BIOLOGIA MOLECULAR

Después de 3 ciclos completos de PCR, partiendo de una molécula de ADN, ¿Cuántas moléculas aproximadamente se obtienen?. 3. 6. 8. 12.

¿Cuál de los siguientes factores no afecta la eficiencia de la PCR?. La concentración de Mg²⁺. La longitud y secuencia de los primers. La proporción de dNTPs. La marca de la micropipeta usada.

¿Qué función cumple el dNTP en la PCR?. Actúa como molde para la síntesis de ADN. Proporciona los nucleótidos que se incorporan en la nueva hebra. Se une a los primers para iniciar la reacción. Rompe los puentes de hidrógeno en la desnaturalización.

En la PCR, si se eleva demasiado la temperatura de hibridación, ¿qué puede ocurrir?. Los primers no se unirán correctamente a la cadena molde. La ADN polimerasa sintetizará más rápido. Se duplicará el número de ciclos automáticamente. La desnaturalización ocurrirá antes.

¿Por qué se recomienda que los primers tengan entre 18 y 24 nucleótidos?. Para que se unan a cualquier región del ADN. Para aumentar la estabilidad y especificidad de la unión a la hebra molde. Para que se eliminen automáticamente al final del ciclo. Para que la elongación ocurra a menor temperatura.

¿Cuál es la razón principal para usar primers purificados en PCR?. Mejorar la estabilidad de la doble hélice. Evitar errores por impurezas que inhiben la polimerasa. Permitir que se unan a cualquier región del ADN. Incrementar la velocidad de elongación.

Para minimizar errores durante la PCR, se recomienda evitar áreas donde existan cuatro o más nucleótidos iguales consecutivos. Esto se debe a que: Facilitan la unión correcta de los primers. Aumentan el riesgo de apareamiento incorrecto y errores de amplificación. Mejoran la eficiencia de la polimerasa. Son necesarios para hibridación.

En PCR, ¿por qué es importante controlar la concentración de Mg²⁺?. Porque los iones de magnesio son cofactores necesarios para la actividad de la ADN polimerasa. Porque inhiben la unión de los primers a la cadena molde. Porque aumentan la desnaturalización. Porque generan fragmentos de ARN.

Respecto a los dNTPs en PCR, señale la opción correcta: Se utilizan en diferente proporción según el nucleótido. Deben estar en igual proporción para evitar errores de incorporación. Solo se añade timina y adenina. Se eliminan al finalizar la elongación.

Para asegurar la correcta amplificación de ADN, ¿qué porcentaje de GC es recomendable en la hebra molde?. 10–20%. 25–35%. 40–60%. 70–90%.

Señale la acción incorrecta para minimizar errores en PCR: Trabajar en condiciones limpias y esterilizadas. Usar primers de 18–24 nucleótidos, sin secuencias repetitivas. Mezclar buffers de distintos kits comerciales para mejorar eficiencia. Controlar la concentración de Mg²⁺ y dNTPs.

¿Cuál de las siguientes es una medida para minimizar errores de amplificación en PCR?. Utilizar primers de 10–12 nucleótidos. Mantener igual proporción de dNTPs. Aumentar la temperatura de desnaturalización por encima de 100 °C. Permitir secuencias repetitivas de nucleótidos en los primers.

Para evitar errores en PCR, es importante que los primers no tengan regiones con cuatro o más nucleótidos iguales consecutivos porque: Facilitan la elongación por la polimerasa. Pueden provocar apareamientos inespecíficos o errores de hibridación. Permiten que se unan a cualquier zona del ADN. No afectan a la especificidad de la PCR.

Una práctica habitual para reducir la posibilidad de errores en PCR es trabajar con reactivos libres de nucleasas y contaminantes. Esto es importante porque: Las nucleasas pueden degradar los primers o el ADN molde. Los contaminantes aceleran la PCR de forma deseada. Las nucleasas ayudan a controlar el tamaño de los fragmentos. Los contaminantes no interfieren en la amplificación.

En una PCR bien realizada, ¿qué ocurre con la cantidad de ADN diana conforme avanzan los ciclos?. Disminuye linealmente. Permanece constante. Aumenta de forma exponencial. Solo aumenta al final de todo el proceso.

Al realizar una electroforesis en gel de agarosa después de una PCR, el ADN migra hacia el polo: Negativo (cátodo). Positivo (ánodo). No migra porque es neutro. Depende del tamaño del fragmento.

¿Para qué se utiliza un marcador de peso molecular en una electroforesis tras una PCR?. Para amplificar el ADN. Para comparar y estimar el tamaño de los fragmentos obtenidos. Para desnaturalizar el ADN. Para hibridar los primers.

Uno de los factores que puede provocar un falso negativo en una PCR es: Contaminación con ADN de otra muestra. Inhibidores en la muestra que bloquean la polimerasa. Usar primers purificados. Mantener proporciones equimolares de dNTPs.

Una práctica que reduce el riesgo de contaminación cruzada en PCR es: Mezclar reactivos de distintos kits. Trabajar en una campana de flujo laminar y superficies esterilizadas. Aumentar el número de ciclos. Quitar la tapa del termociclador durante la reacción.

Si en una electroforesis observas una banda difusa en vez de una banda bien definida, esto puede indicar: Fragmento de tamaño esperado. Degradación del ADN o mala calidad de la muestra. Que la reacción fue altamente específica. Que la Taq polimerasa duplicó el ADN correctamente.

En PCR cuantitativa (RT-qPCR), la cantidad de producto se mide: Mediante tinción de Gram. Al final de los ciclos observando bandas en gel. En tiempo real mediante fluorescencia. Con un marcador de peso molecular.

Durante la PCR, la función principal de los primers es: Desnaturalizar la doble hélice. Iniciar la síntesis de nuevas hebras al unirse a la hebra molde. Proporcionar nucleótidos para la elongación. Aumentar la temperatura de hibridación.

En la desnaturalización del ADN en PCR, la temperatura elevada sirve para: Activar la ADN polimerasa. Romper los puentes de hidrógeno entre las bases complementarias. Permitir que los primers se unan. Incorporar los dNTPs.

Si después de una PCR el gel de agarosa muestra ninguna banda, la causa más probable es: Reactivos contaminados con ADN extraño. Primer mal diseñado o con secuencias repetitivas. Uso de un marcador de peso molecular. Una temperatura de elongación demasiado baja.

En una electroforesis en gel, la velocidad de migración del ADN depende principalmente de: Tamaño de los fragmentos. Color del gel. Tipo de pipeta usada. Tipo de primer utilizado en la PCR.

¿Por qué en PCR se recomienda usar agua destilada con bajo contenido en sales minerales?. Porque aumenta la velocidad de desnaturalización. Para evitar reacciones indeseadas que inhiban la polimerasa. Porque el ADN necesita sales para unirse a los primers. Para que los dNTPs se degraden más rápido.

En una reacción de PCR, un buffer con KCl y Tris-HCl se utiliza principalmente para: Mantener el pH adecuado y la estabilidad de la reacción. Aumentar la temperatura de elongación. Hacer que los primers se unan más rápido. Reducir la concentración de Mg²⁺.

Si un kit comercial de PCR indica “no mezclar con otros buffers”, esto es porque: Los buffers de distintos kits pueden alterar la temperatura de desnaturalización. Los buffers contienen aditivos específicos que optimizan cada polimerasa y mezclar puede disminuir la eficiencia. Mezclar buffers acelera la hibridación. Los dNTPs se eliminan al combinar diferentes kits.

Durante la hibridación en PCR, la temperatura baja respecto a la desnaturalización para: Evitar que se desnaturalice de nuevo la doble hélice. Permitir que los primers se unan específicamente a la cadena molde. Activar la ADN ligasa. Descomponer los dNTPs.

Un factor que puede provocar falsos positivos en PCR es: Contaminación del laboratorio con ADN externo. Uso de primers de 18–24 nucleótidos. Concentración equilibrada de dNTPs. Temperatura correcta de elongación.

¿Cuál es la función principal de un termociclador en PCR?. Separar fragmentos de ADN según su tamaño. Realizar ciclos de temperatura para permitir la amplificación del ADN. Detectar fluorescencia únicamente. Hibridar los primers con ARN.

El termociclador de efecto Peltier se diferencia de uno de resistencia eléctrica porque: Usa electricidad para calentar y enfriar lentamente. Permite cambios de temperatura inmediatos y bruscos y un control exhaustivo de la temperatura. Solo funciona con PCR convencional. Mide la fluorescencia en tiempo real.

Los termocicladores fluorescentes se utilizan principalmente para: PCR convencional sin medición. Medir la amplificación en tiempo real mediante fluorescencia mientras se realiza la PCR. Separar el ADN en fragmentos de diferente tamaño. Cambiar la temperatura automáticamente pero sin detección.

En PCR en tiempo real (qPCR), la señal de fluorescencia aumenta porque: Se producen más fragmentos de ADN, y la fluorescencia se une a ellos, combinando amplificación y detección en una sola etapa. La polimerasa emite luz durante la elongación. Los primers liberan fluorescencia al unirse a la hebra molde. El termociclador genera fluorescencia artificial sin relación con el ADN.

El termociclador de resistencia eléctrica se caracteriza por: Cambios de temperatura inmediatos y bruscos. Medir la fluorescencia del ADN en tiempo real. Distribuir la temperatura de manera uniforme mediante una resistencia eléctrica. Codificar endonucleasas de restricción durante la PCR.

La electroforesis permite separar biomoléculas porque: Las partículas se mueven por un campo eléctrico hasta que la fricción del medio las detiene en un lugar específico. Las moléculas se amplifican mientras migran. Los primers se unen a las hebras de ADN. La temperatura elevada desnaturaliza el ADN durante la separación.

En electroforesis, la fricción del medio contra las moléculas provoca que: Todas las moléculas lleguen al mismo lugar. Las moléculas más grandes migren más lentamente. Los primers se unan al ADN. Se amplifique el ADN.

El campo eléctrico en electroforesis sirve para: Frenar el avance de las moléculas por completo. Mover las moléculas cargadas a través del medio. Alterar la secuencia de nucleótidos del ADN. Desnaturalizar las proteínas.

En una electroforesis en gel, ¿Qué moléculas se desplazan más distancia?. Las moléculas más grandes migran mas. Las moléculas más pequeñas y ligeras. Todas las moléculas recorren la misma distancia. Las moléculas sin carga positiva.

Respecto al desplazamiento de las biomoléculas en electroforesis, señala la opción correcta: Las moléculas grandes y pesadas se desplazan más por el gel. La forma de la molécula no influye en la migración. Las moléculas grandes y pesadas se desplazan menos por el gel. Todas las moléculas forman una única franja.

La forma irregular de una molécula en electroforesis: Facilita su desplazamiento por el gel. No afecta a su movilidad. Dificulta su desplazamiento a través del gel. Hace que siempre migre más rápido que una molécula lineal.

Si en una muestra hay moléculas de distintos tamaños, al realizar una electroforesis: Todas migran igual y forman una sola banda. Cada molécula migrará/desplazará por el gel de forma diferente según su tamaño, diferenciándose en varias franjas o bandas. Solo migran las moléculas más grandes. Las moléculas pequeñas quedan retenidas en el pocillo.

¿Cuál de los siguientes factores influye en la separación de moléculas durante la electroforesis?. El tamaño de la molécula. El color del tampón. El número de ciclos de PCR previos. La cantidad de primers usados.

Para calcular el tamaño de los fragmentos de ADN de una muestra mediante electroforesis, lo primero que debe hacerse es: Añadir más primers al gel. Colocar un marcador de peso molecular o muestra patrón para que conozcamos los pares de bases. Incrementar la temperatura del gel. Desnaturalizar el ADN dentro del pocillo.

La función principal del marcador de peso molecular en una electroforesis es: Amplificar los fragmentos de ADN de la muestra. Servir como referencia conocida en pares de bases para comparar las bandas de la muestra. Aumentar la velocidad de migración de las moléculas. Unirse a los primers para detectar fluorescencia.

¿Por qué se dice que el marcador de peso molecular permite “calibrar las bandas”?. Porque contiene fragmentos de ADN de tamaño conocido que sirven de referencia. Porque modifica la carga eléctrica del gel. Porque impide que las moléculas grandes migren. Porque separa automáticamente las moléculas por color.

En una electroforesis, si una banda de la muestra aparece a una altura similar a la de una banda del marcador de 500 pb, se puede interpretar que: La muestra tiene aproximadamente 500 pares de bases. La muestra tiene exactamente 5.000 pares de bases. La muestra no contiene ADN. La PCR ha fallado obligatoriamente.

Para calcular el tamaño de los fragmentos de ADN de una muestra mediante electroforesis, el procedimiento correcto es: Colocar primero las muestras problema, después el marcador y finalmente añadir primers. Colocar un marcador de peso molecular, poner las muestras problema en los pocillos de gel, realizar la electroforesis y comparar las bandas con el marcador. Realizar la PCR dentro del gel antes de colocar el marcador. Activar la electroforesis sin usar muestra patrón.

El cálculo de los pares de bases (pb) de una muestra problema en electroforesis se realiza: Midiendo únicamente el color de la banda. Comparando la posición de la banda de la muestra con las bandas del marcador de peso molecular. Según el número de pocillos del gel. Según el tiempo total de PCR.

En una electroforesis, ¿Qué fragmento de ADN tendrá mayor tamaño?. El que ha migrado más lejos del pocillo. El que se encuentra más cerca del pocillo. El que aparece más abajo en el gel. El que presenta una banda más intensa.

Si dos muestras presentan bandas a distinta altura en un gel de agarosa, la banda situada más abajo corresponde a: Un fragmento de mayor tamaño. Un fragmento de menor tamaño. Una muestra contaminada. Una PCR fallida obligatoriamente.

Al comparar varias bandas de una electroforesis con un marcador de peso molecular, ¿Qué criterio permite estimar el tamaño de una muestra problema?. El color de la banda. La intensidad de fluorescencia exclusivamente. La posición de la banda respecto a las bandas conocidas del marcador. El número de ciclos de PCR realizados.

En una electroforesis, una banda situada más cerca del pocillo corresponde a: Un fragmento más pequeño. Un fragmento de ARN. Un fragmento más grande. Una muestra contaminada.

Señala la opción correcta sobre los medios de electroforesis: El papel y el acetato de celulosa son medios de alta fricción. El gel de agarosa y el gel de poliacrilamida se utilizan para fragmentos de ADN. El acetato de celulosa se usa exclusivamente para proteínas grandes. Todas son correctas.

El gel de agarosa se utiliza principalmente para: Aminoácidos y moléculas pequeñas. Fragmentos de ADN. Únicamente proteínas plasmáticas. Iniciar la PCR.

El gel de poliacrilamida se prefiere frente al de agarosa cuando: Se estudian fragmentos de ADN muy pequeños. Se quieren separar moléculas de gran tamaño exclusivamente. Se desea aumentar la temperatura de la PCR. Se estudian únicamente aminoácidos.

Señala la opción correcta sobre el gel de poliacrilamida: Es más poroso que la agarosa. Tiene menor capacidad de separación. Presenta menor porosidad y permite separar fragmentos pequeños con mayor precisión. Solo se utiliza en microscopía óptica.

¿Cuál de los siguientes medios de electroforesis se considera de baja fricción?. Gel de agarosa. Gel de poliacrilamida. Acetato de celulosa y papel. Gel de agarosa y poliacrilamida.

Tras realizar una PCR para amplificar un fragmento de ADN, ¿qué técnica se emplea habitualmente para comprobar el tamaño del fragmento amplificado?. Microscopía de campo oscuro. Electroforesis en gel. Centrifugación diferencial. Hibridación de cebadores.

Si tras una PCR se desea analizar un fragmento de ADN muy pequeño con gran precisión, el medio de electroforesis más adecuado es: Papel. Acetato de celulosa. Gel de agarosa. Gel de poliacrilamida.

Señala la opción correcta sobre la relación entre PCR y electroforesis: La electroforesis amplifica el ADN y la PCR lo separa por tamaño. La PCR amplifica el ADN, se realiza antes de la electroforesis y la electroforesis permite separar y estimar el tamaño de los fragmentos. Ambas técnicas sirven exclusivamente para observar células al microscopio. La PCR solo puede realizarse después de la electroforesis.

En el análisis de un producto de PCR mediante electroforesis, la presencia de una banda más alejada del pocillo indica: Un fragmento de ADN de mayor tamaño. Un fragmento de ADN de menor tamaño. Una mayor temperatura de hibridación. Una contaminación obligatoria de la muestra.

Señala la opción correcta sobre una muestra de ADN tras PCR: Si el fragmento es muy pequeño, el gel de agarosa siempre es más preciso que el de poliacrilamida. La electroforesis permite estimar el tamaño del fragmento comparándolo con un marcador de peso molecular. La PCR permite calcular directamente los pares de bases observando la fluorescencia del gel. Todas son correctas.

Señala la opción correcta sobre los medios de electroforesis: El gel de poliacrilamida es más poroso que el gel de agarosa y se utiliza para fragmentos grandes de ADN. El gel de agarosa es menos poroso que el gel de poliacrilamida y se utiliza para fragmentos pequeños de ADN. El gel de agarosa es más poroso y se utiliza para fragmentos grandes de ADN (1.000–20.000 pb), mientras que el gel de poliacrilamida es menos poroso, tiene mayor resolución y se utiliza para fragmentos pequeños (hasta unos 2.000 pb). Ambos geles tienen la misma porosidad.

Señala la opción correcta: El gel de poliacrilamida es más sencillo de elaborar que el de agarosa. El gel de poliacrilamida presenta mayor resolución, pero es más complejo de manipular y tóxico. El gel de agarosa es tóxico y se manipula con más dificultad. Ambos geles tienen la misma capacidad de resolución.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre el cianol de xileno es correcta?. Se utiliza para amplificar ADN. Marca el avance de las moléculas durante la electroforesis en un gel de agarosa. Disminuye la resolución del gel de poliacrilamida. Rompe los puentes de hidrógeno del ADN.

Señala la opción correcta sobre el cianol de xileno en el gel de agarosa: Es una ADN polimerasa termoestable. Sirve para marcar visualmente la progresión de la electroforesis. Se utiliza para aumentar la porosidad del gel. Sustituye al marcador de peso molecular.

El gel de poliacrilamida permite separar ácidos nucleicos: Desde aproximadamente 1.000 hasta 20.000 pb. Solo mayores de 10.000 pb. Desde diferencias de una sola base hasta unos 2.000 pb. Exclusivamente fragmentos de ARN ribosómico.

Señala la opción correcta sobre los colorantes fluorescentes en electroforesis: No requieren equipos especiales para su detección. Necesitan equipos capaces de captar la fluorescencia de la molécula. Solo pueden utilizarse en gel de agarosa. Todas son correctas.

Señala la opción correcta sobre el colorante SYBR Green: Se une a la doble hélice de ADN y la fluorescencia aumenta conforme aumenta el número de copias de ADN, mientras mas copias de ADN, mas fluorescencia. Solo puede unirse a ARN monocatenario. Necesita obligatoriamente sondas fluorescentes. Se utiliza exclusivamente como colorante de arrastre.

¿Cuál es una ventaja del colorante SYBR Green?. Disminuye la necesidad de cebadores específicos. No necesita sondas, lo que abarata costes. Evita completamente los falsos positivos. Sustituye al marcador de peso molecular.

¿Cuál es una desventaja importante del colorante SYBR Green?. No se une al ADN. Es extremadamente específico. Puede dar falsos positivos si los cebadores no son suficientemente específicos, es muy inespecifica. Solo funciona en gel de poliacrilamida.

Señala la opción correcta sobre el azul de bromofenol: Se utiliza como ADN polimerasa. Es un colorante de arrastre que marca el frente de avance en la electroforesis y marca con exactitud cuando se debe detener la electroforesis. Solo se utiliza en PCR en tiempo real. Se une específicamente a la doble hélice de ADN.

El colorante azul de bromofenol se emplea en electroforesis porque: Aumenta el número de copias de ADN. Presenta carga y puede desplazarse por el gel, marcando el avance de la migración. Sustituye al bromuro de etidio como marcador molecular. Inhibe la salida de ADN del pocillo.

Señala la opción correcta sobre el colorante azul de bromofenol: Se usa únicamente en gel de agarosa. Se usa únicamente en gel de poliacrilamida. Puede utilizarse tanto en gel de agarosa como en gel de poliacrilamida. Solo se utiliza en microscopía óptica.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre el SYBR Green es correcta?. Requiere sondas específicas para detectar el ADN. Es un colorante completamente específico y no produce falsos positivos. Se une a la doble hélice de ADN y necesita cebadores muy específicos para evitar falsos positivos. Se utiliza exclusivamente como colorante de arrastre.

Señala la opción correcta: El azul de bromofenol permite determinar el momento exacto en el que debe detenerse la electroforesis. El azul de bromofenol sirve para calcular directamente los pares de bases. El azul de bromofenol sustituye al marcador de peso molecular. El azul de bromofenol se une de forma específica a la doble hélice del ADN.

En relación con los colorantes utilizados en electroforesis, señala la opción correcta: El SYBR Green actúa como colorante de arrastre. El azul de bromofenol se utiliza para marcar el frente de avance del gel. El bromuro de etidio no requiere detección fluorescente. Todas son correctas.

Señala la opción correcta sobre el SYBR Green: Necesita sondas específicas para poder detectar el ADN. Se une a la doble hélice de ADN, aumenta la fluorescencia conforme aumenta el número de copias, no necesita sondas y requiere cebadores muy específicos para evitar falsos positivos. Se utiliza exclusivamente como colorante de arrastre en electroforesis. Es un colorante totalmente específico que no produce falsos positivos.

Señala la opción correcta sobre el azul de bromofenol: Es un colorante fluorescente que se une específicamente a la doble hélice de ADN. Es un colorante de arrastre con carga que migra por el gel y marca el frente de avance, permitiendo saber cuándo detener la electroforesis. Sustituye al marcador de peso molecular en la estimación de pares de bases. Se utiliza para aumentar el número de copias de ADN durante la PCR.

Señala la opción correcta sobre el bromuro de etidio (BRET): Es un colorante de arrastre que marca el frente de avance del gel. Es un colorante fluorescente utilizado para visualizar ADN. Sustituye al marcador de peso molecular. Se utiliza para sintetizar nuevas cadenas de ADN.

¿Cuál de los siguientes colorantes necesita un sistema de detección de fluorescencia?. Azul de bromofenol. Bromuro de etidio. Cianol de xileno. Agua bidestilada.

Señala la opción correcta sobre la técnica BRET: Se basa en la separación de moléculas por tamaño en un gel. Se basa en una transferencia de energía que provoca una emisión de fluorescencia a una longitud de onda definida. Se utiliza exclusivamente como colorante de arrastre. No requiere moléculas fluorescentes.

En la técnica BRET, la enzima implicada en la generación de energía es: ADN ligasa. Helicasa. Luciferasa. Transcriptasa inversa.

¿Cuál es el fundamento principal de la técnica BRET?. La ruptura de puentes de hidrógeno del ADN. La transferencia de energía desde un donante a un aceptor fluorescente. La migración del ADN por carga negativa. La unión del SYBR Green a la doble hélice.

Señala la opción correcta sobre BRET: La fluorescencia se produce por la transferencia de energía entre moléculas cercanas. Es un colorante de arrastre que marca el frente de avance. Sustituye al marcador de peso molecular. Solo se usa en gel de papel.

Señala la opción correcta sobre la técnica BRET: Se utiliza para marcar el frente de avance de la electroforesis. Se basa en la transferencia de energía entre moléculas cercanas, produciendo fluorescencia detectable. Se emplea exclusivamente para separar fragmentos grandes de ADN. No implica emisión de fluorescencia.

¿En qué situación se utiliza la electroforesis de campo pulsante?. Para fragmentos pequeños de ADN de menos de 500 pb. Para moléculas de ADN muy grandes, superiores a 20.000 pb. Para separar aminoácidos en papel. Para sustituir la PCR en tiempo real.

La electroforesis convencional no es adecuada para moléculas de ADN muy grandes porque: El ADN pierde su carga negativa. Las moléculas no pueden avanzar correctamente por el gel de agarosa ni separarse por tamaño. El marcador de peso molecular deja de funcionar. El azul de bromofenol se vuelve fluorescente.

Señala la opción correcta sobre la electroforesis de campo pulsante: Utiliza geles de poliacrilamida con alta concentración. Utiliza geles de agarosa con poca concentración (1%) y alterna la dirección del campo eléctrico. Se emplea únicamente para proteínas plasmáticas. Se basa en la unión del SYBR Green a la doble hélice.

¿Cuál es la finalidad de alternar la dirección del campo eléctrico en la electroforesis de campo pulsante?. Aumentar el número de copias de ADN. Desplegar y orientar las moléculas grandes de ADN para facilitar su desplazamiento. Reducir la fluorescencia del gel. Evitar la necesidad de marcador molecular.

La electroforesis de campo pulsante permite: Separar proteínas pequeñas. Estudiar cromosomas completos. Estudiar grandes moléculas de ADN, pero no cromosomas completos. Amplificar ADN durante la migración.

Señala la opción correcta sobre la electroforesis de campo pulsante: Utiliza geles de poliacrilamida por su menor porosidad. Utiliza geles de agarosa de alta concentración. Utiliza geles de agarosa al 1%. No necesita ningún medio de soporte.

Qué técnica se utiliza para separar fragmentos de ADN mayores de 20.000 pb?. Electroforesis convencional en gel de agarosa. Electroforesis en gel de poliacrilamida. Electroforesis de campo pulsante. PCR en tiempo real.

¿Cuál es la finalidad de alternar la dirección del campo eléctrico en la electroforesis de campo pulsante?. Desnaturalizar el ADN. Hibridar cebadores. Facilitar el desplazamiento de moléculas grandes orientándolas en el espacio. Aumentar la fluorescencia del SYBR Green.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones es correcta?. La electroforesis de campo pulsante amplifica ADN muy grande. La electroforesis de campo pulsante sustituye a la PCR. La electroforesis de campo pulsante separa ADN muy grande alternando la dirección del campo eléctrico. La electroforesis de campo pulsante detecta fluorescencia en tiempo real.

¿Qué afirmación es FALSA sobre la electroforesis de campo pulsante?. Se utiliza para ADN mayor de 20.000 pb. Emplea agarosa al 1%. Alterna la dirección del campo eléctrico. Se utiliza principalmente para fragmentos pequeños de ADN menores de 2.000 pb.

Señala la opción correcta sobre la electroforesis de campo pulsante: Se usa para fragmentos pequeños y gel de poliacrilamida. Se usa para ADN >20.000 pb, con agarosa al 1% y alternando la dirección del campo eléctrico. Permite estudiar cromosomas completos. Sustituye a la PCR.

¿Cuál es la finalidad de alternar la dirección del campo eléctrico de una esquina a la esquina opuesta en la electroforesis de campo pulsante?. Para desnaturalizar el ADN antes de la migración. Para hibridar los cebadores a la cadena molde. Para que las moléculas de ADN grandes se desplieguen y se orienten en el espacio, facilitando su desplazamiento. Para aumentar la fluorescencia de los colorantes durante la migración.

¿Qué técnica de electroforesis se utiliza para separar moléculas de ADN muy grandes (>20.000 pb)?. Electroforesis convencional en gel de agarosa. Electroforesis en gel de poliacrilamida. Electroforesis de campo pulsante. PCR en tiempo real.

Señala la opción correcta: La electroforesis convencional puede separar ADN de más de 20.000 pb sin problemas. La electroforesis de campo pulsante utiliza geles de poliacrilamida de alta concentración. La electroforesis de campo pulsante alterna el campo eléctrico para que moléculas de ADN muy grandes se orienten y se desplacen. La electroforesis convencional requiere alternar el campo eléctrico para separar fragmentos pequeños.

Relaciona el tipo de gel y la técnica según el tamaño de las moléculas: Gel de agarosa al 1%, electroforesis convencional → ADN >20.000 pb. Gel de poliacrilamida, electroforesis convencional → ADN >20.000 pb. Gel de poliacrilamida, electroforesis convencional → ADN <2.000 pb. Gel de agarosa al 1%, electroforesis de campo pulsante → ADN <500 pb.