biologia tema 5

¿Qué polimerasa es la más usada para la mayoría de propósitos de la PCR?. Pfu Polimerasa. ADNpol I. Taq Polimerasa. ARNpol.

2. ¿Qué primer es complementario y antiparalelo a la hebra 3’-5’ del ADN molde?. forward. reverse. ninguna. forward y reverse.

3. Fases de un ciclo de amplificación típico de una PCR convencional. Amplificación final, replicación, elongación, disgregación, annealing. Desnaturalización, annealing, elongación, amplificación final, almacenamiento temporal. Desnaturalización, annealing, elongación, amplificación temporal, almacenamiento final. Desnaturalización, annealing, elongación, amplificación global, almacenamiento a -80ºC.

¿Qué se usa, habitualmente, en la qPCR para cuantificar la reacción de amplificación?. Pfu Polimerasa. Bromuro de etidio. Fluorocromos. Taq Polimerasa.

¿Qué es el efecto FRET?. Transferencia de energía radiactiva, mediante resonancia, entre dos moléculas. Transferencia de energía fluorescente, mediante resonancia, entre dos moléculas. ransferencia de energía fluorescente, mediante hibridación, entre dos moléculas. Todas son incorrectas.

Qué tipo de PCR se emplea para la detección del genoma del SARS-CoV-2?. PCR convencional. QPCR. PCR en tiempo real. RT-PCR.

¿Qué electroforesis se realiza siempre en cámaras verticales?. En geles de acrilamida. En geles de agarosa. Electroforesis de campo pulsado. Electroforesis de plásmido.

¿Cuál de los siguientes NO es un factor que afecte a la migración del ADN en una electroforesis en gel de agarosa?. Conformación del ADN. Agentes intercalantes. Composición del buffer de electroforesis. Concentración de la acrilamida.

¿Qué muestra es la mayoritaria para el diagnóstico de la COVID19 en nuestro medio?. Hisopo nasofaríngeo u orofaringeo. LBA. Sangre venosa. sangre capilar.

¿Qué tipos de ADN son los más usados en ciencias forenses?. ADNc. ADNg. ADNr. ADN minisatélite y ADN microsatélit.

La PCR digital se caracteriza por: Cuantificación absoluta de copias de ADN. Uso exclusivo en forense. Amplificación masiva no cuantitativa. No utilizar fluorescencia.

La electroforesis capilar se caracteriza por: Alta resolución y automatización. Uso de geles de agarosa. Baja resolución. Uso exclusivo de bromuro de etidio.

El bromuro de etidio se utiliza para: . Amplificar ADN. Precipitar ácidos nucleicos. Visualizar ADN por fluorescencia. Ligar fragmentos.

La PCR se basa en: Ciclos repetidos de temperatura. Fluorescencia directa. Reacciones enzimáticas a temperatura constante. Electroforesis en gel.

El marcador de peso molecular permite: Amplificar ADN. Comparar tamaños de fragmentos. Detectar ARN. Cuantificar proteínas.

La concentración de agarosa en el gel influye en: La tinción. La fluorescencia. La amplificación. La velocidad y resolución de separación.

Una aplicación forense de la PCR es: Análisis proteico. Cultivo celular. Estudio de cariotipos. Identificación genética de individuos.

Un marcador de peso molecular también se denomina: Sonda. Patrón. Cebador. Control negativo.

El bromuro de etidio se caracteriza por ser: Termolábil. Mutagénico. Un inhibidor enzimático. Inocuo.

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) permite: Amplificar regiones específicas de ADN. Separar fragmentos por tamaño. Visualizar cromosomas. Secuenciar proteínas.

Tras la electroforesis, los geles se visualizan mediante: Transiluminador UV. Microscopio óptico. Termociclador. Espectrofotómetro.

El Mg²⁺ en la PCR es importante porque: Desnaturaliza el ADN. Estabiliza los cebadores. Inhibe la Taq polimerasa. Actúa como cofactor de la ADN polimerasa.

La migración del ADN en electroforesis se produce hacia: Ambos polos. El ánodo. El cátodo. El centro del gel.

La Taq polimerasa se caracteriza por: Ser sensible al calor. Sintetizar ARN. Degradar ADN. Proceder de Thermus aquaticus.

La PCR a tiempo real (qPCR) permite: Detectar proteínas. Visualizar cromosomas. Secuenciar ADN. Cuantificar ADN durante la amplificación.

La enzima clave en la PCR es: ADN polimerasa termoestable. ADN ligasa. Transcriptasa inversa. ARN polimerasa.

La ausencia de uno de los cebadores en una PCR provocará: Amplificación normal. Ausencia de amplificación. Amplificación parcial. Amplificación inespecífica.

Los dNTPs son necesarios porque: Son sustratos para la síntesis de ADN. Inhiben nucleasas. Actúan como cebadores. Desnaturalizan el ADN.

Una causa frecuente de falsos positivos en PCR es: Contaminación con productos amplificados. Falta de ADN molde. Ausencia de Mg²⁺. Baja temperatura de desnaturalización.

Los cebadores (primers) son: Proteínas reguladoras. Enzimas termoestables. Oligonucleótidos complementarios a la secuencia diana. Fragmentos largos de ADN.

Una concentración excesiva de Mg²⁺ puede provocar: Amplificación inespecífica. Falta de amplificación. Inhibición completa de la PCR. Degradación del ADN.

En condiciones ideales, en cada ciclo de PCR la cantidad de ADN: Se degrada. Se duplica. Permanece constante. Se reduce a la mitad.

La RT-PCR se utiliza para: Analizar proteínas. Separar fragmentos. Amplificar ADN genómico. Amplificar ADN a partir de ARN.

La electroforesis en gel de agarosa permite: Detectar proteínas. Separar fragmentos de ácidos nucleicos por tamaño. Sintetizar ADN. Amplificar ADN.

Una aplicación diagnóstica de la PCR es: Identificación de proteínas. Diagnóstico de enfermedades genéticas. Tinción cromosómica. Análisis histológico.

La temperatura habitual de desnaturalización en la PCR es aproximadamente: 94–95 °C. 50. 60 °C. 72 °C.

El tampón de electroforesis tiene como función: Teñir el ADN. Mantener el pH y conducir la corriente eléctrica. Desnaturalizar proteínas. Amplificar ADN.

Un componente esencial de la PCR es: Ribosomas. dNTPs. Histonas. Aminoácidos.

La etapa de extensión tiene lugar gracias a: La transcriptasa inversa. Las nucleasas. La ADN ligasa. La ADN polimerasa.

La PCR multiplex permite: Amplificar varias regiones simultáneamente. Amplificar una sola región. Secuenciar ADN. Cuantificar ARN.

La etapa de desnaturalización de la PCR consiste en: Síntesis de ADN. Visualización del producto. Unión de cebadores. Separación de las hebras de ADN.

El buffer de carga se añade a las muestras para: Amplificar ADN. Fijar los fragmentos. Aumentar su densidad y visualizar la migración. Desnaturalizar el ADN.

El movimiento del ADN se debe a: Su carga negativa por los grupos fosfato. Su estructura proteica. Su carga positiva. Su tamaño molecular.

La etapa de alineamiento (annealing) permite: Separar las hebras. Migrar el ADN. Sintetizar proteínas. Unir los cebadores a la secuencia molde.

El tampón TAE se diferencia del TBE porque: No permite migración del ADN. Ofrece menor capacidad tamponadora. Es exclusivo para proteínas. No conduce electricidad.

La PCR anidada (nested PCR) se utiliza para: Reducir el tiempo de reacción. Aumentar la especificidad. Eliminar la electroforesis. Evitar el uso de cebadores.

La temperatura de alineamiento (annealing) depende principalmente de: La longitud y composición de los cebadores. El tamaño del gel. El tipo de tampón. La concentración de agarosa.

En la electroforesis en gel de agarosa, los fragmentos más pequeños: No migran. Permanecen en el pocillo. Migran más lentamente. Migran más rápidamente.

El termociclador es el equipo que permite: Separar fragmentos de ADN. Controlar ciclos de temperatura durante la PCR. Cuantificar ácidos nucleicos. Visualizar productos amplificados.

La temperatura óptima de extensión para la Taq polimerasa es: 37 °C. 50 °C. 72 °C. 60 °C.