Hemato Tema 2

1. ¿Cuál es el objetivo del estudio morfológico de células sanguíneas en sangre periférica y médula ósea?. a) Identificar enfermedades infecciosas. b) Calcular la proporción de distintos tipos celulares y detectar células anómalas. c) Medir niveles de hemoglobina. d) Evaluar la función renal.

3. ¿Qué criterios morfológicos son importantes para distinguir los tipos celulares en la sangre?. a) Tamaño y color de los glóbulos rojos. b) Nivel de hemoglobina. c) Forma, tamaño, y características nucleares y citoplasmáticas. d) Velocidad de sedimentación.

6. ¿Cuál es el propósito de utilizar dos portaobjetos en la técnica del portaobjetos en cuña?. a) Uno para soporte y otro para extender la muestra. b) Uno para aplicar la tinción y otro para observación. c) Dos para duplicar la muestra. d) Uno para la sangre y otro para anticoagulante.

7. ¿Qué ángulo se recomienda formar entre los dos portaobjetos en esta técnica?. a) 15-25 grados. b) 30-45 grados. c) 50-65 grados. d) 70-85 grados.

8. ¿Cómo se debe manipular el portaobjetos extensor para una extensión sanguínea adecuada?. a) Con un movimiento rápido y firme. b) Deslizándolo lentamente y con cuidado. c) Sosteniéndolo firmemente y deslizándolo con suavidad y rápidez. d) Manteniéndolo inmóvil.

9. ¿Qué características deben tener los portaobjetos utilizados en esta técnica?. a) Debe ser flexible y resistente al calor. b) Transparente y de color. c) Limpios y preferentemente de alta calidad con bordes biselados. d) De un solo uso y desechables.

10. ¿Cuál es un paso crucial antes de deslizar el portaobjetos extensor sobre el soporte?. a) Calentar ligeramente la muestra de sangre. b) Esperar que la sangre se esparza por todo el ancho del portaobjetos. c) Aplicar un anticoagulante a la muestra. d) Marcar el área donde se colocará la muestra.

11. ¿Cuál es la zona inicial en una extensión sanguínea y cuál es su característica principal?. a) Cabeza; es la región más gruesa. b) Cuerpo; es la región más fina. c) Cola; contiene una mayor proporción de linfocitos. d) Borde; presenta una menor concentración celular.

12. ¿Qué se encuentra típicamente en la zona media, o 'cuerpo', de un frotis sanguíneo?. a) Mayor concentración de linfocitos. b) Proporción adecuada entre los distintos tipos de leucocitos. c) Hematíes formando aglomerados. d) Leucocitos grandes en mayor cantidad.

13. ¿Qué caracteriza a la 'cola' en una extensión sanguínea?. a) Es la zona más gruesa. b) Tiene un aspecto redondeado y es fina. c) Contiene una proporción alta de hematíes. d) Predominan los linfocitos.

14. ¿Dónde se encuentra la "zona ideal" de observación en un frotis sanguíneo?. a) En la cabeza. b) En el borde. c) En la cola. d) En la zona que limita con la cola.

15. En una extensión sanguínea bien realizada, ¿cuál de estas características NO se espera encontrar?. a) Lisura sin agujeros ni rayas. b) Disminución progresiva del grosor desde el principio hasta el final. c) Hematíes con halo central en la cola. d) Bordes laterales visibles y separados.

16. ¿Qué importancia tienen los portaobjetos en la calidad de una extensión sanguínea?. a) Deben ser de un color específico. b) Deben estar limpios y desengrasados. c) Deben ser flexibles. d) Deben tener un grosor particular.

17. ¿Cómo influye el volumen de sangre utilizado en la calidad de la extensión?. a) No tiene influencia. b) Volumen excesivo puede producir extensiones demasiado gruesas. c) Volumen pequeño mejora la calidad. d) Solo afecta el tiempo de secado.

18. En la técnica del portaobjetos en cuña, ¿cómo afecta el ángulo entre los portaobjetos a la extensión?. a) No tiene efecto. b) Ángulos amplios producen extensiones cortas y gruesas. c) Ángulos pequeños facilitan la observación. d) Solo afecta la velocidad de deslizamiento.

20. ¿Cuál es un factor importante a considerar con respecto a la muestra de sangre al realizar una extensión?. a) Color de la sangre. b) Temperatura de la sangre. c) Anticoagulación de la sangre. d) Origen de la muestra (capilar o venosa).

21. ¿Cuál es el objetivo de las tinciones hematológicas en las extensiones de sangre periférica?. a) Diferenciar y visualizar distintos tipos celulares. b) Medir la concentración de hemoglobina. c) Identificar presencia de patógenos. d) Analizar la función renal.

22. ¿Qué tinción es habitual en las tinciones de sangre periférica y médula ósea?. a) Tinción de Gram. b) Tinción de PAS. c) Tinción de May Grünwald-Giemsa. d) Tinción de Coomassie Blue.

23. ¿Cuáles son los componentes clave de la tinción May GrünwaldGiemsa?. a) Eosina y azul de metileno. b) Ácido acético y alcohol etílico. c) Hematoxilina y eosina. d) Azul de Prusia y ácido periódico.

24. ¿Qué estructuras celulares se tiñen de azul oscuro o violeta con la tinción May GrünwaldGiemsa?. a) Ácidos nucleicos. b) Proteínas citoplasmáticas. c) Membrana celular. d) Gránulos citoplasmáticos.

26. ¿Qué caracterizan las tinciones supravitales?. a) Se aplican sobre células vivas. b) Requieren fijación previa. c) Se usan para detectar anticuerpos. d) Son para análisis genético.

27. ¿Qué tinción supravital es común para reticulocitos? **IMPORTANTE**. a) Tinción de azul cresil brillante. b) Tinción de Wright. c) Tinción de Giemsa. d) Tinción de PAS.

28. ¿Cuál es una característica de las tinciones citoquímicas en hematología?. a) Identifican actividades enzimáticas. b) Basadas en la afinidad por ácidos nucleicos. c) Se utilizan para estudiar la morfología nuclear. d) Requieren el uso de anticuerpos.

29. ¿Qué detecta la tinción de fosfatasa alcalina granulocítica?. a) Actividad enzimática en gránulos secundarios de leucocitos neutrófilos. b) Presencia de carbohidratos en células. c) Depósitos de hierro en células. d) Patógenos infecciosos en la sangre.

30. ¿En qué circunstancias es útil la tinción inmunocitoquímica en hematología?. a) Para estudios genéticos. b) Para análisis de la función renal. c) Para identificar y clasificar células neoplásicas. d) Para medir concentraciones de hemoglobina.

31. ¿Qué se consigue con las tinciones policromadas en hematología?. a) Visualización mejorada del tamaño de las células. b) Diferenciación de las estructuras celulares por colores distintos. c) Medición de la concentración de hemoglobina en eritrocitos. d) Identificación de patógenos infecciosos en la sangre.

32. ¿Qué característica de las tinciones policromadas es esencial para su eficacia?. a) Se aplican sobre células vivas. b) Necesidad de fijación previa de las células. c) Requieren reactivos adicionales para estabilizar los colores. d) Uso exclusivo de colorantes ácidos.

34. ¿Qué se busca identificar principalmente con la tinción de May GrünwaldGiemsa?. a) Estructuras basófilas y acidófilas en células sanguíneas. b) Actividad enzimática en las células. c) Presencia de ácidos nucleicos. d) Gránulos citoplasmáticos en leucocitos.

35. ¿Qué caracteriza a la tinción panóptica rápida?. a) Su capacidad para identificar patógenos. b) Uso en la diferenciación de células neoplásicas. c) Su rapidez de ejecución en laboratorios de urgencias. d) Necesidad de múltiples lavados entre colorantes.

37. ¿Qué componente celular se tiñe de azul con la tinción de May GrünwaldGiemsa?. a) Hemoglobina. b) Ácidos nucleicos. c) Proteínas citoplasmáticas. d) Gránulos citoplasmáticos.

40. En la tinción de May GrünwaldGiemsa, ¿cómo se tiñen los gránulos citoplasmáticos de los leucocitos eosinófilos?. a) Azul claro. b) Verde. c) Rojo-anaranjado. d) Violeta oscuro.

41. ¿Qué función cumple la solución de May Grünwald en la tinción de May GrünwaldGiemsa?. a) Actúa como fijador y colorante inicial. b) Sirve como agente de contraste. c) Utilizada para la dilución de la muestra. d) Se emplea para el lavado final de la preparación.

46. ¿Qué caracteriza principalmente a la tinción de Wright?. a) Uso exclusivo de colorantes ácidos. b) Es una técnica de tinción policromada. c) Aplicación en células vivas. d) Requiere múltiples etapas de tinción.

47. ¿Qué estructuras celulares tiñe predominantemente la tinción de Wright?. a) Membranas celulares. b) Gránulos citoplasmáticos. c) Ácidos nucleicos y proteínas citoplasmáticas. d) Lípidos celulares.

¿Cuántos colorantes usa la tinción de May Grünwald-Giemsa?. 1. 2. 3. 4.

¿Cuántos colorantes usa la tinción de Wright?. 1. 2. 3. 4.

¿Cuántos colorantes usa la tinción panóptico rápido?. 1. 2. 3. 4.

55. ¿En qué se diferencia principalmente la tinción panóptico rápido de otras tinciones policromadas?. a) En su capacidad para teñir células infecciosas. b) En la duración del proceso de tinción. c) En los tipos de colorantes utilizados. d) En la necesidad de múltiples lavados.

56. ¿Qué caracteriza a las tinciones supravitales en hematología?. a) Requieren fijación previa de las células. b) Se utilizan exclusivamente en células muertas. c) Se aplican para la observación de células vivas. d) Son principalmente para identificación de patógenos.

57. ¿Cuál es la tinción supravital más común para reticulocitos en sangre periférica?. a) Tinción de Giemsa. b) Tinción de azul cresil brillante. c) Tinción de Wright. d) Tinción de May GrünwaldGiemsa.

60. ¿Cuál es el procedimiento general para realizar una tinción supravital?. a) Fijación y luego tinción. b) Tinción directa en células fijadas. c) Mezcla de colorante con la sangre seguida de extensión. d) Aplicación de calor antes de la tinción.

66. ¿Qué actividad enzimática se identifica mediante la tinción de fosfatasa alcalina granulocítica?. a) Actividad enzimática en gránulos secundarios de leucocitos neutrófilos. b) Presencia de carbohidratos en células. c) Degradación de ácidos nucleicos. d) Síntesis de proteínas.

68. ¿Cómo se calcula el índice de actividad de la fosfatasa alcalina granulocítica?. a) Midiendo la concentración del enzima. b) Evaluando la intensidad de coloración en un conjunto de células. c) Contando el número de células positivas. d) Determinando la rapidez de reacción.

69. ¿Qué información proporciona la fosfatasa alcalina granulocítica en el estudio de síndromes mieloproliferativos?. a) Diferenciación entre leucemia mieloide crónica y reacciones neutrofílicas secundarias. b) Identificación de células cancerosas. c) Evaluación de la función plaquetaria. d) Determinación de la presencia de anemia.

70. ¿Qué implica una puntuación muy baja o nula en la tinción de fosfatasa alcalina granulocítica?. a) Alta actividad enzimática. b) Posible indicador de leucemia mieloide crónica. c) Presencia de infección. d) Normalidad en los parámetros hematológicos.

71. ¿Cuál es la finalidad principal del examen microscópico de extensiones de sangre periférica?. a) Medir los niveles de hemoglobina. b) Detectar alteraciones morfológicas en células sanguíneas. c) Identificar patógenos infecciosos. d) Analizar la coagulación sanguínea.

72. ¿En qué circunstancia se indica específicamente el examen microscópico de sangre periférica?. a) Siempre que se realiza un hemograma. b) Cuando hay desviaciones significativas en los recuentos sanguíneos. c) Solo en casos de sospecha de infección. d) Únicamente para análisis de función renal.

74. ¿Cuándo se recomienda realizar un examen microscópico en el caso de enfermedades no hematológicas?. a) Siempre que hay una enfermedad sistémica. b) Solo si se sospecha una infección parasitaria. c) Cuando hay manifestaciones hematológicas, incluso si los recuentos son normales. d) Únicamente en tratamientos oncológicos.

77. ¿Cómo se realiza el análisis detallado en el examen microscópico de sangre periférica?. a) Con el uso de colorantes específicos. b) Mediante el objetivo de inmersión 100x y aceite de inmersión. c) Análisis automatizado tras la observación inicial. d) A través de pruebas bioquímicas complementarias.

78. ¿Qué se busca principalmente en el examen microscópico detallado de las extensiones sanguíneas?. a) Recuento total de células sanguíneas. b) Análisis morfológico de leucocitos, eritrocitos y plaquetas. c) Identificación de patógenos. d) Medición de los niveles de hemoglobina.

83. ¿Cuál es un aspecto importante al realizar un recuento diferencial de leucocitos en el examen microscópico?. a) Contar 50 leucocitos. b) Excluir los eritrocitos del recuento. c) Contar 100 leucocitos y expresar sus tipos porcentualmente. d) Incluir únicamente los linfocitos y neutrófilos en el recuento.

85. ¿Qué se evalúa principalmente en una extensión de médula ósea?. a) Concentración de hemoglobina. b) Niveles de glucosa en sangre. c) Morfología de células hematopoyéticas precursoras. d) Función renal.

89. ¿Qué indican las extensiones de médula ósea en el estudio de enfermedades hematológicas?. a) Niveles de hierro en el organismo. b) Función hepática y renal. c) Información sobre la proporción de las series hematopoyéticas. d) Concentración de anticuerpos específicos.

92. ¿Qué volumen de médula ósea se considera adecuado para un estudio citológico convencional?. a) Menos de 0.1 ml. b) Aproximadamente 0.5 ml. c) Más de 1 ml. d) 2 ml o más.

97. ¿Qué técnica se suele emplear para realizar extensiones de médula ósea?. a) Técnica del portaobjetos en cuña o por aplastamiento. b) Técnica de centrifugación. c) Técnica de criopreservación. d) Técnica de filtración.

99. ¿Cuál es el procedimiento si no se pueden realizar extensiones inmediatamente después de la aspiración?. a) Refrigerar la muestra. b) Realizar un cultivo celular. c) Transportar la muestra al laboratorio en un tubo con EDTA. d) Aplicar un fijador para preservar la muestra.

104. ¿Cuál es un factor importante a tener en cuenta al aplicar tinciones a las extensiones de médula ósea?. a) Tiempos de incubación más largos debido al mayor grosor de las extensiones. b) Uso exclusivo de colorantes ácidos. c) Aplicación de calor para fijar la tinción. d) Necesidad de múltiples lavados entre colorantes.

110. ¿Cuál es el objetivo de las tinciones especiales en extensiones de médula ósea?. a) Identificar patógenos infecciosos. b) Medir la concentración de hemoglobina. c) Detectar características específicas como actividades enzimáticas y compuestos celulares. d) Evaluar la concentración de minerales.

111. ¿Qué característica se puede identificar en las células de médula ósea mediante la tinción de PAS?. a) Presencia de carbohidratos. b) Actividad enzimática. c) Niveles de hierro. d) Estructura de la membrana celular.

112. ¿Qué revela la tinción de Perls en extensiones de médula ósea?. a) Actividad de la fosfatasa alcalina. b) Presencia de depósitos de hierro. c) Estructuras citoplasmáticas. d) Concentración de hemoglobina.

113. ¿Para qué se utiliza la tinción de la mieloperoxidasa en la médula ósea?. a) Diferenciación de células mieloides de linfoides. b) Identificación de patógenos. c) Medición de la concentración de proteínas. d) Detección de cambios en la membrana celular.

116. ¿Qué revela la tinción de la mieloperoxidasa en células de médula ósea?. a) Presencia de carbohidratos. b) Actividad enzimática de neutrófilos y eosinófilos. c) Niveles de hierro en células. d) Identificación de células linfoides.

117. ¿Qué indica una reacción positiva en la tinción de PAS en médula ósea?. a) Presencia de ácidos nucleicos. b) Actividad de la fosfatasa alcalina. c) Contenido de carbohidratos como glucógeno y mucopolisacáridos. d) Concentración de proteínas citoplasmáticas.

118. ¿Qué se detecta mediante la tinción de esterasa en células de médula ósea?. a) Presencia de hierro en forma de ferritina. b) Estructuras citoplasmáticas específicas de monocitos y macrófagos. c) Estructuras nucleares anormales. d) Concentraciones de hemoglobina.

120. ¿Qué aspecto tienen las células positivas en la tinción de fosfatasa ácida?. a) Rojo/anaranjado en el citoplasma. b) Verde en los núcleos. c) Azul en las estructuras citoplasmáticas. d) Amarillo en los gránulos.

121. ¿Qué caracteriza la tinción de la mieloperoxidasa en extensiones de médula ósea?. a) Coloración de los núcleos en rojo. b) Tinción de las células mieloides en negro pardo. c) Visualización de las plaquetas en verde. d) Identificación de los linfocitos en azul.

123. ¿Para qué se emplea la tinción de esterasa en la evaluación de médula ósea?. a) Diferenciar entre células mieloides y linfoides. b) Detección de células del linaje monocito-macrófago. c) Medir la concentración de proteínas. d) Identificar alteraciones nucleares.

125. ¿Qué caracteriza las tinciones inmunocitoquímicas en hematología?. a) Uso de anticuerpos específicos para detectar moléculas características de células concretas. b) Aplicación de colorantes ácidos y básicos. c) Identificación de patógenos infecciosos. d) Medición de la concentración de hemoglobina.

127. ¿Cuál es una aplicación principal de las tinciones inmunocitoquímicas en hematología?. a) Identificación y clasificación de células neoplásicas. b) Evaluación de la función plaquetaria. c) Detección de deficiencias de vitaminas. d) Medición de niveles enzimáticos.

129. ¿Qué ventaja ofrecen las tinciones inmunocitoquímicas en comparación con otras técnicas de tinción?. a) Mayor rapidez en la obtención de resultados. b) Menor costo de los reactivos. c) Alta especificidad y afinidad para moléculas específicas. d) Capacidad para medir la concentración de hemoglobina.