Cuestionario sobre Francisco Martínez Mojica y la revolución CRISPR vt 21 22

¿Quién es Francisco Martínez Mojica?. Un biólogo molecular estadounidense. Un microbiólogo murciano descubridor del CRISPR. Un genetista español especializado en edición génica. Un doctor honoris causa en bioquímica.

¿Cuál es el principal descubrimiento por el que se conoce a Francisco Martínez Mojica?. La estructura del ADN. La técnica de PCR. El sistema CRISPR. La secuencia del genoma humano.

¿Qué significa CRISPR en el contexto de la biología molecular?. Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats. Comprehensión Rápida de Infecciones y su Supresión. Cromosoma Replicado, Integrado y Sometido a Reparación. Ciclo Repetitivo de Interrupción y Sucesión de Procesos.

¿Cuál era la función original del sistema CRISPR en las bacterias?. Regular el crecimiento bacteriano. Defenderse de virus y plásmidos. Facilitar la conjugación bacteriana. Producir energía.

¿Qué es una 'sonda' en el contexto de la hibridación de ácidos nucleicos?. Una enzima que corta el ADN. Una secuencia corta de ácido nucleico que se une a una secuencia complementaria. Un microscopio especializado. Un tipo de célula.

¿Qué proceso se describe al unir una sonda a una cadena de ADN o ARN complementaria?. Replicación. Transcripción. Hibridación. Mutagénesis.

¿Cuál es un requisito para que la hibridación entre una sonda y su diana sea estable?. Que las bases sean no complementarias. Que la complementariedad supere el 70%. Que la sonda sea muy corta. Que la temperatura sea muy baja.

¿Qué parámetro influye en la estabilidad de la hibridación y se relaciona con el número de puentes de hidrógeno?. La concentración de la sonda. La longitud de las cadenas. El pH. La temperatura de desnaturalización.

¿Por qué las sondas con un mayor número de guaninas y citosinas son más estables?. Porque forman dos puentes de hidrógeno. Porque forman tres puentes de hidrógeno. Porque son más cortas. Porque se unen a menos bases.

¿Qué método de marcado de sondas implica cortes 'muescas' en el ADN y la posterior adición de nucleótidos marcados?. Random priming. Nick translation. PCR. Ligación.

¿Qué método de marcado molecular utiliza hexanucleótidos como cebadores para iniciar la síntesis de una nueva cadena de ADN marcada?. Nick translation. Random priming. Hibridación in situ. PCR.

¿Qué técnica se utiliza para detectar genes específicos en el ADN mediante la digestión con enzimas de restricción, electroforesis y hibridación con sondas?. Northern blot. Southern blot. Western blot. Microarray.

¿Qué técnica es similar al Southern blot pero se utiliza para detectar ARN?. Western blot. Northern blot. PCR. FISH.

¿Qué técnica permite estudiar simultáneamente miles de genes en un chip de ADN?. Southern blot. Northern blot. Microarray. FISH.

¿Cómo se visualizan los resultados en una técnica de hibridación in situ con marcaje fluorescente (FISH)?. Mediante un espectrofotómetro. Mediante un microscopio de fluorescencia. Mediante una centrifugadora. Mediante un electrocardiógrafo.

¿Qué tipo de sondas se utilizan en FISH para marcar un cromosoma completo?. Sondas de locus específico. Sondas centroméricas. Sondas de pintado cromosómico. Sondas de oligonucleótidos.

¿Qué técnica analiza todo el ADN comparando dos muestras (una anómala y una de control) y puede dar lugar a colores como verde, rojo o amarillo?. CGH (Hibridación Genómica Comparativa). CISH. SKY (Cariotipo Espectral). FISH multicolor.

¿Qué técnica, derivada de FISH, utiliza un conjunto de 24 sondas diferentes para hibridar con cada par de cromosomas y producir un cariotipo coloreado?. CISH. SKY (Cariotipo Espectral). FISH Multicolor (M-FISH). CGH.

¿Qué técnica es similar a la M-FISH pero requiere solo una exposición a la luz fluorescente para visualizar todos los cromosomas?. CGH. CISH. SKY (Cariotipo Espectral). FISH.

¿Qué técnica precisa de un mayor tiempo de incubación pero es menos costosa y no requiere microscopios de fluorescencia?. FISH. CGH. CISH. SKY.

¿Qué método de marcado molecular utiliza anticuerpos marcados con color para unirse a un antígeno de la sonda?. Nick translation. Random priming. SISH (Hibridación in situ con Sonda). FISH.

¿Qué técnica es una combinación de inmunofenotipado fluorescente y FISH, útil para analizar alteraciones genéticas y fenotípicas en células tumorales?. CGH. CISH. FICTION. SKY.

¿Cuál es una recomendación crucial para trabajar con técnicas de hibridación y evitar la degradación de ácidos nucleicos o la alteración de sondas?. Trabajar en áreas con ADNasas y ARNasas. Utilizar materiales contaminados. Trabajar en áreas libres de ADNasas y ARNasas. No preocuparse por la contaminación.

¿Qué significa la 'complementariedad' en el contexto de la hibridación de ácidos nucleicos?. La coincidencia exacta de bases. La capacidad de las bases de una cadena de unirse a las bases de otra cadena según las reglas de apareamiento (A con T/U, G con C). La longitud de la cadena de ADN. La presencia de puentes de hidrógeno.

¿Por qué es importante la 'visualización de los resultados' en las técnicas de hibridación con sonda?. Para determinar la concentración de la sonda. Para confirmar la presencia o ausencia de la secuencia diana. Para medir la temperatura de hibridación. Para calcular la longitud de la sonda.

¿Qué son los 'fluorocromos' mencionados en relación con el marcado de sondas?. Enzimas que cortan el ADN. Moléculas que emiten luz al ser excitadas. Nucleótidos marcados radiactivamente. Pequeñas secuencias de ARN.

En el método 'Random priming', ¿qué se utiliza para iniciar la síntesis de la nueva cadena de ADN marcada?. Fragmentos de restricción. Oligonucleótidos cortos (hexanucleótidos). Sondas de ARN. Enzimas de ligación.

¿Cuál es la principal diferencia entre Southern blot y Northern blot en cuanto al tipo de ácido nucleico que detectan?. Southern blot detecta ARN, Northern blot detecta ADN. Southern blot detecta ADN, Northern blot detecta ARN. Ambos detectan ADN y ARN. Ninguno de los dos detecta ácidos nucleicos.

¿Qué ventaja principal ofrecen los microarrays en comparación con técnicas como Southern blot o Northern blot?. Permiten analizar un solo gen a la vez. Son más lentos y costosos. Permiten analizar miles de genes simultáneamente. No requieren sondas.

¿En qué se basa la técnica de Hibridación in situ (FISH)?. En la detección de proteínas mediante anticuerpos. En la unión de sondas marcadas a secuencias específicas de ácidos nucleicos en su localización nativa (células o tejidos). En la amplificación de secuencias de ADN mediante PCR. En la separación de fragmentos de ADN por tamaño.

¿Qué tipo de análisis se puede realizar con la técnica CGH?. Identificación de mutaciones puntuales. Análisis de ganancias y pérdidas de material genético (aneuploidías, deleciones, duplicaciones). Secuenciación completa del genoma. Análisis de la expresión génica.

En el contexto de la hibridación genómica comparativa (CGH), ¿qué indica generalmente el color verde?. Una deleción en el ADN del paciente. Una duplicación en el ADN del paciente. No alteración genética. Contaminación de la muestra.

En el contexto de la hibridación genómica comparativa (CGH), ¿qué indica generalmente el color rojo?. Una duplicación en el ADN del paciente. No alteración genética. Una deleción en el ADN del paciente. Una mezcla equitativa de ADN del paciente y control.

En el contexto de la hibridación genómica comparativa (CGH), ¿qué indica el color amarillo?. Una deleción en el ADN del paciente. Una duplicación en el ADN del paciente. No alteración genética (proporción equitativa de ADN del paciente y control). Presencia de ARN.

¿Qué es la 'desnaturalización' en el proceso de hibridación de ácidos nucleicos?. La unión de las dos hebras de ADN. La separación de las dos hebras de ADN o ARN. La síntesis de una nueva cadena de ADN. La adición de nucleótidos marcados.

¿Por qué es importante la 'concentración de la sonda' para la hibridación?. Una concentración alta puede dañar el ADN. Una concentración alta aumenta la probabilidad de hibridación. La concentración no afecta la hibridación. Una concentración baja es siempre preferible.

¿Cuál es el rol de las 'enzimas de restricción' en el Southern blot?. Unir fragmentos de ADN. Cortar el ADN en sitios específicos. Amplificar secuencias de ADN. Marcar sondas de ADN.

¿Qué es la 'electroforesis en gel' utilizada en Southern y Northern blot?. Una técnica para visualizar proteínas. Un método para separar fragmentos de ácidos nucleicos por tamaño y carga eléctrica. Una forma de marcar sondas con fluorescencia. Un proceso para desnaturalizar el ADN.

¿Por qué el Northern blot no requiere enzimas de restricción como el Southern blot?. Porque el ARN es más grande que el ADN. Porque las moléculas de ARN son de menor tamaño y no necesitan ser cortadas. Porque el ARN se marca de forma diferente. Porque el Northern blot no detecta secuencias específicas.

¿Qué significa que una sonda deba ser 'complementaria' a la secuencia diana?. Que tenga la misma secuencia. Que sus bases se puedan aparear correctamente (A-T/U, G-C). Que sea de ARN en lugar de ADN. Que sea corta.

¿Cuál es una de las aplicaciones de la técnica FISH mencionada en el documento?. Diagnóstico de enfermedades citogenéticas. Análisis de la expresión génica en miles de genes simultáneamente. Secuenciación de ADN. Purificación de proteínas.

En la técnica SKY (Cariotipo Espectral), ¿cuántas exposiciones a la luz fluorescente se necesitan para visualizar todos los cromosomas?. Una. 24. Depende del número de genes. No se utiliza fluorescencia.

¿Por qué es importante que el material utilizado en hibridaciones esté libre de ADNasas y ARNasas?. Para acelerar la reacción de hibridación. Para evitar la degradación del ADN y ARN y la alteración de las sondas. Para aumentar la fluorescencia de las sondas. Para facilitar la visualización al microscopio.

¿Qué información puede proporcionar la técnica CGH sobre el genoma de un paciente?. La secuencia exacta de cada gen. La presencia de mutaciones puntuales. Cambios en el número de copias de segmentos de ADN (ganancias o pérdidas). La expresión de cada gen.

¿Cuál es la ventaja de poder analizar células en interfase con técnicas como FICTION?. Permite una mayor resolución que el análisis de metafase. Es una ventaja para analizar citogenética tumoral, ya que las células tumorales a menudo no se encuentran en metafase. Requiere menos sondas. Es más rápido que el análisis de metafase.