BIOLOGIA MOLECULAR
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Título del Test:
![]() BIOLOGIA MOLECULAR Descripción: T.6 Videotutoría 22 |



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La técnica FISH multicolor (M-FISH) emplea: 2 sondas. 24 sondas diferentes. 46 sondas. 1 sonda universal. La técnica M-FISH permite obtener: Un cariotipo coloreado. Un gel de proteínas. Una PCR cuantitativa. Un blot radiactivo. La diferencia principal entre SKY y M-FISH es que: SKY necesita una sola exposición a la luz fluorescente, mientras que M-FISH necesita 24 exposiciones con filtros distintos. M-FISH necesita una sola exposición. SKY no usa fluorescencia. M-FISH no colorea cromosomas. La hibridación genómica comparada (CGH): Compara todo el ADN entre una muestra problema y una muestra control. Solo analiza proteínas. No deriva de FISH. Requiere cultivo de fibroblastos. En la técnica CGH, el color verde indica: Deleción. Duplicación. Ausencia de ADN. No alteración. La técnica CISH se caracteriza porque: Requiere microscopio de fluorescencia obligatoriamente. Precisa mayor tiempo de incubación, es menos costosa y no requiere microscopio de fluorescencia. Es siempre más sensible que FISH. Solo puede aplicarse en cromosomas metafásicos. Una diferencia importante de la técnica CISH respecto a FISH es que CISH: Requiere siempre microscopio de fluorescencia. No necesita microscopio de fluorescencia y suele ser menos costosa. Es siempre más sensible. Solo detecta proteínas. La técnica CISH puede resultar menos sensible, por lo que en algunos casos es necesario utilizar: PCR. FISH. Western blot. Southern blot. Señala la afirmación CORRECTA sobre CISH: Es más rápida que SISH y requiere fluorescencia. Puede necesitar mayor tiempo de incubación, no requiere microscopio de fluorescencia y puede ser menos sensible que FISH. Es exclusivamente una técnica proteómica. No permite localizar secuencias en tejidos. La técnica SISH apareció: Antes que CISH. Después de CISH. Antes que FISH. Al mismo tiempo que PCR. La técnica SISH se basa en: Un principio completamente distinto al de CISH. El mismo principio básico que CISH. Electroforesis capilar. Secuenciación masiva. Una característica de la técnica SISH es que: Requiere más tiempo que todas las demás técnicas. Requiere menos tiempo que otras técnicas y no necesita microscopio de fluorescencia. Solo se observa con microscopio de fluorescencia. No permite estudiar tejidos. La técnica SISH presenta como ventaja adicional que: Necesita 24 filtros distintos. Permite la automatización de los procesos. Solo sirve para cariotipos coloreados. Requiere cultivo prolongado de fibroblastos. En la técnica SISH, tras la hibridación, la detección puede realizarse mediante: Una sonda marcada con antígeno y anticuerpos marcados con color frente al antígeno. Enzimas de restricción y electroforesis. Radiactividad exclusivamente. Solo fluorescencia directa de la sonda. En el esquema de SISH, los anticuerpos marcados con color se unen: Directamente al ADN de la muestra. Al antígeno de la sonda marcada. A los cromosomas sexuales. A las proteínas del citoplasma. ¿Qué técnica puede requerir mayor tiempo de incubación y resultar menos sensible, siendo en ocasiones sustituida por FISH?. SKY. CISH. M-FISH. CGH. ¿Qué técnica apareció después de CISH, no requiere microscopio de fluorescencia y permite automatización?. FISH. SISH. SKY. Southern blot. ¿Cuál de las siguientes técnicas NO requiere microscopio de fluorescencia?. FISH. CISH y SISH. Solo FISH. M-FISH exclusivamente. Señala la afirmación CORRECTA: CISH y SISH requieren microscopio de fluorescencia. FISH no utiliza fluorescencia. CISH puede ser menos sensible que FISH, mientras que SISH requiere menos tiempo y permite automatización. SISH apareció antes que CISH. ¿Cuál de las siguientes comparaciones entre CISH y SISH es CORRECTA?. CISH apareció después de SISH y ambas requieren microscopio de fluorescencia. CISH requiere mayor tiempo de incubación y puede ser menos sensible, mientras que SISH apareció después, requiere menos tiempo, no necesita microscopio de fluorescencia y permite automatización. SISH es menos moderna que CISH y necesita fluorescencia. CISH y SISH solo detectan proteínas. La técnica CISH se caracteriza porque: Requiere microscopio de fluorescencia. Precisa mayor tiempo de incubación, es menos costosa y no requiere microscopio de fluorescencia. Es siempre más sensible que FISH. Solo sirve para proteínas. La técnica CISH puede resultar menos sensible, por lo que en algunos casos es necesario utilizar: PCR. FISH. Western blot. ELISA. La técnica SISH apareció: Antes que CISH. Después de CISH. Antes que FISH. Después de SKY. Una característica de la técnica SISH es que: Requiere menos tiempo que otras técnicas, no necesita microscopio de fluorescencia y permite automatización. Necesita fluorescencia obligatoria. Es más lenta que CISH. Solo se usa en cariotipos. En la técnica SISH, los anticuerpos marcados con color se unen: Directamente al ADN. Al antígeno de la sonda marcada. A proteínas de membrana. A los cromosomas sexuales. En la actualidad, muchas sondas utilizadas en hibridación proceden de: Mitocondrias aisladas. Cromosomas artificiales bacterianos (BAC). Ribosomas citoplasmáticos. Plásmidos virales exclusivamente. Respecto a la estabilidad de la hibridación, una mayor longitud de la cadena híbrida implica: Menor número de puentes de hidrógeno y menor estabilidad. Mayor número de puentes de hidrógeno y mayor estabilidad. Menor especificidad obligatoriamente. Ausencia de desnaturalización. A mayor longitud de la cadena híbrida: Menor estabilidad de la hibridación. Mayor estabilidad de la hibridación. Menor complementariedad. Menor concentración de sonda. La hibridación entre dos cadenas será estable cuando la complementariedad supere aproximadamente: 30%. 50%. 70%. 100% obligatoriamente. Señala la afirmación CORRECTA sobre la complementariedad en la hibridación: Todas las bases deben ser siempre complementarias sin excepción. Pueden existir bases erróneas sin unir, y la hibridación puede seguir siendo estable si la complementariedad supera el 70%. La complementariedad no influye en la estabilidad. Si existe una sola base no complementaria, no hay hibridación. Las sondas con mayor contenido en guanina y citosina (GC) son más estables porque: Presentan un solo puente de hidrógeno. Tienen tres puentes de hidrógeno. Tienen menor complementariedad. No necesitan desnaturalización. Una sonda con mayor proporción de G y C tendrá, en general: Menor estabilidad. Mayor estabilidad. Menor temperatura de desnaturalización. Menor afinidad por la secuencia diana siempre. La temperatura necesaria para desnaturalizar una molécula de ADN será mayor cuando: Exista menor contenido en guanina y citosina. Exista mayor contenido en guanina y citosina. La concentración de sonda sea menor. El pH sea neutro exclusivamente. La temperatura de desnaturalización varía según: Solo el volumen de muestra. La composición de nucleótidos. Exclusivamente el tipo de microscopio. Únicamente el color del marcador. Señala la afirmación CORRECTA sobre la temperatura en la hibridación: Las moléculas con más G y C requieren menos temperatura para separarse. Las moléculas con más G y C requieren más temperatura para desnaturalizarse. La temperatura no influye en la desnaturalización. La temperatura solo afecta a proteínas. Respecto a la concentración de sonda: Cuanta menor concentración, mayor probabilidad de hibridación. Cuanta mayor concentración, mayor probabilidad de hibridación. La concentración no influye. Solo influye en técnicas proteicas. Un aumento en la concentración de sonda produce generalmente: Menor probabilidad de hibridación. Mayor probabilidad de hibridación. Desnaturalización inmediata. Pérdida total de especificidad en todos los casos. El pH influye en la hibridación porque: Afecta a la desnaturalización y debe mantenerse en un rango adecuado. No tiene ninguna relación con la estabilidad. Solo influye en proteínas. Únicamente modifica el color de la señal. ¿Cuál de los siguientes factores favorece una mayor estabilidad de la hibridación?. Menor longitud de cadena, menor complementariedad y bajo contenido en GC. Mayor longitud de cadena, complementariedad superior al 70% y mayor contenido en G y C. Bajo contenido en GC y menor temperatura de desnaturalización. pH fuera de rango y baja concentración de sonda. Señala la afirmación INCORRECTA sobre la estabilidad de la hibridación: Una mayor longitud de la cadena híbrida aumenta la estabilidad. Las sondas ricas en G y C son más estables. La hibridación solo es estable si la complementariedad es del 100%. Una mayor concentración de sonda aumenta la probabilidad de hibridación. ¿Qué afirmación sobre la composición de nucleótidos es CORRECTA?. Las moléculas ricas en A y T son siempre más estables que las ricas en G y C. Las moléculas con mayor contenido en G y C son más estables y requieren mayor temperatura para desnaturalizarse. El contenido en G y C no influye en la estabilidad. G y C forman dos puentes de hidrógeno. La técnica CGH (hibridación genómica comparada) permite: Analizar únicamente un gen específico. Escanear el genoma completo detectando ganancias y pérdidas de material genético. Detectar exclusivamente proteínas. Amplificar ADN mediante PCR. La técnica CGH deriva de: PCR. FISH. Western blot. Electroforesis capilar. En la actualidad, la técnica CGH ha sido en gran parte sustituida por: Southern blot. Microarrays. PCR convencional. Electroforesis en gel. La resolución de la técnica CGH para detectar ganancias o pérdidas de ADN es aproximadamente de: 1–2 kb. 5–20 Mb. 100–200 Mb. 1–5 Gb. En la técnica CGH, el ADN del paciente se marca con: Rojo. Verde. Azul. Amarillo. En la técnica CGH, el ADN control se marca con: Verde. Rojo. Azul. Amarillo. En la técnica CGH, una señal amarilla indica: Deleción. Duplicación. Ausencia de hibridación. No alteración genética. ¿Qué indica una señal verde predominante en CGH?. Deleción. Ganancia de material genético. No alteración. Fallo técnico. ¿Qué indica una señal roja predominante en CGH?. Ganancia de material genético. Deleción. No alteración. Duplicación equilibrada. En la técnica CGH, el ADN del paciente y del control: Se analizan por separado sin interacción. Compiten por hibridar con el ADN en metafase. Se destruyen antes del análisis. Se amplifican mediante PCR. En la técnica CGH se utiliza: Solo ADN del paciente. ADN del paciente, ADN control y ADN de células en metafase. Solo ARN. Proteínas marcadas. En la técnica CGH, la cantidad de ADN del paciente y del control: Debe ser diferente. Debe ser la misma. No influye. Solo importa el ADN control. El análisis de resultados en CGH se basa en: Tamaño de fragmentos en gel. Intensidad de la señal fluorescente. Peso molecular. Número de cromosomas. La lectura de resultados en CGH se realiza mediante: Microscopio óptico simple. Microscopio de fluorescencia y software de análisis. Centrifugación. Electroforesis. ¿Cuál de las siguientes afirmaciones describe correctamente la técnica CGH?. Analiza un único gen mediante una sonda fluorescente. Compara el ADN del paciente y un control, marcados con fluorocromos distintos, que compiten por hibridar con ADN en metafase, permitiendo detectar ganancias y pérdidas de material genético en todo el genoma. Solo detecta proteínas en células tumorales. Requiere 24 sondas diferentes para cada cromosoma. Señala la afirmación INCORRECTA sobre la técnica CGH: Permite analizar el genoma completo. El ADN del paciente se marca en verde. El ADN control se marca en verde. Puede detectar ganancias y pérdidas de material genético. La técnica CGH (hibridación genómica comparada) permite: Analizar únicamente un gen específico. Escanear el genoma completo detectando ganancias y pérdidas de material genético. Detectar exclusivamente proteínas. Amplificar ADN mediante PCR. La técnica CGH deriva de: PCR. FISH. Western blot. Electroforesis capilar. En la actualidad, la técnica CGH ha sido en gran parte sustituida por: Southern blot. Microarrays. PCR convencional. Electroforesis en gel. Cuando el ADN del paciente y el del control hibridan en la misma proporción, el resultado es: Verde. Rojo. Amarillo. Azul. ¿Por qué una duplicación en el ADN del paciente aparece en color verde en CGH?. Porque el ADN control hibrida más. Porque el ADN del paciente hibrida en mayor proporción que el control. Porque no hay hibridación. Porque ambos ADN hibridan igual. ¿Por qué una deleción en el ADN del paciente aparece en color rojo en CGH?. Porque el ADN del paciente hibrida más. Porque solo hibrida el ADN del control en esa zona. Porque no hay hibridación. Porque ambos ADN hibridan igual. En la técnica CGH, las reordenaciones cromosómicas: Se detectan fácilmente. Se detectan solo con software. No pueden observarse. Aparecen en color amarillo. Las reordenaciones del material genético no se detectan en CGH porque: No hay fluorescencia. Ambos ADN hibridan de igual forma aunque la información esté en distinta ubicación. No se usa ADN control. No hay complementariedad. ¿Qué tipo de alteración genética NO puede detectarse mediante CGH?. Deleciones. Duplicaciones. Reordenaciones cromosómicas. Pérdidas de material genético. ¿Por qué no se detectan las reordenaciones en CGH?. No hay fluorescencia. Ambos ADN hibridan de igual forma aunque la información esté en distinta ubicación. No se usa ADN control. No hay complementariedad. ¿Con qué ADN hibridan el paciente y el control en CGH?. Con ARN mensajero. Con ADN en metafase. Con proteínas nucleares. Con enzimas de restricción. En la técnica CGH, el ADN del paciente y el control: Se analizan por separado. Se mezclan y compiten por hibridar con ADN metafásico. Se destruyen antes del análisis. Se amplifican por PCR. El análisis de resultados en CGH se basa en: Tamaño de fragmentos. Intensidad de la señal del fluorocromo. Número de cromosomas. Peso molecular. La lectura de resultados en CGH se realiza mediante: Microscopio óptico simple. Microscopio de fluorescencia y software de análisis. Centrifugación. Electroforesis. La técnica FICTION combina: PCR y electroforesis. Inmunofenotipado de fluorescencia y citogenética de interfase. Western blot y ELISA. CGH y microarrays. La técnica FICTION se utiliza principalmente para: Detectar proteínas plasmáticas. Detección temprana de neoplasias. Secuenciación de ADN. Amplificación génica. La técnica FICTION permite detectar células tumorales: Solo en grandes cantidades. Incluso cuando están en muy bajo porcentaje. Solo en sangre. Solo tras cultivo celular. Después de la fijación en FICTION, se realiza: CGH. FISH. Western blot. Northern blot. Señala la afirmación INCORRECTA sobre la técnica FICTION: Permite analizar células en interfase. Combina inmunofenotipado y FISH. Solo permite detectar células tumorales en grandes cantidades. Utiliza microscopía de fluorescencia. En las técnicas de hibridación es imprescindible trabajar en: Ambientes con alta humedad. Áreas libres de ADNasas y ARNasas. Medios ricos en proteínas. Temperaturas elevadas. Las ADNasas y ARNasas son enzimas que: Sintetizan ADN. Degradan ADN y ARN. Amplifican genes. Detectan proteínas. La presencia de ADNasas o ARNasas en una técnica de hibridación puede provocar: Mayor estabilidad de la hibridación. Rotura de las sondas y fallo en la hibridación. Aumento de fluorescencia. Mejora de resultados. ¿Por qué es importante trabajar en áreas libres de ADNasas y ARNasas?. Para aumentar la temperatura. Porque pueden degradar el ADN/ARN e impedir la hibridación. Para mejorar la centrifugación. Para aumentar la concentración de sonda. En técnicas de hibridación, se debe evitar la contaminación por: Solo agua. Cualquier tipo de residuo de moléculas orgánicas como ADN de la E.coli o enzimas. Aire. Luz. Respecto al control de calidad en técnicas de hibridación: No es importante. Solo afecta al final. Es necesario evitar nucleasas y contaminación. Solo afecta a proteínas. Señala la afirmación INCORRECTA sobre el control de calidad en hibridación: Las ADNasas degradan el ADN. Las ARNasas degradan el ARN. La contaminación orgánica no afecta a los resultados. Es necesario trabajar en condiciones libres de nucleasas. ¿Cuál de las siguientes condiciones es esencial para garantizar una correcta hibridación con sondas?. Uso de materiales contaminados. Presencia de ADNasas. Trabajo en áreas libres de nucleasas y contaminación orgánica. Alta concentración de enzimas digestivas. La contaminación con ADN externo puede: No afectar. Modificar los resultados. Mejorar la técnica. Aumentar la precisión. Respecto al control de calidad: No es importante. Solo afecta al final. Es necesario evitar nucleasas y contaminación. Solo afecta a proteínas. En un análisis FISH de espermatozoides se utilizan sondas fluorescentes: ¿A qué cromosoma corresponde cada color?. Rojo → 18; Verde → 21; Amarillo → X. Rojo → 21; Verde → 18; Amarillo → Y. Rojo → X; Verde → 21; Amarillo → 18. Rojo → 18; Verde → X; Amarillo → 21. En un análisis FISH de espermatozoides (cromosoma 18 rojo, 21 verde, X amarillo), un espermatozoide presenta dos señales rojas y una amarilla. ¿Qué indica este resultado?. Monosomía del cromosoma 18. Dos puntos rojos, duplicación del cromosoma 18. Disomía del cromosoma X. Resultado normal. Un espermatozoide presenta una señal roja, dos verdes y una amarilla. ¿Cuál es la alteración?. Monosomía del cromosoma 21. Duplicación (disomía) del cromosoma 21. Trisomía completa. Resultado normal. Un espermatozoide presenta una señal roja y una amarilla, sin señal verde. ¿Qué indica este resultado?. Disomía del cromosoma 21. Monosomía (pérdida) del cromosoma 21. Resultado normal. Disomía del cromosoma 18. Un espermatozoide muestra una señal roja cromosoma 18, una verde cromosoma 21 y ninguna señal amarilla cromosoma x. ¿Cuál es la interpretación más correcta?. Monosomía del cromosoma X. Puede ser un espermatozoide con cromosoma Y (normal). Disomía del cromosoma 18. Deleción del cromosoma 21. ¿Qué indica la presencia de dos señales del mismo cromosoma en un espermatozoide?. Monosomía. Disomía (duplicación). Deleción. Normalidad. ¿Qué indica la ausencia de señal de un cromosoma en FISH?. Disomía. Monosomía (pérdida). Duplicación. Resultado normal. |




