CIENCIAS FORENSES

Cada una de las formas alternativas que puede tener un mismo gen, se conoce como: Alelo. Gameto. Cromosoma. Mitocondrias.

Para estudios genealógicos forenses de linaje materno, la técnica más apropiada será: SNP. STR. Cromosoma Y. ADN mitocondrial.

Los estudios de paternidad y maternidad pueden ser clave en todas estas situaciones salvo en una: Adopciones. Abandono infantil. Migración forzada. Conflicto familiar sin duda biológica.

Uno de los huesos más indicados para obtener ADN por su resistencia es: Falange. Costilla flotante. Femur. Escafoide.

Si hay herencia mendeliana dominante, se necesita que el alelo alterado tenga las dos copias dominantes para expresar su enfermedad o rasgo: Sí, siempre. No, basta con una sola copia. No, basta con ninguna copia para expresarse. No se expresará nunca el dominante.

Si hay herencia mendeliana recesiva, se necesita que el alelo alterado tenga las dos copias recesivas para expresar su enfermedad o rasgo: Sí, siempre. No, basta con una sola copia. No, basta con ninguna copia para expresarse. No se expresará nunca el dominante.

La muestra más común para investigar paternidad / maternidad es: Saliva. Sangre. Cabello con raíz. Semen.

¿Qué prueba genética no distingue entre varones de la misma familia?. SNP. ADN mitocondrial. Cromosoma Y. STR.

¿Cuál de estas podemos considerar como catástrofe intencional?. Conflicto armado. Erupción volcánica. Inundación por lluvias. Accidente aéreo por avería mecánica.

Una evidencia fuerte de paternidad se da cuando el índice de verosimilitud es: <1. =1. >1. >100.

Podríamos extraer ADN de las siguientes muestras salvo de una ¿cuál?. Cabello con raíz. Cabello sin raíz. Dientes molares. Hueso (no todos, alguno en particular).

La necroidentificación no ofrece valor: Preventivo. Legal. Humanitario. Judicial.

El ADN codificante, que se transcribe a ARN mensajero, es apenas un X % del total del ADN: 2. 0,01. 10. 20.

En el proceso de eliminación de impurezas de la preparación y análisis de ADN, se añade para remover / degradar las proteínas: Protein-quinasas. Lipasas. Proteasas. ARN mensajero.

Si vamos a conservar una muestra de ADN para almacenamiento prolongado tras su preparación y análisis, lo ideal sería a: 1-8ºC. 4ºC. -20ºC. 35ºC.

En las uñas del cadáver de un individuo tras un forcejeo, sería normal encontrar ADN de: El asaltante o agresor. Sólo del propio individuo. El técnico que recoge la muestra. La última persona a la que estrechó la mano.

Las mutaciones son cambios en el ADN con una frecuencia: <1%. <0,01%. <10%. >10%.

Los gemelos idénticos (monocigóticos) tendrían el mismo: Genotipo. Fenotipo. Ambiente. Cicatrices.

Cuando el cuerpo todavía tiene cierta actividad biológica(por ejemplo, algo de circulación o metabolismo celular), estaríamos en una etapa de: Postmortem. Finmortem. Perimortem. Nomortem.

Una obstrucción de orificios respiratorios (taponamiento boca/nariz), obstrucción interna (cuerpos extraños en vía aérea), o ambientes sin oxígeno (espacios cerrados), se conocería como: Ahorcadura. Estrangulación. Compresión toracoabdominal. Sofocación.

Cuando hablamos de hipercapnia, significa: Acumulación de CO2. Falta de CO2. Acumulación de O2. Falta de O2.

Si vas a llevar a cabo un procesamiento histológico, recuerda que estudiamos 9 pasos. ¿Cuál de estos no estaría incluido?. Desparasitado. Biopsia. Corte. Tinción.

En Algor Mortis (enfriamiento del cuerpo), durante las primeras 12 horas generalmente la temperatura corporal desciende: 0,1-0,15ºC / hora. 1-1,5ºC / hora. 10-15ºC / hora. 36ºC / hora.

¿En qué consiste el fenómeno cadavérico conocido como algor mortis?. En el endurecimiento de los músculos tras la muerte. En la aparición de manchas violáceas en las zonas declives. En el enfriamiento progresivo del cadáver hasta equilibrarse con la temperatura ambiental. En la putrefacción de los órganos internos por acción bacteriana.

El Rigor Mortis (rigidez cadavérica), suele desaparecer a las: 30 minutos. 2-6 horas. 36-48 horas. 14-15 días.

Realizando el análisis de electrolitos en humor vítreo, podremos conocer: El intervalo post-mortemmidiendo cambios predecibles en electrolitos. El intervalo post-mortemmidiendo cambios en el color del humor vítreo. La causa exacta del fallecimiento de la víctima. La edad de la víctima.

Con la PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa) podremos: Detectar ADN bacteriano incluso en células muertas, identificando rápidamente especies específicas. Detectar presencia de proteínas específicas. Conocer la cantidad total de ADN en una muestra. Detectar anomalías cromosómicas como una trisomía.

En el análisis forense, se debe integrar dentro del contexto: La variabilidad individual (edad, enfermedades crónicas…). Los factores ambientales (temperatura, humedad,…). Ninguna de las dos mencionadas. Las dos mencionadas.

Muestras cadavéricas biológicas líquidas serían todas estas salvo una, indícala: Fragmento de hígado. Orina. Sangre. Humor vítreo.

El método más común en histología y patología para teñir muestras de tejido es: La tinción de hematoxilina-eosina. La tinción de xilol. La tinción de Wright. La tinción de Perls.

La función del microtomo es: Disolvente. Realizar cortes muy finos. Fijador. Colorear tejidos.

En la fase de rehidratación de muestras en el proceso histológico: Se usarán soluciones de alcohol en concentración decreciente (100%, 90%, 80%...) hasta agua. Se partirá de usar agua y después soluciones de alcohol en concentración creciente (80%, 90%, 100%). Se sumerge directamente sobre agua. Se sumerge en formaldehído al 4%.

¿Qué tipo de células se identifican comúnmente con la tinción de Wright?. Células epiteliales. Células musculares. Células sanguíneas. Células nerviosas.

¿Qué tipo de muestra tomaré tras un incendio para analizar si hubo inhalación en vida?. Tejido cardíaco. Tejido cerebral. Tejido hepático. Tejido pulmonar.

La aparición de diapédesis de leucocitos (respuesta inflamatoria) es típica en: Nunca encontraremos diapédesis de leucocitos. Tejidos vivos o muertos. Tejido muerto. Tejido vivo.

¿Cuál es la función principal del xileno (xilol) en el procesamiento de muestras histológicas forenses?. Fijar el tejido para evitar la autolisis celular. Actuar como disolvente para tejidos, para eliminar la parafina y aclarar la muestra. Teñir selectivamente las fibras de colágeno. Deshidratar el tejido mediante series alcohólicas.

Desde el punto de vista de la seguridad en el laboratorio, el xilol se clasifica como una sustancia: Corrosiva y explosiva en contacto con el agua. Inofensiva para las vías respiratorias. Neurotóxica, irritante e inflamable. Radiactiva de baja intensidad.

¿Qué medida de seguridad es obligatoria al manipular xilol según los protocolos de laboratorio?. Trabajar en una zona abierta sin ventilación. Usar guantes de látex estándar únicamente. Manipular la sustancia dentro de una campana extractora, usar guantes de nitrilo, gafas protectoras y ventilación. Calentar la sustancia antes de su uso para reducir su toxicidad.

¿Cuál es la finalidad principal del uso de formaldehído en el estudio de muestras procedentes de un cadáver?. Eliminar el alcohol de los tejidos tras la deshidratación. Actuar como fijador para conservar las muestras y mantener la estructura del tejido. Servir como medio de inclusión para dar dureza al bloque. Teñir selectivamente los núcleos celulares.

En relación con los riesgos laborales, el formaldehído es especialmente peligroso por ser una sustancia: Altamente radiactiva. Irritante intenso y potencialmente cancerígena, perjudica al sistema respiratorio y a la piel. Únicamente peligrosa por ingestión accidental. Gas noble sin riesgos para la salud.

¿Qué equipo de protección individual (EPI) es específico y necesario para manipular formaldehído fuera de la cabina de extracción?. Mascarilla quirúrgica sencilla. Guantes de látex y gafas de sol. Mascarilla con filtro para vapores orgánicos y guantes de nitrilo y conservar en recipientes bien cerrados. Bata de algodón sin abotonar.

¿Cuál es la función técnica del microtomo en el procesamiento de muestras forenses?. Realizar la inclusión de la muestra en el bloque de parafina. Obtener cortes de tejido extremadamente finos para su observación microscópica. Centrifugar las muestras biológicas para separar el suero. Medir la densidad ósea de los restos esqueléticos.

¿Cuál es el riesgo físico más significativo al utilizar un microtomo?. Exposición a radiaciones ionizantes. Riesgo de cortes profundos y atrapamientos de dedos en partes móviles. Inhalación de vapores neurotóxicos. Quemaduras químicas por contacto.

¿Qué medida de prevención es fundamental al manipular las cuchillas del microtomo?. Limpiar la cuchilla con las manos desnudas mientras está en movimiento. Usar siempre guantes de látex para evitar el deslizamiento. Manejar la cuchilla con extrema precaución y usar guantes anticorte. Dejar la cuchilla montada y expuesta cuando el equipo no esté en uso.

¿Cuál es la finalidad técnica de la aplicación de tintes histológicos?. Fijar las proteínas para evitar la putrefacción. Colorear los componentes celulares/tejidos para facilitar el estudio microscópico. Eliminar los restos de xilol y parafina de la muestra. Aumentar el grosor del corte realizado por el microtomo.

¿Qué riesgo específico presentan algunos colorantes como las anilinas?. Riesgo de explosión por fricción. Pueden ser tóxicos, cancerígenos o causar irritación dérmica y ocular. No presentan ningún riesgo para la salud del técnico. Únicamente manchan la ropa sin efectos biológicos.

¿Qué estructuras celulares y tisulares permite identificar la tinción Hematoxilina-Eosina (H&E)?. Solo depósitos de metales pesados. Núcleos, citoplasma, vasos sanguíneos y tejido conectivo, detecta necrosis y hemorragia. Únicamente la presencia de ADN espermático. Proteínas específicas mediante anticuerpos.

¿Cuál es una de las aplicaciones principales de la técnica de Hematoxilina-Eosina?. Identificar el grupo sanguíneo del cadáver. Determinar la vitalidad de las heridas, evaluar lesiones traumáticas, estudio general de órganos, inflamación y necrosis. Cuantificar exactamente el nivel de alcohol en sangre. Sustituir al análisis de ADN en la identificación.

Principal limitación de la técnica H&E en el laboratorio forense?. Es una técnica muy lenta y costosa. No puede teñir núcleos celulares. No identifica sustancias químicas específicas ni distingue proteínas concretas. Solo se puede aplicar en restos óseos.

:Si tras aplicar la técnica de Perls observamos un depósito de color azul intenso (azul de Prusia), ¿Qué sustancia estamos detectando en el tejido?. Glucógeno acumulado. Fibras elásticas. Hierro (hemosiderina). Lípidos neutros.

¿Cuál es el color característico que adquieren las estructuras positivas a la tinción de PAS (Ácido Periódico de Schiff), como el glucógeno o los hongos?. Marrón oscuro. Rojo magenta o fucsia. Verde pálido. Gris azulado.

¿Qué sustancia específica permite identificar la técnica de Perls o Azul de Prusia en una muestra forense?. Glucógeno acumulado en el hígado. Hierro férrico o hemosiderina. Fibras de colágeno en el miocardio. Bacterias gramnegativas.

¿Cuál es la aplicación primordial de la tinción de Perls en el estudio de un cadáver?. Identificar si una hemorragia es muy reciente (minutos antes de morir). Detectar evidencia de sangrado previo, hemorragias y hematomas antiguos. Diferenciar entre tejido epitelial y conectivo. Confirmar la presencia de alcohol en el humor vítreo.

¿Cuál es una de las principales limitaciones de la tinción de Perls en la práctica forense?. No es útil en hemorragias muy recientes. Tiñe todas las estructuras del mismo color azul. Es una técnica extremadamente tóxica que no se puede usar en humanos. Solo detecta el hierro si el cadáver ha sido congelado.

¿Por qué la técnica de Perls resultaría negativa en un hematoma producido 10 minutos antes de la muerte?. Porque el hierro solo se detecta en cadáveres congelados. Porque la hemosiderina requiere un tiempo de reacción vital de al menos 24-48 horas. Porque el xilol elimina el hierro de la muestra. Porque el Perls solo tiñe hemorragias postmorten.

¿Qué componentes biológicos permite identificar específicamente la técnica del Ácido Periódico de Schiff (PAS)?. Hierro férrico y hemosiderina. Lípidos neutros y triglicéridos. Polisacáridos, glucógeno, glicoproteínas y hongos. Fibras elásticas de la aorta.

¿Cuál es una aplicación fundamental de la tinción de PAS?. Datar la antigüedad de un hematoma óseo. Detección de infecciones micóticas e identificación de depósitos metabólicos. Sustituir la fijación con formol en muestras degradadas. Determinar el grupo sanguíneo a partir de restos orgánicos.

Una limitación técnica importante del PAS que se debe considerar en muestras de cadáveres. Es una técnica que tarda más de una semana en completarse. Es altamente sensible a la degradación postmortem, no distingue polisacáridos sin técnicas adicionales. No puede teñir muestras que hayan sido incluidas en parafina. Solo funciona en tejidos frescos no fijados.

¿Qué componentes tisulares permite diferenciar principalmente la técnica del Tricrómico de Masson?. Hierro férrico de la hemosiderina. Colágeno, tejido muscular y fibras elásticas. Únicamente el ADN del ARN celular. Presencia de hongos y bacterias grampositivas.

¿Para qué se utiliza fundamentalmente el Tricrómico de Masson?. Para identificar venenos metálicos en el hígado. Análisis de cicatrices, reparación tisular, diferencia una lesión aguda de una crónica. Para sustituir el uso de la Hematoxilina-Eosina en todas las muestras. Para datar la hora de la muerte mediante la temperatura del colágeno.

Limitación importante del Tricrómico de Masson en el laboratorio?. Que solo puede realizarse en muestras de tejido óseo. Que los artefactos de procesamiento pueden alterar su interpretación. Que es una técnica que no requiere el uso de microscopio. Que tiñe todas las estructuras del mismo color rojo.

La técnica de Inmunohistoquímica (IHQ) detecta: En la reacción química entre metales pesados y el citoplasma. Proteínas específicas y marcadores celulares (troponina, CD45, CD68). En la afinidad de los núcleos por colorantes básicos como la hematoxilina. En la evaporación de alcoholes durante el aclaramiento.

¿para qué se utiliza específicamente el marcador de troponina mediante IHQ?. Para detectar infecciones por hongos en los pulmones. Para identificar y estudiar la necrosis miocárdica (infartos), infiltrados inflamatorios, lesiones, diferenciar tipos celulares. Para confirmar la presencia de restos de pólvora en la piel. Para teñir las fibras de colágeno en una cicatriz.

¿Cuál es la principal limitación de la IHQ en muestras procedentes de un cadáver?. Que no requiere el uso de microscopio óptico. La pérdida de marcadores y antígenos debido a la autolisis (descomposición). Que los anticuerpos solo reaccionan con tejidos congelados. Que es una técnica excesivamente rápida que genera muchos errores.

¿Qué marcadores de IHQ se utilizan frecuentemente para identificar infiltrados inflamatorios y confirmar la vitalidad de una lesión?. Ácido periódico y reactivo de Schiff. CD45 y CD68 (marcadores de leucocitos y macrófagos) y troponina. Hematoxilina y Eosina. Xileno y Parafina.

¿Qué técnica se considera el punto de partida universal para cualquier estudio histopatológico?. Tricrómico de Masson para ver el colágeno. Hematoxilina-Eosina (H&E). Inmunohistoquímica (IHQ) con marcadores CD68. Tinción de Perls para depósitos de hierro.

Ante la sospecha forense de una infección micótica (hongos) en los pulmones de un cadáver, ¿Qué técnica especial se debe solicitar tras el examen de rutina?. Tricrómico de Masson. Tinción de Perls. Técnica de PAS (Ácido Periódico de Schiff). Aclaramiento con Xilol.

Si el objetivo del médico forense es valorar la cronología de un hematoma y determinar si hubo sangrado antiguo, la técnica de elección es: PAS para detectar glucógeno. Inmunohistoquímica para troponina. Tinción de Perls (Azul de Prusia). Eosina pura.

¿Qué técnica es la más adecuada para diferenciar una lesión aguda de una crónica mediante la valoración de la cicatrización (colágeno)?. Tricrómico de Masson. Hematoxilina-Eosina. Formaldehído al 10%. Inmunohistoquímica para CD45.

La realización de una extensión o frotis directo en el laboratorio forense consiste: En incluir la muestra en un bloque de parafina para cortarla después. En la obtención de una capa fina de células sobre un portaobjetos mediante raspado o contacto. En la congelación de un órgano completo para su análisis químico. En la tinción exclusiva con Tricrómico de Masson.

¿Cuál es una de las aplicaciones forenses más importantes del frotis o extensión citológica?. El estudio de la densidad ósea en restos esqueléticos. La identificación de células espermáticas, epiteliales o sanguíneas en casos de agresión sexual. La medición del rigor mortis en el cadáver. La detección de metales pesados en el cabello.

Observaciones/precauciones de extensión o frotis directo: Dejar secar la muestra al aire durante varios días sin protección. Fijar la muestra rápidamente para evitar la degradación celular. Utilizar siempre un microtomo para estirar las células. Lavar el portaobjetos con agua y jabón antes de que la muestra se fije.

La técnica de frotis o extensión citológica se usa: En fragmentos sólidos de órganos para estudio de arquitectura tisular. En fluidos biológicos (semen, sangre, saliva) y frotis de mucosas (vaginal, anal o bucal). Únicamente en restos óseos y piezas dentales. En muestras de contenido gástrico para análisis químico de venenos.

¿Qué paso previo es necesario realizar habitualmente para el análisis citológico de líquidos biológicos (sangre, pleural, peritoneal)?. Inclusión en parafina y corte con microtomo. Centrifugación o sedimentación para concentrar las células. Calentamiento a 100°C para eliminar impurezas. Congelación rápida a -80°C.

En una autopsia forense, ¿Qué hallazgo en la citología de líquidos biológicos puede ser indicativo de una muerte por ahogamiento?. Presencia de fibras de colágeno tipo I. Presencia de microorganismos tipo diatomeas(algas). Detección de restos de pólvora en el líquido pleural. Ausencia total de células epiteliales.

Para evitar la autólisis celular y garantizar la validez del análisis, ¿Cómo deben conservarse los líquidos biológicos antes de su procesamiento?. A temperatura ambiente y en recipientes abiertos. Congelados con nitrógeno líquido inmediatamente. Refrigerados y procesados en el menor tiempo posible. Mezclados con xilol desde el momento de la extracción.

Qué técnica se basa principalmente el análisis de fluidos como el líquido pleural, peritoneal o broncoalveolar para el estudio de sus células?. Inclusión en parafina tras fijación con formol. Citología de líquidos mediante centrifugación o sedimentación. Frotis directo por raspado de mucosa bucal. Tinción argéntica de fibras elásticas sin procesamiento previo.

¿Qué hallazgo es una prueba diagnóstica forense por sospecha de sumersión?. La presencia de abundantes macrófagos alveolares con pigmento antracótico. La observación de diatomeas en el interior de los capilares o macrófagos del tejido pulmonar. El hallazgo de células escamosas con núcleos picnóticos por descamación de la piel. La detección de un infiltrado masivo de eosinófilos en el líquido de lavado broncoalveolar.

¿Qué utilidad tiene la citología de líquidos biológicos en el ámbito de la investigación forense?. Permite detectar aspiraciones, infecciones, inflamaciones o signos de ahogamiento. Se utiliza exclusivamente para la determinación del ADN nuclear en muestras degradadas. Sirve únicamente para identificar el tiempo de permanencia de un cadáver en el agua. No tiene utilidad diagnóstica debido a la rápida destrucción celular post-mortem.

¿Cuál es la principal característica técnica de la tinción de Papanicolaou en el estudio citológico?. Es una técnica policrómica que muestra con claridad el núcleo y el citoplasma. Es una técnica monocromática específica para la detección de ADN. Permite únicamente la visualización de agentes patógenos fúngicos. Se utiliza exclusivamente para teñir tejidos óseos en fase de putrefacción.

¿Para qué se utiliza la identificación de células epiteliales mediante la técnica de PAP?. Para el estudio de agresiones sexuales y lesiones premortem. Para determinar el intervalo post-mortem mediante la degradación del citoplasma. Para identificar exclusivamente restos de origen vegetal en la escena. Para la datación de manchas de sangre seca en superficies porosas.

¿Qué utilidad tiene la tinción de PAP en el análisis de restos biológicos desconocidos?. Permite determinar el tipo celular presente en los restos. Sirve para realizar un perfil genético completo de la muestra. Identifica la presencia de metales pesados en el citoplasma. Establece de forma única la identidad nominal del fallecido.

¿Cuál es la utilidad principal de las tinciones de Wright o Giemsa en el laboratorio forense?. La diferenciación de células sanguíneas y la detección de microorganismos. La identificación exclusiva de fibras textiles en el lugar del suceso. El marcaje de depósitos de calcio en tejidos óseos antiguos. La visualización de espermatozoides sin cabeza en muestras vaginales.

¿En qué situación médico-legal es prioritario el uso de la técnica de Giemsa?. En el diagnóstico de infecciones, parasitosis o alteraciones tóxicas y análisis hematológico post mortem. Para determinar el sexo biológico mediante el estudio del corpúsculo de Barr. Únicamente para medir la profundidad de una herida por arma blanca. Para la limpieza y recuperación de restos óseos carbonizados.

¿Qué medida de prevención es específica al trabajar con los colorantes de Wright o Giemsa?. Evitar la exposición directa y trabajar en zonas ventiladas. Manipular las muestras en oscuridad total para evitar la fotólisis. Utilizar obligatoriamente un microscopio de fuerza atómica para el enfoque. Calentar la muestra a cien grados antes de aplicar el colorante.

¿Cuál es la principal ventaja técnica de las tinciones de Azul de metileno y Diff-Quick?. Son técnicas rápidas para valorar la morfología celular y bacterias. Son técnicas de alta precisión específicas para el diagnóstico genético. Permiten la visualización exclusiva de restos óseos en descomposición. Son los únicos métodos capaces de detectar venenos metálicos en el citoplasma.

¿Para qué se utiliza el método Diff-Quick (azul de metileno) de forma habitual en la práctica forense?. Para la detección rápida de espermatozoides o microorganismos en fluidos. Para el recuento de hematíes en manchas de sangre seca. Para determinar el ADN mitocondrial en restos de cabello sin raíz. Para identificar el grupo sanguíneo mediante la técnica de absorción-elución.

¿Qué precaución se menciona sobre el Azul de metileno o Diff-Quick?. Es una técnica rápida pero menos precisa; recomendada como examen preliminar. Requiere una fijación en alcohol de 24 horas antes de su aplicación. No puede utilizarse en muestras que presenten putrefacción incipiente. Es el método definitivo y más preciso para el diagnóstico de tumores.

¿En qué se basa la técnica de inmunocitoquímica para el estudio de las células?. En la identificación de proteínas y marcadores mediante anticuerpos específicos. En la aplicación de calor extremo para observar la resistencia de la pared celular. En la medición del tamaño del núcleo mediante técnicas de difracción láser. En el uso de colorantes básicos que tiñen de forma inespecífica todo el citoplasma.

¿Qué permite determinar la inmunocitoquímica?. El origen celular (epitelial, muscular, nervioso) y detectar estrés o necrosis. El grupo sanguíneo y el factor Rh en manchas de sangre seca de gran antigüedad. La identidad nominal del fallecido mediante el análisis de los niveles de glucosa. El peso exacto de los órganos internos sin necesidad de utilizar una balanza.

¿Qué utilidad tiene la inmunocitoquímica respecto a la vitalidad de las lesiones?. Permite diferenciar entre células vitales y cambios ocurridos post mortem. Indica únicamente si el cadáver ha sido desplazado tras el fallecimiento. Determina el tiempo exacto de permanencia en el agua mediante la hidratación. Sirve para identificar el tipo de arma blanca utilizada mediante los restos de metal.

¿Qué precauciones técnicas y de seguridad requiere la inmunocitoquímica?. Control de temperatura, reactivos específicos y uso de guantes y gafas. Trabajar en una cámara de vacío y utilizar protección contra radiaciones gamma. Realizar la técnica al aire libre para evitar la acumulación de dióxido de carbono. No requiere ninguna medida especial, ya que los reactivos son inocuos.

¿En qué consiste la técnica de citometría de flujo para el análisis celular?. En el análisis de características (tamaño, ADN, proteínas) mediante el uso de láser. En la observación directa de las células mediante un microscopio óptico convencional. En la separación de los componentes celulares mediante centrifugación de alta velocidad. En el estudio del peso molecular de las células mediante una balanza de precisión.

¿Qué ventaja ofrece la citometría de flujo en el análisis de muestras forenses difíciles?. Permite estudiar células degradadas y determinar el sexo biológico. Es capaz de recomponer tejidos que han sido totalmente incinerados. Permite identificar el nombre y apellidos de la víctima de forma automática. Es la única técnica que no requiere la toma de muestras físicas del cadáver.

En el ámbito cronotanatológico, ¿para qué se utiliza la citometría de flujo?. Para estimar el tiempo post mortem celular. Para determinar la hora del fallecimiento mediante la temperatura rectal. Para identificar la presencia de insectos necrófagos en el cuerpo. Para medir el grado de rigidez cadavérica de forma externa.

¿Cuáles son los requisitos principales para realizar una citometría de flujo?. Equipo especializado, calibración y personal entrenado. Una zona al aire libre y luz solar directa para que el láser funcione. No requiere ningún tipo de formación ni mantenimiento previo del equipo. Únicamente disponer de un ordenador con conexión a internet.

Para analizar lesiones externas, quemaduras, heridas por arma blanca o de fuego, ¿de dónde obtendremos la muestra?. Tejido cutáneo (piel). Tejido adiposo profundo. Tejido óseo esponjoso. Tejido conectivo laxo.

El estudio histológico del tejido cutáneo puede revelar información como el tipo de lesión, la evolución de la herida y: Si la lesión ocurrió en vida o post mortem (vitalidad). El grupo sanguíneo exacto a través de los queratinocitos. La identidad genética del agresor por contacto epidérmico. El historial de enfermedades respiratorias crónicas del sujeto.

¿Qué proceso biológico observado en el tejido cutáneo permite estimar el tiempo de evolución de una herida?. La presencia de inflamación o infección. El grado de putrefacción cadavérica ambiental. La pérdida total de la melanina epidérmica. La cristalización del tejido graso subcutáneo.

El análisis de los músculos del cuello, tórax o extremidades puede revelar principalmente: Signos de lucha o defensa, asfixia, ahogamiento o electrocución previos a la muerte. El grupo sanguíneo y el factor Rh mediante la mioglobina celular. La dieta habitual del sujeto durante los últimos seis meses de vida. La marca exacta de la ropa que vestía el cadáver en el momento del hallazgo.

¿Qué información relevante puede aportar el estudio histológico del hígado en una investigación forense?. Signos de intoxicación, consumo de alcohol o presencia de drogas. El tiempo de cicatrización de una herida por arma blanca. La distancia exacta desde la que se produjo un disparo. La identificación del sexo biológico mediante el ADN mitocondrial.

En el contexto de un incendio, ¿Qué indica el hallazgo de humo u hollín en las vías respiratorias profundas durante el estudio histológico?. Que la víctima inhaló el humo en vida. Que el cuerpo fue quemado después del fallecimiento. Que la causa de la muerte fue un traumatismo craneal. Es un hallazgo normal sin relevancia en la investigación forense.

Además de la inhalación de humo, ¿Qué otros hallazgos puede revelar el estudio del tejido pulmonar para victimas de asfixia o incendio?. Edema pulmonar, hemorragias alveolares o signos de ahogamiento. El historial de fracturas óseas antiguas del fallecido. La presencia de depósitos de calcio en las articulaciones. El grupo sanguíneo mediante el análisis del surfactante.

Ante la sospecha de muertes violentas, intoxicaciones o traumatismos craneales, ¿Qué muestra de tejido es fundamental para el estudio histológico?. Tejido cerebral. Tejido conectivo adiposo. Tejido hematopoyético óseo. Tejido epitelial glandular.

¿Qué hallazgo histológico en el tejido cerebral puede indicar que el sujeto sufrió una falta de oxígeno antes de morir?. Signos de asfixia o anoxia. La presencia de cristales de oxalato cálcico. El aumento de la densidad de la mielina periférica. La regeneración completa de las neuronas motoras.

El estudio del tejido cerebral en patología forense permite revelar lesiones internas como: Hemorragias intracraneales, edema cerebral o encefalopatías. El tipo de alimentación recibida en las últimas 48 horas. La graduación exacta de las lentes que usaba el fallecido. La predisposición genética a sufrir fracturas en el fémur.

¿Qué proceso patológico cerebral se asocia frecuentemente a traumatismos craneoencefálicos en el análisis post-mortem?. El edema cerebral y las hemorragias. La calcificación total de la corteza prefrontal. El crecimiento acelerado del cerebelo tras la muerte. La transformación de la materia gris en tejido adiposo.

Ante la sospecha de intoxicaciones o insuficiencia orgánica, ¿de qué órgano es prioritario obtener una muestra para estudio histológico?. Riñón. Bazo. Páncreas. Intestino delgado.

¿Qué tipo de lesión celular en el riñón es un indicador frecuente de daño por tóxicos en una investigación forense?. La necrosis tubular. El aumento de la vascularización medular. La hipertrofia de la pelvis renal. La calcificación del uréter proximal.

¿En qué casos es fundamental la obtención de una muestra de médula ósea para el estudio forense?. Casos de anemias, leucemias o intoxicaciones. Casos de traumatismos craneales leves sin pérdida de consciencia. Para determinar el color de ojos del individuo. Exclusivamente para identificar el tipo de calzado utilizado por la víctima.

El estudio histológico de la médula ósea en patología forense permite detectar: Alteraciones hematopoyéticas, infecciones sistémicas o envenenamientos. La presencia de hollín en el interior de los huesos largos. El tipo de calzado utilizado por la víctima antes de morir. La densidad de la piel en las zonas distales de las extremidades.

¿En qué investigaciones médico-legales es imprescindible el análisis del útero o la placenta?. Casos de aborto sospechoso o infanticidio. Casos de intoxicación por metales pesados en varones adultos. Únicamente para determinar la edad biológica de la víctima. Para identificar el tipo de veneno ingerido por vía oral.

En casos de restos humanos en descomposición o fragmentados, ¿Qué muestras de tejido queratinizado son fundamentales?. Cabello y uñas. Cartílago costal. Tejido adiposo. Epitelio lingual.

¿Qué información toxicológica aporta el estudio del cabello y las uñas en la investigación forense?. La presencia de tóxicos, drogas o metales pesados. El nivel de alcohol en el momento exacto de la muerte. La presencia de monóxido de carbono en la sangre. La inhalación reciente de humo en un incendio.

Para que el cabello pueda utilizarse en la identificación por ADN, ¿Qué estructura debe conservar la muestra?. La raíz o bulbo piloso. El tallo o corteza externa. La cutícula queratinizada. La punta ramificada.

Ante el hallazgo de restos esqueletizados o quemados, ¿Qué tipo de muestra es la única disponible para el estudio forense?. Hueso. Tejido muscular residual. Tejido cutáneo momificado. Médula espinal protegida.

¿Qué parámetros de identificación básica permite determinar el estudio antropológico e histológico del hueso?. La edad y el sexo del individuo. El color de ojos y el peso exacto en vida. La profesión y el nivel de estudios del sujeto. El grupo sanguíneo y el factor Rh exclusivamente.

¿Qué indica la observación de signos de regeneración ósea en una fractura hallada en un cadáver?. La vitalidad de la fractura (ocurrió en vida). Que la fractura se produjo por la acción del fuego. Que la lesión fue causada por un artefacto post mortem. Que el hueso ha sufrido un proceso de cristalización.

Además de la edad y el sexo, ¿Qué más puede revelar el análisis del tejido óseo?. Lesiones perimortem y enfermedades óseas. El consumo de alcohol en las últimas dos horas. La presencia de hollín en la médula amarilla. El tipo de gas utilizado en una asfixia química.

Ante la sospecha de envenenamiento o ingesta de sustancias peligrosas, ¿Qué muestra de tejido es prioritaria para el estudio histológico?. Tejido gastrointestinal. Tejido muscular cardíaco. Tejido óseo compacto. Tejido nervioso periférico.

¿Qué signos histológicos en el aparato digestivo pueden indicar la ingesta de sustancias corrosivas?. Signos de hemorragia o necrosis. La presencia de hollín en la mucosa gástrica. El aumento de la flora bacteriana post-mortem. La regeneración completa del epitelio velloso.

¿En qué investigaciones médico-legales es imprescindible el análisis del útero o la placenta?. Casos de aborto sospechoso o infanticidio. Casos de intoxicación por metales pesados en varones adultos. Únicamente para determinar la edad biológica de la víctima. Para identificar el tipo de veneno ingerido por vía oral.