Mª Mar SEM

1. ¿Qué medio permite distinguir colonias de Campylobacter jejuni mediante color?. Agar CHROMAgar, con colonias azules. Agar CASA, con colonias rojas. Agar CASA, con colonias azules. Agar CHROMAgar, con colonias amarillas. Agar MacConkey, con colonias amarillas.

¿Cuál es la principal limitación de los tests de antígenos como método directo?. Necesidad de células vivas. Baja rapidez. Sensibilidad limitada. Requieren equipamiento avanzado. Coste elevado.

¿Qué técnica es considerada la referencia por antonomasia para el diagnóstico directo de microorganismos cultivables?. ELISA. Inmunofluorescencia in situ. Microscopía óptica. Cultivo en caldo o en agar. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR).

El medio Granada se usa ampliamente para detectar: Escherichia coli. Acinetobacter spp. Vibrio spp. Streptococcus agalactiae. Pseudomonas eruginosa.

En la infección por Mycobacterium tuberculosis, la detección directa de ARNm, por ejemplo, mediante PCR cuantitativa en tiempo real, es útil porque: Contribuye a evitar la emergencia de resistencias. El ARNm es más estable que el ADN y, por lo tanto, más abundante y fácil de obtener. Permite, además de la detección bacteriana, cuantificar anticuerpos en el huésped. Es muy sencilla desde el punto de vista técnico. Refleja mejor la viabilidad bacteriana.

¿Qué método directo combina rapidez y alta precisión en la identificación bacteriana a nivel proteómico?. ELISA. Western blot. PCR en tiempo real. Microscopía óptica. Espectrometría de masas MALDI-TOF.

De entre los siguientes fundamentos metodológicos, ¿cuál no representa la base de un método de diagnóstico directo?. Detección de la respuesta inmune del huésped. Observación microscópica. Identificación proteómica. Crecimiento del microorganismo en cultivo. Detección de ácidos nucleicos del patógeno.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones describe mejor la relación entre la PCR y el cultivo en medios cromogénicos para la detección de Staphylococcus aureus resistente a meticilina (SARM)?. La PCR es siempre superior al cultivo cromogénico. No existe tal relación, ya que el cultivo cromogénico no puede utilizarse para detectar SARM. Ambos métodos tienen sensibilidad comparable cuando el cultivo se incuba durante 48 horas. El cultivo cromogénico es siempre superior a la PCR. La PCR y el cultivo tienen el mismo tiempo de respuesta.

La muestra que se recomienda para estudio microbiológico de conjuntivitis es exudado conjuntival. Verdadero. Falso.

El frotis pericatéter no es útil para el estudio microbiológico de infección del catéter. Verdadero. Falso.

La muestra que se recomienda para estudio microbiológico de una pericarditis es sangre venosa. Verdadero. Falso.

Entre las muestras que se recomiendan para estudio microbiológico de una uretritis está incluida la muestra de orina. Verdadero. Falso.

En el estudio microbiológico de una meningitis está indicado tomar una muestra de sangre para hemocultivo. Verdadero. Falso.

Sobre los medios de transporte de muestras y recipientes y sistemas de recogida y transporte de muestras microbiológicas, ES CIERTO QUE: Medio de Regan-Lowe para transporte de Bordetella spp. Los frascos lisis-centrifugación son idóneos en caso de bacteriemia/ fungemia. Las torundas de mango flexible son idóneas tomas nasofaríngeas. Los contenedores estériles de boca ancha son útiles para recoger muestras de catéteres. Todo lo anterior.

Respecto a la toma de muestras, ES CIERTO QUE: La punción-aspiración es útil para la toma de muestra de absceso visceral. La toma de muestra exudado vaginal se hace en fondo de saco vaginal posterior. Para la toma de exudado rectal se usa el hisopo con medio de transporte rotándolo repetidas veces en la zona de las criptas. El exudado faríngeo se toma con hisopo con medio de cultivo gel para cultivo bacteriano. Todo lo anterior.

En cuanto a la conservación de muestras para estudio microbiológico, ES CIERTO QUE: Para estudio de micobacterias nunca se refrigeran las muestras. Las muestras para hemocultivo se refrigeran. Las muestras de heces no se pueden refrigerar. Las muestras para estudio de virus se refrigeran 2 - 8°C. Las muestras de LCR se refrigeran siempre.