Biomedicina

¿Cuál es el objetivo principal de la lisis celular durante la extracción de ADN?. Separar proteínas por tamaño. Romper células para liberar ADN. Amplificar fragmentos de ADN. Eliminar RNA.

¿Qué detergente desestabiliza membranas celulares durante la extracción de ADN?. EDTA. Triton X-100. SDS. Trizol.

La lisozima rompe enlaces: β-1,3 glucano. Fosfodiéster. β-1,4 entre N-acetil murámico y N-acetil glucosamina. Peptídicos.

¿Qué enzima rompe enlaces β-1,3 de glucano en levaduras?. Proteinasa K. Lisozima. Liticasa. Taq polimerasa.

¿Cuál es la función principal del EDTA en la solución de lisis?. Precipitar proteínas. Amplificar ADN. Quelar Mg2+ e inhibir nucleasas. Romper RNA.

¿Qué método se utiliza para eliminar restos celulares durante la clarificación?. PCR. Centrifugación. Electroforesis. Secuenciación.

El fenol se utiliza en purificación de ADN porque: Amplifica ADN. Desnaturaliza proteínas. Degrada lípidos. Activa nucleasas.

¿Qué sustancia provoca la precipitación del ADN?. Cloroformo. Guanidina. Alcohol (etanol/isopropanol). SDS.

¿Qué factor afecta la calidad y pureza del ADN obtenido?. Tipo de gel. Temperatura ambiental únicamente. Condición del material biológico. Color de la muestra.

Las RNAsas se caracterizan por: Ser fácilmente destruidas por calor. Ser muy resistentes. No existir en células humanas. Actuar solamente a pH ácido.

¿Qué compuesto se usa para inactivar RNAsas durante la extracción de RNA?. Trizol. Lactosa. IPTG. Bromuro de etidio.

El RNA mensajero puede purificarse mediante: Electroforesis. Columna de oligo dT. Proteinasa K. Lisozima.

La electroforesis separa moléculas según: Color y densidad. Solubilidad. Tamaño y carga eléctrica. Temperatura.

En electroforesis, las moléculas más pequeñas: Migran más lentamente. Permanecen inmóviles. Migran más rápido. Se degradan.

¿A qué longitud de onda absorben máximamente los ácidos nucleicos?. 180 nm. 220 nm. 260 nm. 340 nm.

La absorbancia a 280 nm indica principalmente presencia de: Carbohidratos. Lípidos. Proteínas. Sales.

El método de Sanger se basa en: Digestión enzimática. Síntesis de ADN con terminación específica. Hibridación fluorescente. Electroforesis bidimensional.

¿Qué enzima se usa en el método de Sanger?. Ligasa. Transcriptasa reversa. ADN polimerasa. Restrictasa.

¿Qué nucleótidos producen terminación en secuenciación Sanger?. dNTPs. ddNTPs. ATP. cAMP.

¿Cuál es el primer paso de la PCR?. Extensión. Alineamiento. Desnaturalización. Ligación.

La desnaturalización en PCR ocurre aproximadamente a: 37 °C. 50 °C. 72 °C. 90-95 °C.

¿Qué enzima se utiliza comúnmente en PCR?. Lisozima. Taq polimerasa. Ligasa. RNAsa.

La RT-PCR utiliza: Solo ADN. RNA como molde inicial. Proteínas. Lipopolisacáridos.

¿Cuál NO es una aplicación de la PCR?. Diagnóstico de enfermedades. Determinación de paternidad. Producción de ATP. Detección de mutaciones.

Las enzimas de restricción: Sintetizan proteínas. Cortan ADN en secuencias específicas. Unen fragmentos de ADN. Amplifican genes.

¿Qué enzima deja extremos romos?. EcoRI. HindIII. EcoRV. BamHI.

Los plásmidos son: Virus bacterianos. Proteínas reguladoras. Vectores de clonación. Ribosomas bacterianos.

El sitio de policlonación sirve para: Replicar RNA. Insertar fragmentos de ADN. Degradar proteínas. Sintetizar lípidos.

¿Qué enzima une fragmentos de ADN durante clonación?. ADN ligasa. Taq polimerasa. Lisozima. RNAsa.

La transformación consiste en: Introducción de ADN en células procariotas. Eliminación de plásmidos. Producción de proteínas. Secuenciación de RNA.

La transfección ocurre en: Solo bacterias. Células eucariotas. Virus únicamente. Mitocondrias.

¿Qué método utiliza descarga eléctrica para introducir ADN?. Choque térmico. Centrifugación. Electroporación. Filtración.

¿Cuál es la función de un marcador selectivo en un plásmido?. Degradar ADN. Dar resistencia a antibióticos. Sintetizar RNA. Romper membranas.

En el operón lac, la lactosa: Inhibe la transcripción. Destruye el represor. Actúa como inductor. Bloquea la RNA polimerasa.

En ausencia de lactosa: El operón permanece activo. LacI se une al operador. Se sintetiza β-galactosidasa constantemente. Se activa IPTG.

¿Qué característica tiene el IPTG?. Es degradado por β-galactosidasa. Es un antibiótico. Induce el operón lac sin metabolizarse. Inhibe permeasas.

¿Qué técnica permite editar genes de manera específica?. Electroforesis. CRISPR/Cas9. Southern blot. Centrifugación.

¿Qué ocurre durante el alineamiento en PCR?. Separación de cadenas. Unión de primers al ADN molde. Síntesis proteica. Digestión enzimática.

Qué vector se menciona para la sobreexpresión de proteínas recombinantes?. pUC19. pBR322. pET28a. λfago.

¿Cuál es la función del IPTG en sobreexpresión proteica?. Degradar proteínas. Actuar como antibiótico. Inducir expresión génica. Separar proteínas.

La cromatografía de intercambio iónico separa proteínas según: Tamaño. Solubilidad. Carga eléctrica. Peso molecular exclusivamente.

Las matrices con grupos aniónicos se denominan: Intercambiadores aniónicos. Intercambiadores catiónicos. Ligandos específicos. Fases móviles.

En cromatografía de exclusión molecular, las proteínas grandes: Entran fácilmente en los poros. Eluyen primero. Permanecen retenidas. Migran más lento.

La cromatografía de afinidad separa proteínas según: Masa molecular. Punto isoeléctrico. Unión específica a ligandos. Coloración.

¿Qué compuesto proporciona carga negativa a las proteínas en SDS-PAGE?. Azul de Coomassie. Tinción de plata. SDS. PVDF.

El SDS-PAGE permite: Detectar ADN. Determinar masa molecular aproximada. Amplificar genes. Secuenciar proteínas.

¿Qué tinción puede utilizarse para visualizar proteínas en gel?. Hematoxilina. Azul de Coomassie. Cristal violeta. Eosina.

El isoelectroenfoque permite determinar: Secuencia de ADN. Peso molecular exacto. Punto isoeléctrico. Actividad enzimática.

Durante el isoelectroenfoque, las proteínas migran hasta: Agotarse el ATP. Alcanzar su pI. Romperse el gel. Unirse al SDS.

La electroforesis bidimensional combina: PCR y ELISA. Punto isoeléctrico y masa molecular. Cromatografía y secuenciación. Southern y Northern blot.

La técnica 2DE es más sensible que: PCR. ELISA. SDS-PAGE. Western blot.

¿Qué técnica identifica proteínas específicas mediante anticuerpos?. Southern blot. Western blot. Northern blot. ELISA indirecto.

¿Cuál es el primer paso del Western blot?. Transferencia a membrana. Separación por tamaño. Adición de anticuerpo. Revelado colorimétrico.

¿Qué membranas se utilizan en Western blot?. Agarosa y sílica. Nitrocelulosa o PVDF. Poliestireno. Acetato de celulosa exclusivamente.

El Southern blot detecta: Proteínas. RNA. ADN específico. Lípidos.

El Northern blot evalúa: Expresión génica mediante mRNA. Actividad enzimática. Síntesis proteica directa. ragmentación del ADN.

El Southwestern blot detecta: Lípidos de membrana. Proteínas que se unen al ADN. Carbohidratos. Fragmentos de RNA.

ELISA significa: Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay. Enzyme Ligated DNA Sequence Analysis. Electrophoretic Linked Immunoassay. Enhanced Ligase Immunoblot System Assay.

En ELISA, la detección depende de: Ribosomas. Anticuerpos unidos a enzimas. RNA polimerasa. Ligasa.

¿Cuál es una aplicación de ELISA?. Clonación molecular. Detección viral. Secuenciación genómica. Digestión proteica.

Un falso positivo en ELISA significa: Ausencia total de anticuerpos. Confirmación absoluta de enfermedad. Presencia detectable de anticuerpos sin enfermedad activa. Error exclusivo del equipo.

Un falso negativo puede ocurrir por: Alta concentración de anticuerpos. Baja concentración de anticuerpos. Exceso de proteínas estructurales. Incremento del pH.

La bioinformática aplica herramientas computacionales al estudio de: Reacciones químicas exclusivamente. Datos biológicos. Anatomía macroscópica. Tejidos histológicos únicamente.

¿Qué técnica permite comparar secuencias biológicas?. Western blot. ELISA. BioEdit. Southern blot.

BLAST se utiliza principalmente para: Separar proteínas. Comparar secuencias biológicas. Purificar ADN. Detectar anticuerpos.

¿Qué técnica permite analizar la estructura tridimensional de proteínas?. ELISA. I-TASSER. Southern blot. Northern blot.

¿Qué colorante posee mayor sensibilidad para proteínas en gel?. Azul de Coomassie. Tinción de plata. Eosina. afranina.

¿Cuál es una ventaja de ELISA?. No requiere anticuerpos. Es robusto y versátil. Solo detecta bacterias. No produce falsos resultados.

¿Qué técnica usa anticuerpos para cuantificación de productos?. ELISA. PCR. Southern blot. Clonación.

En cromatografía de afinidad, la proteína de interés se recupera: Rompiendo el gel. Mediante solución competidora del ligando. Por centrifugación. Por calentamiento extremo.