína. Un marcador genético. Una mutación puntual obligatoria. Una célula completa.

Sobre el ADN fingerprinting (huella genética), señale la opción correcta: Se basa en regiones polimórficas del ADN. Permite identificar el origen de una muestra. Cada individuo tiene un patrón único, salvo gemelos. Todas son correctas.

El sistema CRISPR-Cas se utiliza para: Realizar edición genética del ADN. Detectar exclusivamente proteínas. Amplificar ADN por PCR. Realizar únicamente electroforesis.

En el sistema CRISPR-Cas, el ARN guía tiene como función: Cortar directamente el ADN. Reconocer la secuencia específica del ADN que se quiere editar. Sustituir a la proteína Cas. Reparar automáticamente el ADN sin corte previo.

Las proteínas Cas actúan como: Polimerasas. Helicasas. Tijeras moleculares. Ligasa.

El ARN guía en CRISPR-Cas: Se une a las proteínas Cas y dirige su acción. Se une a la ADN polimerasa. Solo actúa después del corte del ADN. Se usa para hacer electroforesis.

¿Cuál es la secuencia correcta del mecanismo CRISPR-Cas?. La proteína Cas corta primero y luego se diseña el ARN guía. El ARN guía reconoce la secuencia, se une a Cas y Cas corta el ADN. Primero se inserta ADN nuevo y luego Cas localiza la zona. Cas reconoce sola la secuencia sin necesidad de ARN guía.

Tras el corte del ADN por CRISPR-Cas, se puede: Silenciar el gen de interés. Repararlo con un fragmento modificado de ADN. Ambas opciones son posibles. Todas son correctas.

Después del corte realizado por CRISPR-Cas: El gen siempre queda destruido y no puede modificarse. Puede silenciarse o repararse con un fragmento modificado de ADN. Solo puede utilizarse en bacterias. El ADN se regenera automáticamente sin modificación.

La molécula que reconoce la secuencia específica del ADN en CRISPR es: ADN guía. ARN guía. ARNm. ARNr.

El componente que realiza el corte físico del ADN en CRISPR es: ARN guía. Proteína Cas. Ribosoma. ADN ligasa.

Una aplicación de CRISPR en la industria alimentaria es: Agricultura transgénica. Producción exclusiva de antibióticos. Secuenciación proteica. Solo análisis microbiológico.

En investigación y biotecnología, CRISPR permite: Corregir enfermedades en animales de laboratorio. Solo estudiar bacterias. Únicamente modificar plantas. Reemplazar completamente la PCR.

Una posible aplicación ecológica de CRISPR es: Modificar poblaciones de mosquitos para prevenir la malaria. Crear antibióticos contra malaria. Sustituir vacunas humanas. Aumentar la resistencia a pesticidas exclusivamente.

En medicina, la terapia génica con CRISPR permitiría: Corregir genes defectuosos ligados a enfermedades humanas. Diagnosticar solo enfermedades víricas. Sustituir la electroforesis en todos los casos. Curar cualquier enfermedad de forma inmediata.

Respecto a la edición de embriones humanos con CRISPR: Es completamente segura y libre de debate ético. Es inviable actualmente. Se ha probado que es viable, pero no es del todo segura y genera conflictos éticos. Solo puede realizarse en animales.

La edición de embriones humanos con CRISPR: Está exenta de problemas éticos. Es viable, pero plantea conflictos éticos. Solo se aplica en plantas. No puede modificar el ADN embrionario.

Francisco Martínez Mojica es: Un bioquímico madrileño. Un microbiólogo murciano de la Universidad de Alicante. Un genetista valenciano de la UMU. Un oncólogo catalán.

Francisco Martínez Mojica es conocido por ser: Descubridor de la PCR. Descubridor del CRISPR. Descubridor de la electroforesis. Descubridor del ADN polimórfico.

Francisco Martínez Mojica recibió el título de: Premio Nobel en 2010. Doctor Honoris Causa por la UMU. Rector honorario de la Universidad de Murcia. Catedrático emérito de Harvard.

Señale la opción correcta sobre Francisco Martínez Mojica: Es microbiólogo. Está vinculado a la Universidad de Alicante. Es descubridor del CRISPR. Todas son correctas.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre CRISPR-Cas es incorrecta?. El ARN guía reconoce la secuencia de ADN. Las proteínas Cas actúan como tijeras moleculares. La proteína Cas reconoce sola la secuencia sin ARN guía. Tras el corte se puede modificar el ADN.

Sobre el sistema CRISPR-Cas: Puede silenciar genes. Puede reparar genes con ADN modificado. Utiliza un ARN guía. Todas son correctas.

La principal función de CRISPR es: Amplificar ADN. Separar fragmentos de ADN. Editar secuencias específicas del ADN. Cuantificar ADN en tiempo real.

¿Cuál de las siguientes NO es una aplicación descrita de CRISPR en la diapositiva?. Agricultura transgénica. Cambios ecológicos en mosquitos. Terapia génica. Identificación de huellas dactilares.

En CRISPR, la secuencia específica del ADN que se quiere modificar es reconocida por: La proteína Cas. El ARN guía. El ribosoma. El gen DMPK.

Francisco Martínez Mojica, relacionado con el descubrimiento del CRISPR, es: Un microbiólogo murciano de la Universidad de Alicante. Un genetista de la Universidad de Murcia. El descubridor de la PCR cuantitativa. Un investigador chino pionero en edición embrionaria.