Fisiología molecular de las plantas

Se realiza un experimento destinado a estudiar el control hormonal de la movilización de reservas durante la germinación de las semillas de cebada. Para ello semillas completas incuban en agua (ensayo a).Asimismo media semilla sin embrión se incuban en agua ( ensayo B) o en una solución que contiene giberalinas (ensayo C). Todas las semillas se mantienen en condiciones óptimas para la germinación durante 24 horas y a continuación se realizan extractos acuosos en los que se determina la calidad de glucosa producida. ¿Qué resultados obtendrán y qué conclusiones se pueden extraer de los mismos?. La producción de glucosa será mínima en las semillas de los ensayos B y C y alta en las semillas control (ensayo a), lo que permite concluir que la movilización de reservas no se produce si falta el embrión, ya que es necesario para responder a las gibrerinas. La producción de glucosa será mínima en las semillas del ensayo B y altan las semillas de los ensayos A y C, lo que permite concluir que las reservas no se movilizan si faltan las librerías producidas por el embrión. La producción de glucosa será mínima en las semillas del ensayo B y alta las semillas de los ensayos A y C, lo que permite concluir que se requiere gibrerinas para que las enzimas hidrolíticas puedan moverse del embrión al endospermo.

En un experimento destinado a estudiar el papel de las células de la aleurona durante la germinación de las semillas de cebada, se elimina mecánicamente sólo esta capa celular. A continuación las semillas así manipuladas y un grupo de semillas no manipuladas incuban en agua en condiciones óptimas para la germinación y tras 24 horas se realizan extractos acuosos en los que se determina la cantidad de glucosa producida ¿Qué resultados obtendrán y qué conclusiones se pueden extraer de los mismos?. La producción de glucosa será mínima en las semillas manipuladas y altas las semillas control lo que permite concluir que las reservas no se movilizan por falta de giberelinas. La producción de glucosa será similar en ambos grupos de semillas lo que indica que la movilización de reservas se produce de forma correcta en ausencia de células de aleurona, probablemente porque las enzimas hidrolíticas pueden moverse del embrión al endospermo. La producción de glucosa será mínima en las semillas manipuladas y altas las semillas control lo que permite concluir que las células de la aleurona son imprescindibles para la movilización de las reservas.

Considerando que en los experimentos detallados a las preguntas 1 y 2 la glucosa producida se mezcla?? Con DNS, ¿Porque los ensayos en los que no hay movilización de almidón se obtienen cantidades de glucosa más bajas pero nunca son cero?. Porque aunque no haya movilización siempre hay una pequeña parte de almidón que se degrada espontáneamente en medios acuosos. Porque el DNS se oxida espontáneamente y la valoración espectrofotométrica de su reacción nunca da un cero de absorbancia. Porque el DNS valora todos los azúcares producidos presentes en las semillas y no solo los producidos por movilización del almidón.

Para poder comparar adecuadamente a la movilización de almidón en los experimentos detallados en las preguntas 1 y 2, la cantidad de glucosa producida en cada ensayo debe ser referida al peso seco de las semillas utilizadas. ¿Por qué? (La pregunta uno y dos van sobre movilizació. Porque la cantidad de fibrerina es producidas depende del peso seco de la semilla. Porque el peso seco de las semillas representa adecuadamente el peso de almidón al inicio del ensayo. Porque para calcular la cantidad de glucosa producida se tiene en cuenta el volumen del extracto acuoso obtenido, este volumen depende de la cantidad de agua que absorbe la semilla durante las 24 horas de incubación y es directamente proporcional a su peso seco.

Se determina la actividad de nitratos reductossa midiendo la cantidad de nitrito en un ensayo adecuado en hojas de plantas de maíz que previamente han crecido durante varios días en presencia o en ausencia de nitrato. ¿Qué resultados obtendrán y por qué?. La cantidad de nitrito producido será considerablemente mayor en los ensayos de plantas crecidas en presencia de nitrato que los de plántulas crecidas en ausencia de nitratos. Este aumento de actividad se debe a que la disponibilidad continuada de nitratos inducen la expresión de los genes que codifican nitrato reductasas. La cantidad de nitrito producido será considerablemente mayor en los ensayos de plantas crecidas en la presencia de nitrato que en los de plántulas crecidas en ausencia de nitratos. Este aumento de actividad se debe a que el nitrato es altamente tóxico para las horas vegetales y debe ser inmediatamente reducido a formas menos tóxicas. La cantidad de nitrato producido será considerablemente mayor en los ensayos de plantas crecidas en ausencia de nitrato que en los de plántulas crecidas en presencia de nitratos. Este aumento de actividad se debe a que cuando la disponibilidad de nitratos es baja se induce la expresión de los genes que codifican nitrato reductasa para favorecer la asimilación del nitrato.

Piezas de hojas de plantas de maíz que previamente han crecido durante varios días en presencia de nitratos se incuban durante una hora en una solución que contiene o carece de nitratos. Seguidamente se detiene actividad en hidratos reductasa midiendo la cantidad de nitrito en un ensayo adecuado. ¿ Qué resultados obtendrán y por qué?. La cantidad de nitrito producido será considerablemente mayor el tras incubar con nitratos las piezas de estas hojas. Este aumento de actividad nitrato reductasa se debe a que se induce la actividad catalítica de la enzima preexistente cuando la disponibilidad celular de nitratos es alta. La calidad de nitrito producido será considerablemente menor tras incubarse nitratos las piezas de estas hojas. La menor actividad nitratos reductossa se debe a que cuando la disponibilidad celular de nitratos es baja se reprime la expresión de los genes que codifican nitrato reductossa para evitar la acumulación de nitrito. La cantidad de nitrito producido será prácticamente la misma incubando con los nitratos las piezas de estas hojas. La disponibilidad celular de nitratos no modifica la actividad nitratoluctosa se la planta creció en presencia de nitrato.

Se determina la actividad de nitrato reductasa midiendo la cantidad de nitrito en un ensayo adecuado en hojas de plantas de maíz que previamente han crecido durante varios días en presencia de una esencia de nitrato. Si se obtiene una cantidad muy baja de nitrito en los dos tratamientos podría deberse a: Que se ha llevado a cabo el ensayo de actividad con exposición del material biológico a la luz y por tanto la nitrato reductasa se ha degradado y no ha producido nitrito. Que se ha llevado a cabo el ensayo de actividad con exposición del material biológico a la luz y por tanto la nitrito reductasa ha actuado consumiendo el nitrito producido por la nitrato reductasa. Que se ha llevado a cabo el ensayo de actividad con exposición de material biológico a la luz y por tanto la vía de asimilación del nitrato se ha inhibido.

Dos investigadores están diseñando un experimento para determinar cómo se regula la actividad de nitrato reductossa en hojas de plántulas de maestro someterlas a diferentes tratamientos. Uno de ellos propone obtener extractos de las hojas tratadas ensayar en ellos la actividad enzimática incubandolos un tiempo tras añadir como sustrato nitrato y determinando nitrito como producto. El segundo investigador insiste en que hay que añadir el nitrato a piezas de las hojas vivas realizar la incubación y después obtener el extracto en el que se medirá el nitrito. ¿ Con qué investigador estás de acuerdo?. Con el segundo que propone un ensayo en vivo ya que así se determina la actividad de la enzima dentro de las células en las que estará disponible los otros cofactores imprescindibles para la reacción y solo hace falta añadir el sustrato nitrato. Con el primero que propone un ensayo in vitro porque el nitrato solo se absorbe por la raíz y no puede entrar en las células vivas de las hojas. Con el primero que propone un ensayo in vitro porque para determinar la actividad del hidratos reductossa es suficiente añade nitrato como sustrato único componente necesario para la reacción.

Los sistemas de tejidos de las plantas son. El sistema térmico que comprende la epidermis (crecimiento primario) y la peridermis (crecimiento secundario). El sistema fundamental que comprende tejidos con ciertas especializaciones como el parénquima colenquema y esclénquima. El sistema dérmico que comprende (crecimiento primario) y el esclerquema y la peridermis (crecimiento secundario). El sistema vascular que contiene dos tejidos conductores y lema y floema (primario y secundario). El sistema fundamental que comprende tejidos con ciertas especializaciones como el parénquima y el colénquima. El sistema térmico que comprende la epidermis (crecimiento primario) y el cortex y la médula (crecimiento secundario). El sistema vascular que contiene dos tejidos conductores xilema y floema (primario y secundario) el sistema fundamental que comprende tejidos con ciertas especializaciones como el parénquima colénquima y esclerenquima.

Indica la respuesta correcta. Los receptores de citoquinina son histidina aspartato quinasas híbridas, relacionadas con los receptores serina treonina quinasa de mamíferos. Estos receptores se autofosforilan y señalizan mediante fosfotransferencia. Los receptores de citoquininas son instidina quinasa híbridas, relacionadas con los sistemas de señalización de dos componentes bacterianos. Estos receptores señalizan mediante cascadas de quinasas. Los receptores de citoquininas son histidina quinasa híbridas, relacionadas con los sistemas de señalización de dos componentes bacterianos. Estos receptores se autofosforilan y señalizan mediante fosfotransferencia.

La vía de señalización de citoquininas en arabidosis consta de. Un receptor soluble citosólico (que puede transitar al núcleo) una estidina fosfotransferasa y reguladores de respuesta nucleares. Un receptor de membrana plasmática, una histidina fosfotransferasa (que puede transitar al núcleo) y reguladores de respuesta nucleare. Un aceptor y una histilina fósfotransferasa (ambos de membrana plasmática) y reguladores de respuesta que pueden transitar al núcleo.

Indica la respuesta correcta. Gus es un factor de transcripción producido en las células del centro organizador del meristemo apical del tallo. Gus especifica la identidad de las células madre y también restringe sus propios niveles en el centro organizador mediante un bucle de retroalimentación negativa: Gus migra a las células madre y en ellas activa la expresión de clavata 3: clavota tres difunde al centro organizador donde interacciona con represores específicos reprimiendo la expresión de wus. Gus es un factor de transcripción producido en las células del centro organizador del meristemo apical del tallo. Gus especifica la identidad de las células madre y también regula sus propios niveles en el centro organizador mediante un bucle de retroalimentación positiva. Gus migra a las células del centro organizador del meristemo y en ellas reprime la expresión de clavata 3. La bata tres difunde a las células madre de una interacciona con receptores específicos activando la expresión de wus. Gush es un factor de transcripción producido en las células madre del meristema apical del tallo. Gus especifica la identidad de las células madre y también restringe su número mediante un bucle de retroalimentación negativa. Gus migra a las células del centro organizador del meristemo y en ellas activa la expresión de clavata 3. Clávate tres difunde a las células madre donde interacciona con receptores específicos reprimiendo la expresión de Gus.

Indica la respuesta correcta. El miR156 reprime la actividad de diez factores transdicionales de la familia SPL, dirigiendo su ubiquitinización y degradación en el proteosoma veintiséis S. Estos SPL promueven los rasgos adultos de las hojas y hacen que la planta sea sensible a las señales que inducen la floración. La sacarosa reprime la expresión de miR156 y por lo tanto regula la maduración de la planta. El miR156 reprime la actividad de diez factores transdicionales de la familia SPL, dirigiendo a la degradación de sus ARN mensajeros. Estos SPL promueven los grados juveniles de las hojas y hacen que la planta sea incompetente para florecer. La sacarosa induce la expresión de miR156 y por lo tanto regula la maduración de la planta. El miR156 reprime la actividad de diez factores transcripcionales de la familia SPL, dirigiendo la degradación de sus ARN mensajeros. Estos SPL promueven los rasgos adultos de las hojas y hacen que la planta sea sensible a las señales que inducen la floración. La sacarosa reprime la expresión de miR156 y por lo tanto regula la maduración de la planta.

En plantas la meiosis produce. Gametos que por mitosis generan gametofitos haploides. Esporas que por mitosis generan gametofitos haploides. Esporas que se fusionan para generar el cigoto diploide.

La reproducción sexual de angiosperma se caracteriza por un proceso de doble fecundación que consiste en. La fusión de un núcleo espermático de un grano de polen con la ovocelula del saco embrionario para dar un cigoto, además un segundo núcleo espermático del mismo grano de polen se fusiona con la célula central del saco embrionario y da lugar al endosperma. La fusión del núcleo espermático de un grano de polen con la ovocélula del saco embrionario para dar un cigoto, además un segundo grano de polen aporta otro núcleo espermático que se fusiona con la célula central del mismo saco embrionario dando lugar al endospermo. La fusión de un núcleo espermático de un grano de polen con la océlula del saco embrionario para dar un cigoto, además un segundo núcleo espermático del mismo grano de polen se fusiona con las dos células sinérgidas del saco embrionario y da lugar al endosperma.

Indica la respuesta correcta. PhyB interactúa con una clase de factores de transcripción denominados PIF que inhiben el crecimiento de los tallos. El luz blanca PhyB estimula el crecimiento de los tallos al promover la degradación de PIFs por el proteosoma 26S. Sin embargo cuando la relación R:RL es menor que 1, PhyB esta mayoritariamente en forma Pfr por lo que los PIFs no son degradados y el tallo crece menos. PhyB interactúa con una clase de factores de transcripción denominados PIF que promueven el crecimiento de los tallos. El luz blanca PhyB limita el crecimiento de los tallos al promover la degradación de PIFs por el proteosoma 26S. Sin embargo cuando la relación R:RL es menor que 1, PhyB esta mayoritariamente en forma Pr por lo que los PIFs no son degradados y el tallo crece mas. PhyB interactúa con una clase de factores de transcripción denominados PIF que promueven el crecimiento de los tallos. El luz blanca PhyB estimula el crecimiento de los tallos al promover la degradación de PIFs por el proteosoma 26S. Sin embargo cuando la relación R:RL es menor que 1, PhyB esta mayoritariamente en forma Pr por lo que los PIFs no son degradados y el tallo crece menos.

Cuando plantas de aravedopsis son cultivadas con luz de baja relacion R:RL: La biosíntesis de auxinas se induce rápidamente en hojas. El consecuente aumento de los niveles de auxinas provoca una disminución de los niveles de citoquininas, lo que inhibe el crecimiento de las hojas al reducirse las divisiones celulares. La biosíntesis de auxinas se induce rápidamente en hojas. El consecuente aumento de los niveles de auxinas provoca un aumento de los niveles de giberelinas, lo que inhibe el crecimiento de la hoja al reducirse las divisiones celulares. La biosíntesis de auxinas se reprime rápidamente en hojas. La consecuente disminución de los niveles de auxinas provoca un aumento de los niveles de citoquininas. Lo que inhibe el crecimiento de la hoja al reducirse las divisiones celulares.

Los criptocromos son. Proteínas que contienen dos cromóforos (MTHF y FAD) localizadas en el núcleo y que actúan como receptores de luz azul y ultravioleta B. Proteínas que contienen dos cromóforos (MTHF Y FAD) LOCALIZADOS EN EL NÚCLEO Y QUE ACTÚAN COMO RECEPTORES DE LUZ AZUL Y ULTRAVIOLETA A. Holoproteínas que contienen dos cromóforos (cry1 y cry2) localizadas en el núcleo y que actúan como fotoreceptores de luz azul y ultravioleta a.

Indica la respuesta correcta. La fotomorfogénesis es el tipo de crecimiento y desarrollo directamente dependiente de la fotosíntesis pero no relacionados con la exposición a la luz. En ausencia de luz las plantas crecen etioladas y se desarrollan siguiendo un patrón diferente denominado heterótrofo. La escotomorfogénesis es el tipo de crecimiento y desarrollo directamente dependiente de la falta de exposición a la luz pero no relacionado con la ausencia de fotosíntesis. En presencia de luz las plantas crecen etioladas y se desarrollan siguiendo un patrón diferente denominado fotomorfogénico. La fotomorfogénesis es el tipo de crecimiento y desarrollo directamente dependiente de la exposición a la luz pero no relacionado con la fotosíntesis. En ausencia de luz las plantas crecen etioladas y se desarrollan siguiendo un patrón diferente denominado escotomorfogénico.

Indica la respuesta correcta. Cop1 es un represor de la fotomorfogénesis en oscuridad cuya función se regula mediante compartimentación subcelular e inactivación. En luz COP1 se exporta del núcleo de citoplasma y por interacción principalmente con criptocromos activos se inhibe además su actividad. HY5 es un represor de la fotomorfogénesis en oscuridad, cuya función se regula mediante interacción con COP1. En luz HY5 interacciona con COP1 y se exporta del núcleo del citoplasma. COP1 es un activador de la fotomorfogénesis en luz. Cuya función se regula mediante compartimentación subcelular y activación. En luz COP1 se exporta del citoplasma al núcleo, por interacción principalmente con criptocromos activos se incrementa además su actividad.

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