Biomol técnicas

Cuando se lleva a cabo el proceso de desnaturalización del DNA por medio de agentes físicos o químicos, cambios de pH y/o enzimas, los agentes desnaturalizantes como el formaldehído, la formamida y la urea, son compuestos altamente polares, por lo tanto, compiten con los grupos amino y carbonilo de las bases nitrogenadas impidiendo la formación de ____________, que como consecuencia darán lugar a la separación de las hebras: Puentes de hidrógeno. Puentes disulfuro. Enlaces fosfodiéster. Enlaces covalentes.

El tratamiento de desnaturalización del ADN se puede llevar a cabo también utilizando soluciones con pH’s muy alcalinos y/o ácidos; sin embargo, no es recomendable realizar la desnaturalización con este tipo de sustancias debido a que rompen ______________________ y, por lo tanto, perder la estructura primaria del ADN: Puentes de hidrógeno. Puentes disulfuro. Enlaces fosfodiéster. Enlaces covalentes.

Temperatura a la cual se ha llevado a cabo la desnaturalización del 50% de las moléculas de ADN contenido en una muestra que se está calentando: Temperatura de ebullición. Temperatura de fusión. Temperatura de congelación. Temperatura de evaporación.

Si una muestra tiene un elevado punto de fusión, significa que: Alto contenido de A – T. Alto contenido de T – U. Alto contenido de G – C. Alto contenido de tripletes T – U – U.

Si una muestra tiene bajo punto de fusión, significa que: Alto contenido de A – T. Alto contenido de T – U. Alto contenido de G – C. Alto contenido de tripletes T – U – U.

Una manera de vigilar la pérdida de la estructura helicoidal del ADN, es tomando lecturas de absorción en un espectrofotómetro, ya que el ADN de cadena sencilla tiene una absorbancia relativamente mayor que la absorbancia del ADN de cadena doble ¿Cuál es la longitud de onda utilizada para la vigilancia de desnaturalización?. 340 nm. 405 nm. 630 nm. 260 nm.

Si se requiere renaturalizar el ADN desnaturalizado, se debe de hacer lo siguiente: Retirar bruscamente el agente desnaturalizante. Retirar gradualmente el agente desnaturalizante. Congelar las muestras desnaturalizadas. Agregar un ácido o base para neutralizar, según sea el caso.

Cuando se lleva a cabo la extracción de ADN por centrifugación en gradiente de concentración, ¿qué solución se utiliza?. Cloruro de Sodio. Cloruro de Amonio. Cloruro de Cesio. Cloruro de Magnesio.

Dos frascos que contienen disoluciones “A” y “B” se indican las siguientes concentraciones; frasco “A” = 5 mM; frasco “B” = 5 µM. ¿Cuántas veces es más concentrada la disolución del frasco “A” que la del frasco “B”?. 1000 veces. 5000 veces. 3500 veces. 6000 veces.

Con base a la pregunta anterior, para el proceso A B, cuál sería la dilución final, o cuál sería el factor de dilución: 1:5000. 1:10000. 1:1000. 1:100000.

¿Qué volumen de disolución 1M debo de tomar para preparar 500 mL de disolución con una concentración final de 100 mM?. 250 mL. 50 mL. 100 mL. 150 mL.

¿Qué factor de dilución debo de utilizar para preparar una disolución 10 mM de NaOH a partir de una solución madre de NaOH 1 M?. 300. 250. 100. 1000.

Se necesita preparar una solución 100 mM de Tris base a partir de una solución madre de Tris base 1 M. ¿Cuál es la proporción – fracción de la disolución final estará formada por la inicial?. 100. 1000. 10000. 10.

En un procedimiento del departamento de Biología Molecular se requiere la preparación de diluciones 1/10 sucesivas, también llamadas diluciones dobles seriadas. Si se requiere de que el volumen de cada tubo sea de 1.0 mL, ¿cómo se prepararía dicha serie de diluciones?. Cada dilución se prepara mezclando 100 µL de la anterior más 900 µL de H2O. Cada dilución se prepara mezclando 10 µL de la anterior más 900 µL de H2O. Cada dilución se prepara mezclando 1000 µL de la anterior más 900 µL de H2O. Cada dilución se prepara mezclando 1 µL de la anterior más 900 µL de H2O.

En un procedimiento del departamento de Biología Molecular se tiene que cuantificar una solución de proteínas para poder realizar los estudios siguientes. Al momento de realizar un ensayo de medida de concentración, te das cuenta de que tienes que diluir solución debido a que la absorbancia obtenida no es fiable. Se procede a diluir la solución con agua destilada y desionizada 1:1 por 3 veces sucesivas y cuando se realiza la lectura, cada una de ellas todavía arroja lecturas no fiables. Por último, realizas una dilución 1/10 a la última muestra preparada y esta sí arroja resultados de absorbancia confiables, obteniendo un resultado de 250 µg/mL. ¿Cuál sería la concentración de la muestra original, de donde partiste con la primera dilución?. 2000 µg/ml = 2 g/ml. 20000 µg/ml = 20 g/ml. 200 µg/ml = 0.2 g/ml. 20 g/ml = 0.02 g/ml.

Se toman 1 mL de solución Tris base de un frasco y se le añaden 1.5 mL de diluyente. De esta dilución se toman 1.7 ml y se mezclan con 2.4 ml de diluyente. Al final, se toman 1 ml de esta solución y se le adicionan 19.0 ml de diluyente. Calcular el factor de dilución final. 240. 300. 120. 280.

Se prepara una disolución mezclando 5.0 mL de Glucosa 15 mM con 15 mL de NaCl 0.5 M. ¿Cuál es la concentración de ambas disoluciones en la disolución final?. 0.5 mM y 3.75. 1.5 mM y 0.375 M. 0.75 mM y 2.75 M. 3.75 mM y 0.375 M.

Se prepara una disolución mezclando 1.0 mL de sacarosa 250 mM con 4.0 mL de NaCl 1.0 M. ¿Cuáles son las concentraciones de ambas disoluciones en la disolución final?. 50 mM y 0.8 M. 250 mM y 0.25 M. 125 mM y 0.125 M. 50 mM y 0.16 M.

Secuencia ordenada para la extracción de DNA genómico: Lisis-Centrifugación-EtOH-EtOH 70%-Elución-DNA. Lisis-EtOH-Elución-EtOH 70%-Centrifugación-DNA. Lisis-Centrifugación-EtOH 70%-EtOH-Elución-DNA.

Técnica en biología molecular en donde el DNA se digiere utilizando una enzima de restricción y los fragmentos obtenidos se separan por medio de electroforesis en gel de poliacrilamida. Se tiñen con bromuro de etidio para comprobar la calidad y posteriormente se separan los fragmentos de ADN de doble cadena con solución de NaOH que permite la transferencia. Se pasa a un papel de nitrocelulosa y se incuba por un tiempo con una sonda marcada (fluorocromo o radioactivo) la cual se hibrida a las cadenas complementarias sencillas de ADN. Se visualiza con luz U.V o por exposición de rayos X. Southern blot. PCR. Clonación. Microarrays.

Técnica en biología molecular que consiste en la separación de una secuencia del genoma y que se introduce en un fago o en un plásmido y consiste básicamente en las siguientes etapas: Preparación del vector – Preparación del DNA – Ligar el vector con el DNA – Transformación para producir producto quimérico de manera masiva. Southern blot. PCR. Clonación. Microarrays.

Es la temperatura a la cual deberán someterse el material de vidrio y/o metal para inactivar las endonucleasas: 121oC por 15 minutos. 500oC por 1 hora. 230oC por 8 horas. 100oC por 3 horas.

Temperatura a la cual deberán guardarse las muestras para su conservación indefinidamente, si no se van a procesar de inmediato, principalmente cuando se requiere obtener ARN: 2 - 8o C. -70o C. -20o C. 0o C.

Técnica en biología molecular que se utiliza para la amplificación de un fragmento de DNA, ya que se pueden obtener un gran número de copias partiendo de un mínimo. Sus etapas simplificadas son las siguientes: Inicio – Desnaturalización – Unión del cebador – Elongación de la cadena – Conservación. Southern blot. PCR. Clonación. Microarrays.

Técnica en biología molecular que permite el proceso de miniaturización en el proceso de hibridación de las secuencias de nucleótidos en superficies microscópicas, las cuales son leídas normalmente por luz láser cuando son marcadas con fluorocromos. Se utilizan para detectar ADN, ARN y/o Proteínas, además de que permiten estudiar todo el genoma humano en un solo experimento: Southern blot. PCR. Clonación. Microarrays.

Técnicas de biología molecular utilizadas específicamente para ARN: Northern blot, RT-PCR, Hibridación in situ. PCR, PCR cuantitativa, Clonación, Secuenciación. Western blot, Inmunohistoquímica, ELISA, Citometría de flujo.

Técnicas de biología molecular utilizadas específicamente para proteínas: Northern blot, RT-PCR, Hibridación in situ. PCR, PCR cuantitativa, Clonación, Secuenciación. Western blot, Inmunohistoquímica, ELISA, Citometría de flujo.

Técnicas de biología molecular utilizadas específicamente para ADN: Northern blot, RT-PCR, Hibridación in situ. PCR, PCR cuantitativa, Clonación, Secuenciación. Western blot, Inmunohistoquímica, ELISA, Citometría de flujo.

Técnica para ADN que se basa en el conocimiento de bases nitrogenadas de un fragmento del ácido desoxirribonucleico utilizando un método enzimático o químico: PCR cuantitativa. Clonación. Southern blot. Secuenciación.

Técnica en biología molecular que se basa en la metodología enzimática para la amplificación de secuencias específicas de ADN y que se obtienen millones de copias mediante la ADN polimerasa: PCR. Clonación. Southern blot. Secuenciación.

Técnica en biología molecular que se basa en la metodología de la electroforesis y a la hibridación para secuencias específicas de DNA: PCR. PCR cuantitativa. Southern blot. Secuenciación.

En esta técnica de biología molecular se cuantifica de forma absoluta o relativa, cuando se compara con un gen normalizador, el producto resultante de la amplificación de ADN: PCR. PCR cuantitativa. Clonación. Secuenciación.

Técnica en biología molecular que se basa en la duplicación de un gen o alguna porción de este: PCR. PCR cuantitativa. Clonación. Southern blot.

Técnica en biología molecular que se basa en la visualización de partes o fragmentos de DNA y RNA en el sitio físico donde se encuentran utilizando complementariedad de bases: Hibridación in situ. RT-PCR (transcriptasa inversa). Northern blot.

Técnica en biología molecular que se basa en la metodología de la electroforesis y al hibridación para secuencias específicas de RNAm: Hibridación in situ. RT-PCR (transcriptasa inversa). Northern blot.

Técnica en biología molecular que se basa en la amplificación de fragmentos de ARN para la obtención de millones de copias, con un paso intermedio de la conversión de ARNm ADNc bicatenario: Hibridación in situ. RT-PCR (transcriptasa inversa). Northern blot.

Técnica la cual utiliza la metodología de hacer pasar células a través de un fluido que se encuentra colocado bajo una fuente de luz que permite visualizar dichas células y que en la mayoría de los casos se utilizan marcadores de membrana: Western blot. Citometría de flujo. Inmunohistoquímica. ELISA.

Técnica en biología molecular en la cual se utilizan geles para separar proteínas con base a su peso molecular, las cuales se pueden detectar por medio de anticuerpos marcados con un compuesto cromógeno: Western blot. Citometría de flujo. Inmunohistoquímica. ELISA.

Técnica en biología molecular que se basa en la detección de proteínas mediante la unión de Ag – Ab específicas y que se encuentran localizadas en tejidos y/o células: Western blot. Citometría de flujo. Inmunohistoquímica. ELISA.

Técnica que utiliza el método enzimático para la cuantificación de proteínas y que puede ser directo/indirecto, cualitativo/cuantitativo/semicuantitativo: Western blot. Citometría de flujo. Inmunohistoquímica. ELISA.

Se refiere a la cantidad mínima necesaria de ADN para que se lleve a cabo la amplificación del mismo para la obtención de una banda: Sensibilidad del método. Especificidad del método. Fidelidad del método. Eficiencia del método.

Cuando se comenten errores por la polimerasa en la amplificación del ADN, estamos hablando de: Sensibilidad del método. Especificidad del método. Fidelidad del método. Eficiencia del método.

Cuando se obtienen amplificaciones al máximo en un determinado número de ciclos de secuenciación de ADN nos estamos refiriendo a: Sensibilidad del método. Especificidad del método. Fidelidad del método. Eficiencia del método.

Se refiere cuando el método amplía y se obtiene un solo producto de ADN, o sea, que se obtiene una amplificación lo más cercana posible al 100%: Sensibilidad del método. Especificidad del método. Fidelidad del método. Eficiencia del método.

Mencione un mínimo de 3 reactivos utilizados para una reacción en cadena de la polimerasa (PCR): dNTP;. Primers-Cebadores;. MgCl2;. ADN Molde;. ADN polimerasa. K+.