MC -MICROBIOLOGÍA CLÍNICA.

¿Cuál de las siguientes opciones se corresponden con barreras primarias en un laboratorio de microbiología?. Equipos de protección individual (EPIs). Diseño y construcción de la instalación. Cabinas de flujo laminar. Todas son correctas.

En relación con la transmisión parenteral, selecciona la respuesta correcta: Se produce cuando centrifugamos muestras en recipientes no herméticos. Para evitarla hay que reencapsular las agujas hipodérmicas antes de desecharlas. Se produce cuando manipulamos objetos corto-punzantes. Los guantes son la mejor manera de protección.

En relación con los grupos de riesgo que clasifican a los agentes biológicos, selecciona la respuesta correcta: Los agentes de los grupos 1, 2 y 3 tienen poco riesgo para los seres humanos. Cada laboratorio realiza su propia clasificación. Los agentes del grupo 4 son los más peligrosos. Los agentes del grupo 1 son los más peligrosos.

Los organismos empleados en la industria de la alimentación, como _Lactobacillus_, corresponden al nivel de contención: NCB-3. NCB-1. NCB-2. NCB-4.

Para el manejo con seguridad de productos químicos en el laboratorio es importante: Manejarlos en CBS (cabinas de seguridad biológica). Conocer la composición y el proceso de fabricación de los mismos. Tener a mano la ficha de seguridad del producto. Estar en contacto con el Colegio Oficial de Químicos de la comunidad.

Para el transporte y envío de muestras biológicas se necesitan, según el RD 65/2006, modificado por la orden SAS/3166/2009: Tres recipientes: primario, secundario y externo. Un recipiente sólo, mientras sea hermético. Dos recipientes: primario y secundario. Ninguna es correcta.

Para evitar el riesgo de inhalación de aerosoles se usan: Mascarillas. Gafas de protección. Guantes. Bata.

Sabiendo que el virus de Lassa es un agente biológico del grupo 4, ¿qué tipo de CSB sería apropiada para trabajar con él en su interior?. CSB de Clase III. Cabinas de Flujo Laminar. CSB de Clase II. CSB de Clase I.

Señala en qué grupo de residuos se clasifican los citotóxicos: Grupo VII. Grupo III. Grupo VI. Grupo V.

Señala la respuesta correcta sobre CSB: Las CSB de Clase II sólo protegen frente a agentes del grupo 2. Todas las CSB protegen el material con el que se trabaja. Todas ellas protegen al operador y la zona que le rodea. Existen hasta 4 tipos (I, II, III y IV).

En relación con la Familia Enterobacteriaceae o enterobacterias: Son cocos Gram+. Son un tipo de micoplasmas. No tienen interés clínico. Muchas se encuentran el tracto intestinal.

En relación con la tinción de Gram, selecciona la respuesta incorrecta: Las bacterias Gram- se tiñen de rojo-rosa. Se usa para la taxonomía y clasificación de las bacterias. No es una técnica muy utilizada en microbiología. Las bacterias Gram+ se tiñen de azul-violeta.

En relación al crecimiento bacteriano selecciona la respuesta incorrecta: Se basa en el aumento de tamaño de las bacterias. Es un término que hace referencia al aumento de individuos de una población bacteriana. El crecimiento bacteriano sigue la fórmula Nt = N0 x 2n. El crecimiento tiene una fase exponencial o logarítmica.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un bacilo Gram-: Género Haemophilus. Género Listeria. Género Pseudomonas. Género Vibrio.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un coco Gram+: Género Streptococcus. Género Enterococcus. Género Pseudomonas. Género Staphylococcus.

¿En qué se diferencian las células procariotas (bacterias) de las células eucariotas humanas?. Ambas tienen núcleo, pero solo las bacterias tienen pared celular. Es muy difícil diferenciarlas porque ambas son microscópicas. Ambas tienen pared celular, pero solo las células eucariotas tienen núcleo. A diferencia de las células eucariotas, las bacterias no tienen núcleo, pero sí tienen pared celular.

Las esporas bacterianas son: Una forma de resistencia bacteriana. La fase en la que las bacterias están más activas metabólicamente. Una forma por la que pasan todas las bacterias a lo largo de su ciclo vital. Un tipo de reproducción bacteriana.

Selecciona la característica que NO representa a las Cocos Gram-: Dos de los géneros más importantes son Neisseria y Moraxella. Son bacterias con forma esférica. Se tiñen de color azul-violeta. Muchas de las bacterias que forman este grupo forman diplococos.

Si una bacteria puede sobrevivir en presencia de oxígeno, pero no lo usa porque su metabolismo es anaerobio, nos referimos a: Una bacteria aerotolerante. Una bacteria microaerófila. Una bacteria anaerobia facultativa. Una bacteria anaerobia estricta.

Señala la respuesta incorrecta respecto al Staphylococcus saprophyticus: Infecta el tracto urinario de las mujeres sexualmente activas. Es un microorganismo Gram positivo. Pertenece al mismo género que S. aureus. Pertenece a la misma especie que Staphylococcus aureus.

El objetivo de la fijación es: Destruir las bacterias con elevado riesgo biológico. Evitar que las bacterias móviles se desplacen en la preparación. Mantener los microorganismos lo más parecidos a su estado vivo. Todas las respuestas son correctas.

La tinción Ziehl-Neelsen es una tinción ácido-alcohol resistente (señala la respuesta INCORRECTA): Se utiliza el colorante de fucsina de Ziehl y Azul de Metileno. Los microorganismos son alcohol-resistentes porque resisten la fijación con ácidos y alcoholes. Los microorganismos ácido-alcohol resistentes aparecen teñidos de rojo/rosa sobre fondo azul en esta tinción. Se basa en que los microorganismos ácido-alcohol resistentes no se decoloran debido a que tienen ácidos grasos que lo impiden.

Las tinciones diferenciales se llaman así porque: Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su afinidad a diferentes colorantes. Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su color natural. Utilizan técnicas que difieren mucho de las técnicas clásicas de tinción de microorganismos. Utilizan diferentes sustancias para colorear.

Para la tinción de parásitos en heces se utiliza: Safranina. Azul de metileno. Lugol. Hidróxido sódico.

Para lograr teñir bacterias esporuladas usamos: Verde malaquita. Azul de metileno. Lugol. Ziehl-Neelsen modificado.

Para preparar un frotis bacteriano se debe seguir el siguiente orden: Secado, coloración, fijación, lavado y secado final. Fijado, coloración, lavado y secado único. Fijación, secado, coloración, lavado y secado final. Secado, fijación, coloración, lavado y secado final.

Para realizar y visualizar tinciones fluorescentes necesitamos: Microscopios electrónicos con luz fluorescente. Bacterias con fluorescencia natural. La tinción de Kinyoun. Microscopios de fluorescencia.

Parásitos sanguíneos como Leishmania y Trypanosoma pueden teñirse con: Ziehl-Neelsen. Auramina-rodamina. Giemsa. Verde malaquita.

Señala el orden correcto para realizar una tinción de Gram: Cristal violeta, decolorante, lugol y safranina. Cristal violeta, lugol, decolorante y safranina. Safranina, lugol, decolorante y cristal violeta. Cristal violeta, Lugol, safranina y decolorante.

Señala la respuesta incorrecta sobre el examen en fresco: Se observa con el objetivo de x 40 y con poca luz. Se fija la preparación. Se puede realizar a partir de muestra sólida o líquida. Se puede apreciar con esta técnica la movilidad de Trichomonas vaginalis.

Cuando preparamos medio de cultivo, uno de los pasos es autoclavarlo, ¿por qué se realiza este proceso?. Porque esteriliza el medio de cultivo y así se evita el crecimiento de bacterias indeseadas. Realmente, no es necesario en todos los casos. Porque ayuda a gelificar el agar al calentar la disolución. Porque modifica el pH a unos valores adecuados para el crecimiento bacteriano.

El agar SS es selectivo para: Pseudomonas. S. pyogenes. S. aureus. Salmonella spp.

El medio agar inclinado de Lowestein – Jensen/Coletsos se usa para aislar: Levaduras. Trichomonas. Campylobacter. Micobacterias.

El medio Chapman o manitol salado permite el crecimiento de: Estreptococos. Solo S. aureus. Estafilococos, tanto S.aureus, como los coagulasa negativa. Solo estafilococos distintos a S.aureus.

El medio CLED se usa para: Como agar para anaerobios. Como agar para cultivo de orina. Como caldo de enriquecimiento. Para aislar Haemophilus spp.

En relación con los medios de transporte, selecciona la afirmación FALSA: Contiene nutrientes para mantener vivas a las bacterias hasta que llegan al laboratorio. Suelen utilizarse viales o tubos donde se introduce la muestra directamente o por medio de una torunda o hisopo. Puede mantenerse sin refrigerar entre 12 y 24 horas. Contiene agar y agua para evitar la desecación de los microorganismos.

En relación con los medios líquidos, señala la respuesta incorrecta: Se utilizan para el aislamiento de bacterias. Se suelen realizar en tubos de ensayo. Permiten un mayor crecimiento bacteriano. No llevan agar.

En un medio de agar Hektoen, ¿a qué tipo de bacterias puede corresponder esta imagen?: Levaduras. Salmonella. Shigella. E. coli.

Para que un microorganismo crezca es necesario unas condiciones de cultivo determinadas, selecciona la respuesta incorrecta: Una atmosfera rica en oxígeno (aerobia). Un pH definido, normalmente cercano a la neutralidad. Elementos como carbono, azufre, fosforo, etc. Una temperatura determinada, normalmente entre 25 y 40°C.

Señala en cuál de estos agares se pueden observar la alfa, beta y gamma-hemólisis: Mycosel. CLED. MacConkey. Sangre.

¿Para qué se utiliza la siembra por picadura?. Para almacenar cultivos mixtos. Para el estudio de la movilidad. Para realizar antibiograma. Para almacenar colonias en poco tiempo.

¿Para qué sirve el asa de Digralsky?. Todas las respuestas son correctas. Realización de antibiograma. Siembra masiva en superficie. Recuento de colonias.

¿Qué tipo de siembra es la siguiente?. Técnica de Barry. Siembra por aislamiento. Siembra por recuento. Siembra en masa.

A qué nos referimos cuando hablamos de bacterias capnófilas?. A los que no necesitan CO2 para vivir. A microorganismos aerobios que crecen bien en atmósfera enriquecida con 5-10 % de CO2. A las bacterias anaerobias. A las bacterias que crecen a bajas temperaturas.

Al realizar el recuento de viables en placa…. No hay que contar colonias. Hay que tener en cuenta el factor de dilución. Es un método de recuento electrónico. Contamos las células individuales.

Cuando realizamos la siembra de microorganismos debemos seguir una serie de recomendaciones, ¿cuál de ellas es FALSA?. Las bocas de los tubos y placas de plástico se flamean ligeramente una vez destapadas. Los tubos abiertos deben mantenerse en posición inclinada para que el riesgo de contaminación sea mínimo. Las tapas de las placas Petri no deben colocarse nunca sobre la mesa de trabajo. Si las asas de siembra que se emplean no son desechables es imprescindible esterilizarlas flameándolas cada vez y enfriarlas antes de su reutilización.

De las siguientes muestras, ¿cuál rechazarías?. Una muestra de vómito. Muestra tomada con métodos invasivos con más de 24 horas de transporte. Muestras identificadas con código de barras. Muestra tomada con métodos invasivos en un envase inadecuado.

En relación a las colonias bacterianas que crecen sobre los medios de cultivo sólidos. Selecciona la afirmación verdadera: Todas tienen un aspecto blanquecino y redondeado. Cada colonia visible está formada por unas pocas bacterias. Es sinónimo de UFC. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar algunas especies de bacterias.

La siembra en masa o técnica de Barry se basa en: Mezclar un volumen determinado de la muestra con uno del medio de cultivo y verterlo en la placa. En hacer siembras en matraces tipo Erlenmeyer. Siembras en superficie para posteriormente hacer recuentos. Realizar la siembra en cuatro cuadrantes marcados en la placa.

Las jarras y bolsas de anaerobiosis se utilizan para: El cultivo de microorganismos anaerobios, porque llevan unos reactivos que producen el agotamiento del O2. Para el aislamiento y transporte de microorganismos patógenos peligrosos. Para el cultivo de microorganismos microaerófilos, ya que los aísla del O2 atmosférico. El cultivo de microorganismos aerobios, ya que los protege del CO2 atmosférico.

En relación a las colonias bacterianas que crecen sobre los medios de cultivos sólidos. Selecciona la afirmación verdadera: A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar inequívocamente alguna especie bacteriana. Todas tienen un aspecto blanquecino y redondeado. Cada colonia visible está formada por una sola bacteria. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar de manera presuntiva alguna especie bacteriana.

Medio de cultivo según la composición. Medio enriquecido. Medio especial. Medio líquido. Medio definido.

Agar Mueller-Hinton. Medio especial. Medio diferencia. Medio concebido para antibiogramas. Medio selectivo.

Medio Stuart. Medio concebido para realizar antibiogramas. Medio especial. Medio de transporte. Medio líquido.

Medio en tubo específico para el crecimiento de hongos como la candida: Caldo tioglicolato. Caldo Roiron. Caldo Selenito. Caldo Todd-Hewitt.

Medio sólido en placa específico para el crecimiento de Haemophilus. Agar MacConkey. Agar chocolate. Agar Hektoen. Agar sangre. Agar Cistina.

Medio sólido en placa específico para determinar la sensibilidad de los antibióticos. Agar Thayer Martin. Agar Mueller-Hinton. Agar sangre. Agar Hektoen. Agar MacConkey.

Tinción simple. Verde malaquita. Gram. Yodo. Nigrosina. Giemsa.

Tinción diferencial: Verde malaquita. Azul de metileno. Tinta china. Nigrosina. Yodo.

Tinción ácido alcohol resistente usada para teñir M.tuberculosis: Tinción de Giemsa. Tinción de Kinyoun. Tinción de Ziel-Neelsen modificado. Tinción auramina-rodamina.

Tinción Gram que produce la tinción de las bacterias gram -. Safranina. Cristal violeta. Lugol. Azul de metileno.

Indica la opción correcta: Ninguna opción es correcta. Los agentes biológicos se clasifican en 5 categorías según su riesgo. El manual de seguridad indica como usar los equipos correctamente. Todo peligro tendrá un riesgo alto asociado.

Indica dónde figura cómo se deben clasificar los agentes biológicos y sus niveles de contención según el riesgo biológico: Ley Orgánica 664/1997. Ley Orgánica 65/2006. Real Decreto 664/1997. Real Decreto 65/2006.

Indica la opción correcta. Todas las opciones son correctas. El grupo de riesgo 2 incluye aquellos agentes biológicos que no suelen constituir un peligro para los trabajadores, pero es muy probable que sí se propague a la población. El grupo de riesgo 3 no requiere ni presenta profilaxis o tratamiento. El virus de Marburgo se clasifica como un agente biológico del grupo 4.

Indica la opción correcta. Todas las opciones son incorrectas. Los microorganismos con alta contagiosidad son manipulados en laboratorios de NCB-1. Mycobacterium tuberculosis, según su grupo de riesgo, puede ser manipulado en salas de baja contención como los laboratorios de centros docentes. El virus del Ébola, según su grupo de riesgo, debe manipularse en laboratorios de NCB-2.

¿Qué opción es una barrera primaria?. Todas son barreras primarias. Gafas de protección. Cabinas de bioseguridad. Guantes.

Requisito imprescindible de todas las cabinas de bioseguridad: Uso de manguitos unidos al frontal. Tener filtros HEPA. Proteger el producto. Recircular constantemente el aire.

Elemento imprescindible de la bacteria que sirve de protección frente a sustancias tóxicas (ejemplo. Antibióticos): Pared Celular. Cápsula. Endospora. Membrana plasmática.

Característica de las bacterias. Ribosomas 70S. Núcleo rodeado por membrana nuclear. Son protistas. Todas presentan plásmidos.

Según el requerimiento de oxígeno, si observamos que las bacterias crecen a lo largo de todo el tubo de ensayo podremos pensar que son bacterias... Aerotolerantes. Anaerobias estrictas. Aerobias estrictas. Microaerófilas.

Indica cuál de estas bacterias es un bacilo. Neisseria gonorrohoeae. Moraxella catarrhalis. Escherichia coli. Staphylococcus saprophyticus.

¿Cómo se denomina a aquella bacteria que presenta flagelos por toda su superficie?. Monotrico. Lofoanfitrico. Peritrica. Lofotrico.

Teniendo en cuenta la siguiente imagen, indica cuál de las siguientes bacterias puede presentar este tipo de pared celular: Enterococcus faecalis. Corynebacterium diphteriae. Helicobacter pylori. Lactobacillus acidophilus.

Indica la opción INCORRECTA sobre la tinción Ziehl-Neelsen y las bacterias-ácido-alcohol-resistentes (BAAR): Las BAAR aparecen teñidas de rojo/rosa. Las BAAR son resistentes a la fijación al presentar ácidos grasos de cadena corta. Se utiliza fucsina y Azul de Metileno. Las BAAR son resistentes a la decoloración al presentar ácidos grasos de cadena larga.

Para la tinción de estructuras reproductoras de hongos filamentosos se utiliza: Azul de lactofenol. Rojo congo. Tinta china. Tinción negativa.

Indica la opción correcta: Si sospechamos que un paciente presenta Candidiasis no es recomendable realizar la tinción de Gram. En la tinción Ziehl-Neelsen modificado se emplea como decolorante el ácido clorhídrico. Si se sospecha que un paciente tiene Plasmodium spp. emplearemos la tinción de Gram. Al realizar la tinción verde malaquita, observaremos en verde la parte bacteriana y en rosa la espora.

Indica la opción correcta: La preparación en fresco simple conlleva realizar una tinción previa. Los frotis se deben realizar siempre mediante productos sólidos como el uso del hisopo. El método de gota pendiente es acertado usarlo cuando se quiere observar las bacterias vivas durante un periodo de tiempo. Todas son incorrectas.

Según los requerimientos de oxígeno, ¿Cómo nombramos aquellas bacterias que pueden crecer en presencia o en ausencia de oxígeno?. Aerobias estrictas. Microaerófilas. Anaerobias estrictas. Anaerobias facultativas.

Las peptonas son: Un componente de los medios de cultivo. Productos de la digestión de proteínas. Polipéptidos. Todas son correctas.

Componente que facilita el crecimiento de bacterias anaerobias: Bilis. Cisteína. Cloruro sódico. Colorantes.

El medio Schaedler es un medio: Es un medio líquido sin agar para la determinación de bacterias aerotolerantes. Es un medio sólido como el Granada.(pero no es igual al medio Granada). Ninguna opción es correcta. Es un medio líquido.

Indica un medio en tubo: Tioglicolato. Agar sangre. Muller-Hinton. MacConkey.

¿Cómo nombramos aquellos medios que permiten el crecimiento de determinados microorganismos al usar antibióticos?. Medio enriquecido. Medio selectivo. Medio de transporte. Medio diferencial.

¿Muestra que siempre se procesan?. Muestras no invasivas no transportadas correctamente. Torundas de lesiones. Muestras duplicadas de esputos del mismo día. Muestras duplicadas de sangre del mismo día.

En la técnica de Maki, se interpreta que como infectado si... Aparecen ≤ 5 UFC. Aparecen ≥ 15 UFC. Aparecen ≤ 10 UFC. Aparecen ≥ 5 UFC.

Al realizar recuento a partir de diluciones... Ninguna opción es correcta. Se cuentan solo aquellas placas donde existan entre 50 - 300 colonias. Se cuentan todas las placas. Se recomienda sembrar 10 placas de cada dilución.

Técnica de determinación del crecimiento que emplea espectrofotometría: Todas las opciones emplean un espectrofotómetro. Cámara de Neubauer. Turbidimetría. Método Coulter.

A la hora de realizar la siembra... Las placas deben sacarse del frigorífico justo en el momento de la siembra. Hay que que flambear ligeramente las bocas de los tubos. Todas son correctas. Hay que dejar los tapones en la mesa al lado de un mechero.

Teniendo en cuenta que se va a realizar un cultivo de Mycobacterium tuberculosis en el laboratorio de microbiología, ¿con qué nivel de bioseguridad debemos trabajar?. Con el BSL-1, lo que implica trabajar con CBS clase III o trajes presurizados con CBS clase II. Con el BSL-3, lo que implica trabajar con CBS de clase I y EPI. Con el BSL-1, lo que implica trabajar con las técnicas microbiológicas habituales. Con el BSL-3, lo que implica trabajar con CBS de clase III o trajes presurizados con CBS clase.

En un procedimiento debe utilizar ácido clorhídrico concentrado, ¿qué precauciones debe tomar a la hora de manipular este líquido?. Trabajar con BSL-3, utilizando trajes presurizados y CBS de clase III, teniendo especial cuidado al manipular el recipiente. Utilizar guantes y trabajar con normalidad sobre la mesa de trabajo, teniendo especial cuidado al trabajar a la llama. Se pueden verter los residuos por el fregadero. Utilizar guantes y ropa de protección, no es necesario utilizar gafas de seguridad ni trabajar en campana de flujo laminar ya que no hay peligro de salpicaduras ni gases. Utilizar guantes, ropa de protección, gafas de seguridad, trabajar en campana de flujo laminar a ser posible y, en caso de tener que verter el líquido, realizar el vertido delicadamente sobre la pared del recipiente. Se deben verter los residuos en un recipiente de desecho especial.

Está realizando un recuento microbiano de la población de Saccharomyces cerevisiae que hay en los tanques de fermentación para la producción de cerveza, ¿qué medidas de seguridad debe aplicar en función del grupo de riesgo al que pertenece esta levadura?. Se deben tomar medidas de protección especiales para el grupo de riesgo 1, que incluyen trabajar en cabina de seguridad biológica de clase II. Se deben tomar las medidas de protección rutinarias dado que trabajamos con un microorganismo de riesgo 4, el más bajo, que no causa patologías en humanos. Se deben tomar medidas rutinarias junto con ropa protectora, señal de riesgo biológico y cabina para aerosoles. Se deben tomar las medidas de protección rutinarias dado que trabajamos con un microorganismo perteneciente al grupo de riesgo 1, que es muy poco probable que cause patologías en humanos.

Debe desechar una jeringuilla que ha extraído sangre de un paciente contagiado con VIH. ¿En qué contenedor debe tirar este residuo?. En un contenedor para residuos de clase VI. En un contenedor para residuos citotóxicos. En un contenedor para residuos de clase III como en los que se desechan químicos peligrosos. En un contenedor para residuos de clase III, que además sean punzantes.

En la siguiente microfotografía, podemos observar una bacteria con morfología de…. Vibrio. Coco. Bacilo. Espirilo.

En la siguiente microfotografía observamos: Bacilos ácido resistentes y cocos no ácido resistentes . Cocos ácido resistentes y bacilos no ácido resistentes. Cocos Gram negativos y bacilos Gram positivos. Cocos Gram positivos y bacilos Gram negativos.

Staphylococcus aureus es una bacteria: Gram positiva y aerobia estricta, responsable de la caries dental. Gram negativa y anaerobia facultativa, forma parte de la microbiota intestinal. Gram negativa y aerobia, responsable de neumonía y sepsis. Gram positiva y anaerobia facultativa, responsable de neumonía y meningitis.

Clostridium sp. es: Un género de bacterias cocoidales gram negativos. Una especie de bacterias cocoidales gram positivos. Una especie de bacterias bacilares gram negativos. Un género de bacterias bacilares gram positivos.

Escherichia coli es una: Bacteria bacilar gram positiva. Enterobacteria (cocos gram negativos). Bacteria cocoidal gram negativa. Enterobacteria (bacilos gram negativos).

El ginecólogo toma una muestra de exudado endocervical, de una paciente con inflamación vulvovaginal, ardor al orinar y dolor durante las relaciones sexuales. Decide hacer un examen en fresco y una tinción de Papanicolau, observando cuerpos de inclusión en las células epiteliales. ¿De qué bacteria podemos sospechar?. Escherichia coli. Treponema pallidum. Neisseria gonorrhoeae. Chlamydia trachomatis.

En la siguiente microfotografía observamos: Bacilos y cocos, los cocos se tiñen con verde malaquita y los bacilos con safranina. Esporas (verde) y otras formas de resistencia bacteriana (rojo). Bacilos viables de rosa, en los que no penetra el verde malaquita, y no viables de verde, en los que penetra el verde malaquita por la desintegración de la pared celular. Bacilos esporulando, las esporas se tiñen con verde malaquita y las bacterias con safranina.

¿Qué tinción se emplea específicamente para teñir micobacterias?. Tinción de Giemsa. Tinción simple con azul de metileno. Tinción de Gram. Tinción Ziehl-Neelsen.

¿Qué medio de cultivo se utiliza para observar hemólisis?. Agar Hecktoen. Agar MacConkey. Agar chocolate. Agar sangre.

En este medio, podemos observar bacterias con actividad: Beta hemolítica. Alfa hemolítica. Gamma hemolítica. No hemolítica.

Se han cultivado enterobacterias en Agar MacConkey, ¿qué nos indica la placa?. Colonias coagulasa negativas. Colonias coagulasa positivas. Colonias lactosa positivas. Colonias lactosa negativas.

Un neonato y su madre han desarrollado una infección bacteriana grave poco después del parto, siendo el principal agente infeccioso sospechoso Streptococcus agalactiae. ¿Qué medio podemos utilizar para una identificación rápida?. Medio Sabouraud. Medio Granada. Medio Chapman. Medio Sevilla.

El medio Chapman o manitol salado es: Diferencial para Gram y selectivo para coagulasa negativo. Diferencial para Gram y selectivo para coagulasa positivo. Selectivo para Gram negativas y diferencial para coagulasa positivo o negativo. Selectivo para Gram positivas y diferencial para coagulasa positivo o negativo.

Los medios de transporte…. Sólo protegen a los microorganismos de la muestra durante 2-3 horas, suficiente para su transporte al laboratorio. Se usan para preservar la supervivencia de los microorganismos de la muestra favoreciendo el crecimiento bacteriano mediante la adición de fructosa. Pueden proteger a los microorganismos de la muestra durante 48-72 horas sin refrigeración, facilitando el trabajo en el laboratorio. Se usan para preservar la supervivencia de los microorganismos de la muestra evitando el crecimiento bacteriano mediante la ausencia de nutrientes.

Se han cultivado bacterias en agar Hektoen, ¿qué sabes de este microorganismo al observar la placa de Petri?. Es una gram positiva, lactosa negativa y no productora de sulfuro de hidrógeno. Es una gram positiva, lactosa positiva y productora de sulfuro de hidrógeno. Es una enterobacteria (gram negativa), lactosa positiva, sin precipitado biliar. Es una enterobacteria (gram negativa), lactosa negativa y productora de sulfuro de hidrógeno.

Se han cultivado enterobacterias de una muestra de heces en cultivo SS, ¿a qué género pertenecen las bacterias de esta placa de Petri?. Salmonella sp. Staphylococcus sp. Shigellasp. Strepto coccus sp.

Respecto a la siembra de microorganismos…. Se debe hacer uso del equipo de protección individual pero no es necesario hacer uso de cabinas de seguridad biológica. Es necesario esterilizar el asa de siembra, pasándola por la llama sin que llegue a ponerse incandescente para evitar quemar los microorganismos. Durante la inoculación, las tapas de las placas Petri se mantienen boca abajo en la mesa de trabajo y los tapones de los tubos sobre la gradilla, ambos se flamearán antes de volver a colocarlos en las placas. Hay que evitar golpear bruscamente las asas de siembra sobre el medio o el recipiente así como la expulsión intensa de las pipetas para evitar la formación de microaerosoles.

Selecciona la respuesta INCORRECTA sobre la siembra masiva en superficie. Se puede emplear el asa de Drigalsky para realizarla. Se utiliza para el recuento de colonias (UFC). Se realiza partiendo de una descarga central que se va distribuyendo uniformemente girando la placa. Se realiza dividiendo la placa en cuatro cuadrantes, inoculando la muestra en cada una de ellas y realizando estrías longitudinales.

En medios líquidos: Las bacterias anaerobias estrictas aparecen en todo el tubo menos en el segmento más superficial. Las bacterias microaerófilas aparecen en todo el tubo, más concentradas en la superficie. Las bacterias aerobias aparecen sólo al fondo del tubo. Las bacterias anaerobias facultativas aparecen en toda la longitud del tubo.

En la siguiente microfotografía observamos…. Un parásito presente en las heces teñido con lugol. Una ameba de una gota de agua en fresco. Un hongo teñido con tinta china. Un ciliado normal de la microbiota intestinal.

En esta placa (medio Chapman) observamos colonias coagulasa positiva con un crecimiento excelente, ¿qué bacteria podría estar creciendo?. Streptococcus pneumoniae. Staphylococcus epidermicus. Staphylococcus aureus. Streptococcus viridans.

El método químico MALDI-TOF se basa en: En que cada especie de microorganismo tiene un perfil o huella química única. En que cada proteína se une a una determina especie de microorganismo. En que cada especie tiene una información genética diferente que es detectada por el equipo de MALDI-TOF. En que cada especie de microorganismo tiene un comportamiento metabólico diferente frente a diferentes pruebas bioquímicas.

En relación a las galerías comerciales para identificar microorganismos, selecciona la respuesta incorrecta: Pueden utilizar antibióticos para observar la resistencia, que puede ayudar a la identificación. Se realizan muchas pruebas bioquímicas a la vez. Son muy complejos de interpretar, por lo que se necesita una gran preparación para hacerlo. Se utilizan con mucha frecuencia en los laboratorios actuales.

En relación a las pruebas de oxidación-fermentación, selecciona la respuesta incorrecta: Determina si los microorganismos utilizan o no hidratos de carbono para su metabolismo. Determina si los microorganismos utilizan la vía oxidativa o fermentativa para obtener energía. Se utilizan dos tubos, uno abierto y otro cerrado (atmósfera anaerobia). Se utiliza un medio rico en glucosa.

En relación al método MALDI-TOF: Debido a su bajo precio se usa en todos los laboratorios. Es un método con mucha precisión, pero necesita grandes cantidades de muestra para trabajar. Es un método con mucha precisión, pero muy lento para emitir resultados. Es un método preciso, rápido y permite trabajar con pequeñas cantidades de muestra.

La imagen de la prueba KLIGER se puede corresponder con: Un no fermentador de lactosa y la glucosa. Un fermentador de glucosa. Un fermentador de lactosa. Un productor de CO2.

La prueba de la oxidasa...: Es una prueba rápida, con lectura de < 6 h. Es una prueba de lectura de > 18 h. Se puede leer cuando se quiera. Es una prueba de lectura inmediata.

La prueba de urea positiva es de color: Verde. Azul. Rosa. Amarillo.

La siguiente imagen muestra el resultado de una prueba de la catalasa. Indica el resultado que se deduce a partir de la imagen: La prueba no ha salido bien. Catalasa negativa. Catalasa positiva. Falso negativo.

Señala la respuesta incorrecta. Las primeras pruebas que se realizan en un laboratorio para aproximar la identificación de un microorganismo son: Tinción de Gram y observación en microscopio. Observación de las características macroscópica de las colonias bacterias, como son la forma, color, textura, etc. Observación del tipo de hemolisis que genera en medio de agar sangre. Prueba de la ureasa.

Para una correcta identificación es imprescindible: Hacer el cultivo a 37ºC durante más de 24h. Hacer la tinción de Gram. Realizar las pruebas de la catalasa u oxidasa. Mantener la pureza de la cepa que se quiere identificar.

¿Cuál de las siguientes características no es típica de familia Enterobacteriaceae?. Son bacilos Gram. Son difíciles de cultivar. Fermentan la lactosa. Son nitrato positivas.

¿Cuál de las siguientes características no pertenece a Nisseria?. Se agrupan como diplococos con aspecto de granos de café. Son oxidasa +. Son catalasa –. Son cocos Gram.

¿Para qué se utiliza la clasificación de Lancefield?. Para diferenciar entre los diferentes tipos de estafilococos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de estreptococos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de bacilos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de enterococos.

¿Qué pruebas caracterizan a Enterococcus faecium y E. faecalis?. PYR +. Todas las respuestas son correctas. Bilis-esculina +. Catalasa -.

Algunas de las características más importantes de los cocos son: Tienen forma alargada y se les suele observar formando agrupaciones. Tienen forma esférica y se les suele observar solos, como células individuales. Tienen forma esférica y se les suele observar formando agrupaciones. Tienen forma alargada y se les suele observar solos, como células individuales.

El medio BCYE es específico para el crecimiento de: Bordetella. Clostridium. Haemophilus. Legionella.

Las bacterias pertenecientes a los géneros Rickettsia, Chlamydia y Mycoplasma: No suelen diagnosticarse por métodos genotípicos las infecciones que causan. No suelen diagnosticarse por serología las infecciones que causan. Se aíslan bien en cultivos habituales. Son intracelulares.

Las técnicas de aislamiento se basan en: En trabajar en cabinas de bioseguridad para evitar que los patógenos peligrosos salgan del laboratorio. En técnicas de siembra en masa en superficies de placas de Petri con medio de cultivo. En las técnicas de siembra por agotamiento y las de diluciones seriadas. En seleccionar genéticamente las bacterias que quieres estudiar y posteriormente cultivarla en el medio adecuado.

Listeria spp es: Cocos Gram+ aerobios. Bacilos Gram+ aerobios. Bacilos Gram+ anaerobios. Cocos Gram+ anaerobios.

Señala la opción correcta sobre S. aureus: Fermenta el manitol. Todas las respuestas son correctas. Crece formando colonias beta-hemolíticas en agar sangre. Coagulasa positiva.

El enzimoinmunoanálisis: No se puede utilizar para detectar infecciones pasadas. Se produce un cambio de color al interaccionar con el sustrato. Se realiza sobre placas de acrilamida. Se basa en la precipitación.

La membrana de nitrocelulosa se usa en: Técnicas de aglutinación. Enzimoinmunoanálisis. Inmunocromatografía. Inmunofluorescencia.

El termociclador se usa en biología molecular para: Centrifugar. Extracción de ADN. No se usa para realizar PCR. Amplificación de ADN.

En el proceso de secuenciación: Todos los nucleótidos terminadores se marcan con el mismo fluorocromo. Se usan terminadores de cadena. Ninguna respuesta es correcta. No se realiza electroforesis capilar.

La seroconversión (señala la opción falsa). Requiere tomar dos muestras de sangre (suero), una en la etapa aguda y la otra, al menos, 15 días después. Es una manera de detectar la formación anticuerpos frente a una infección vírica. Tan sólo es necesario recoger una única muestra de suero del paciente. Puede realizarse estudiando IgM e IgG.

La técnica LiPA: Es un ensayo de hibridación. Es una técnica rápida de detección de antígeno. No conlleva una desnaturalización. No permite identificar distintas especies de micobacterias.

La base GenBank: Todas las respuestas son correctas. Contiene una sección de taxonomía. Es de acceso público. Incluye información y secuencias de más de 160.000 microorganismos.

La RT- PCR: Es una reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa. Es una PCR múltiple. Se lleva a cabo en dos rondas de amplificación para aumentar la sensibilidad de detección. Ha quedado anticuada.

La IgG aparece en: En la primera semana de enfermedad. Fases agudas de la enfermedad. No es útil en el diagnóstico serológico. Fases convalecientes de la enfermedad.

Los arrays son: Bases de adenina. Cebadores. Primers. Sondas.

Si la concentración de antimicrobiano en el lugar de infección es inferior a la CMI necesaria para inhibir el microorganismo, estamos hablando de: Ninguna respuesta es correcta. Microorganismos sensibles. Microorganismos resistentes.

Las cefalosporinas son antibióticos que pertenecen al grupo de: Aminoglicósidos. Antituberculosos. Betalactámicos. Tetraciclinas.

Para la realización de un antibiograma mediante el método de disco-placa necesitamos estandarizar el inóculo bacteriano a una escala de: 0,5 Mc Farland. 1 Mc Farland. 1,5 Mc Farland. 0,05 Mc Farland.

El método que nos permite determinar la CMB, además de la CMI, es: Método de difusión en medio sólido. Ninguna respuesta es correcta. Método de macrodilución en caldo. Método del Épsilon test.

Cuando en ocasiones se necesita un incremento en la dosis habitual de antibiótico para que éste sea eficaz, sin producir toxicidad, estamos hablando de: Microorganismos sensibles. Ninguna respuesta es correcta. Microorganismos se sensibilidad intermedia. Microorganismos resistentes.

El sistema Micro-Scan es un método: De difusión en medio sólido (disco-placa). Automatizado que permite la identificación y el estudio de la sensibilidad antimicrobiana. Ninguna respuesta es correcta.

La menor concentración de antibiótico que mata por lo menos al 99,9% del inóculo original se define como: CMI. CMB. Ninguna respuesta es correcta. Inóculo 0,5 Mc Farland.

Si empleamos el medio Wilkins-Chalgren para realizar un antibiograma por dilución en medio sólido, estaremos estudiando la sensibilidad antimicrobiana de: Bacterias aerobias estrictas. Bacterias anaerobias. coli. Micobacterias.

La técnica que permite leer el diámetro de los halos obtenidos alrededor de discos impregnados con antibióticos se llama: Antibiograma por dilución en medio líquido. Método de difusión en medio sólido. Método de dilución en medio sólido. Métodos automatizados.

El aciclovir es…. Un antituberculoso. Un antifúngico. Un antiviral. Un glucopéptido.

La membrana plasmática de los hongos, es: Rica en esteroles. Rica en celulosa. Ninguna respuesta es correcta. Rica en cloroplastos.

Señala la respuesta incorrecta en relación a los hongos: Son células eucariotas. Poseen ribosomas 70S. Son organismos heterótrofos. Poseen quitina en su pared celular.

Señala cuál de los siguientes hongos es un dermatofito: Candida albicans. Trichophyton. Saccharomyces cerevisiae. Aspergillus fumigatus.

Si al realizar la técnica de Scotch o lactofenol a un hongo filamentoso se observan hifas no septadas y rizoides, podemos estar hablando de: Orden Mucorales. Candida albicans. Phylum Basidiomycota. Aspergillus fumigatus.

Hongos como Epidermophyton spp. causan: Infecciones pulmonares graves en VIH. Infecciones en la piel, por ejemplo tiñas. Candidiasis en boca o vagina. Daño hepático por liberar micotoxinas.

¿Cuál de los siguientes medios de cultivo para hongos se considera especializado?: Agar Saboureaud con cicloheximida. Agar BHI con sangre. Agar Saboureaud con cloranfenicol y gentamicina. Agar patata-zanahoria.

Señala cuál de las siguientes técnicas de identificación de hongos sirve para visualizar estructuras reproductoras: Ninguna respuesta es correcta. Prueba de filamentación. Montaje húmedo de KOH. Técnica de Scotch (o lactofenol).

Señala qué infección fúngica puede ser diagnosticada definitivamente por examen microscópico, sin necesidad de esperar el resultado del cultivo: Infecciones pulmonares. Ninguna respuesta es correcta. Pitiriais versicolor. Meningitis.

El medio Mycosel: Es un medio general. Es un medio selectivo. Es un medio diferencial. Es un medio especializado.

Un micelio cenocítico es aquél que: Se compone de hifas no septadas. Se compone de hifas septadas. Se reproduce por esporas. Se reproduce sexualmente.

Señala la afirmación falsa sobre protozoos: La forma vegetativa es el trofozoíto. Son móviles. Son organismos heterótrofos. Son poco sensibles a agentes físico-químicos.

Señala la opción incorrecta: Entamoeba histolytica tiene pseudópodos. Cryptosporidium spp. forma ooquistes. Plasmodium es un protozoo flagelado. Leishmania spp. es un protozoo flagelado.

La imagen siguiente después del centrifugado para concentrar heces se corresponde con: Técnica de concentración por flotación. Técnica de Baermann. Ninguna. Técnica de Ritchie.

Para detectar Trichomonas vaginalis podemos: Recoger un hisopo de exudado vaginal. Sacar muestra de sangre. Utilizar un examen de heces. Realizar una extracción de LCR.

Para que se utiliza el test de Graham: Para detectar Plasmodium. Para el diagnóstico de Oxiuros. Para visualizar entamoeba histolytica. Para la detección de Giardia lamblia.

La tinción de Ziehl-Neelsen tiñe los ooquistes de: Rosa fucsia. De verde. De amarillo. De azul.

Las técnicas de concentración de heces que se basan en usar una solución más densa que lo que se pretende recoger (huevos, protozoos, quistes) son: De coloración. De tropismo. De sedimentación. De flotación.

Cuando hablamos de Coccidios, nos referimos a: Amebas. Phylum Apicomplexa. Flagelados. Ciliados.

Schistosoma es un…. Protozoo. Helminto. Ameba. Artrópodo.

El medio NNN sirve para aislar: Strongyloides. Leismania. Trichomonas. Necator.

Señala en qué medio no se puede llevar a cabo el aislamiento de un virus: Animales de experimentación. Embriones animales. Medio nutritivo carente de células. Cultivos celulares.

Señala la respuesta incorrecta sobre los retrovirus: Sintetizan una cadena de ADN a partir de ARN. No necesitan transcriptasa inversa, sólo ARN polimerasa. Su genoma está compuesto de ARN. Contienen transcriptasa inversa.

Los virus Influenzae, Parainfluenzae y Virus Respiratorio Sincitial se buscan en: Sangre. Heces. Muestras de LCR. Muestras respiratorias.

La nucleocápside…: Está compuesta por ácidos nucleicos + cubierta proteica. La contienen sólo los virus de ADN bicatenario. La contienen sólo los virus desnudos. La contienen sólo los virus envueltos.

Para detectar ácidos nucleicos virales en una muestra podemos realizar: Mirar por el microscopio. Test de Graham. Técnicas de hibridación (con sondas) de ácidos nucleicos. ELISA.

Señala la respuesta incorrecta: Según la simetría que adoptan las cápsides virales, los virus se dividen en helicoidales e icosaédricos. Algunos virus no tienen envuelta lipídica. Si un virus contiene a la vez ADN y ARN en su genoma se llama mixto. Los ácidos nucleicos de un virus pueden tener estructura monocatenaria o bicatenaria.

Señala la respuesta incorrecta: En el cultivo Shell vial pueden crecer virus. Los test inmunocromatográficos no sirven para detectar virus. En la práctica diaria no se utiliza la microscopía electrónica. La viremia se asocia con la fase aguda de la enfermedad y puede preceder al desarrollo de los síntomas.

Ante una sospecha de VHS-1/VHS-2 genital en un paciente adulto, se debe recoger: Un exudado de las lesiones genitales en medio de virus TVM. Heces en envase estéril. Un esputo en envase estéril. Un exudado de las lesiones genitales en torunda seca.

Señala la respuesta correcta sobre el tamaño de los virus: De 20-400 nm. Entre 300-400 nm. Son mayores de 400 nm. Mayores que las bacterias.

Para detectar el crecimiento de un virus en un cultivo celular podemos: Observar al microscopio. Detectar con Ac marcados con fluorescencia los antígenos víricos. No me sirve con visualizar el efecto citopático. Hacer PCR.

Prueba bioquímica diferida: Hidrólisis de hipurato. Indol. Ureasa. Catalasa. Reacción de Voges-Proskauer.

Prueba para detectar la actividad de la enzima triptófano desaminasa. Prueba rápida. LAP. Medio KLIGLER. Prueba diferida. Prueba inmmediata.

Prueba de sensibilidad para detectar S. saprophyticus. Optoquina. Bacitracina. Malonato. Oxidasa. Novobiocina.

Técnica rápida de detección de antígenos. Inmunocromatografía. qPCR. Secuenciación. Métodos de hibridación. PCR.

Uso de partículas de látex en la detección de antígenos. Técnica de aglutinación. Inmunocromatografía. Inmunofluorescencia. Enzimoinmunoanálisis. Contrainmunoelectroforesis.

ELISA. Inmunocromatografía. Contrainmunoelectroforesis. Inmunofluorescencia. Enzimoinmunoanálisis. Técnica de aglutinación.

Agente que inhibe el crecimiento bacteriano pero no destruye la bacteria. Penicilina. Bacteriolítico. Clavaminas. Bactericida. Bacteriostático.

Antibiótico que bloquea la actividad ADN girasa. Macrólidos. Vacomicina. Gentamicina. Norfloxacino. Penicilina.

Método de realización de antibiogramas que es una expansión de la técnica de difusión en disco. Método de microdilución. Método Mueller-Hinton. Método Kirby-Bauer. Método Epsilon test. Método de dilución agar.

Virus: Pueden crecer en cualquier medio (incluido inerte). Sí pueden autorreplicarse por ellos mismos. Celulares. Un virus icosaédrico está compuesto por 12 capsómeros. El material genético es siempre ADN.

Componente de los Virus: Cápsides. Retículo endoplasmático. Membrana plasmática. Mitocondrias. Todos los virus presentan ADN monocatenario.

Fase ciclo lítico irreversible y que depende de la temperatura y del Ph: Fase de proliferación. Fase de ensamblaje. Fase de penetración. Fase de adsorción. Fase de lisis.

Secuencia de ARN circular que interfiere con el ARN celular: Viroides. Giroides. Transposones. Virusoidese. Priones.

Ectoparasitos: Según interes clínico se pueden clasificar en tres tipos: Hemoparásitos / Enteroparásitos / Histoparásitos. Un ejemplo son los helmintos. Pueden ser patógenos o no patógenos. Son todos parásitos obligados. Parasitan el interior del hospedador.

Gusano plano: Taenia solium. Pediculus humanus. Fasciola hepatica. Ascaris lumbricoides. Cestodos.

Técnica de Ritchie: Se emplea lugol. Se emulsionan las heces. Se emplea sólo para protozoos. Emplea mertiolato-yodo-formalina. Se centrifuga con formol y éter.

Prueba más usada para el diagnóstico de Filariasis linfática: Muestra nasofaringea. Líquido cefalorraquideo. Exudado vaginal. Muestra de heces. Muestra de sangre.

Phylum Ascomycota: Trichophyton. Seta venenosa. Basidiomycota. Zygomycota. Moho negro.

Medio de cultivo selectivo para hongos: Medio CLED. Agar patata – zanahoria. Agar Sabouraud. Rosa Bengala con Cloranfenicol. BHI.

Se está realizando una identificación fenotípica de una bacteria, ¿Qué puedes saber sobre la bacteria tras realizar una tinción de Gram, un cultivo en agar sangre y la prueba de la catalasa?. Es un coco gram negativo, concretamente un estreptococo, catalasa negativo y beta hemolítico. Es un coco gram positivo, concretamente un estreptococo, catalasa positivo y alfa hemolítico. Es un coco gram positivo, concretamente un estreptococo, catalasa negativo y alfa hemolítico. Es un coco gram negativo, concretamente un estafilococo, catalasa negativo y beta hemolítico.

Sabemos que el microorganismo anterior es anaerobio facultativo y que se ha obtenido de una muestra de un paciente con neumonía. ¿Cuál es el microorganismo del que podemos sospechar?. Enterococcus faecalis. Streptococcus pneumoniae. Staphylococcus aureus. Streptococcus mutans.

Se está realizando una identificación fenotípica de una bacteria, ¿qué puedes saber sobre la bacteria tras realizar una tinción de Gram, la prueba de la ureasa y la prueba de la oxidasa?. Es un bacilo gram negativo, ureasa negativo y oxidasa negativo. Es un bacilo gram positivo, ureasa positivo y oxidasa negativo. Es un bacilo gram negativo, ureasa negativo y oxidasa positivo. Es un bacilo gram negativo, ureasa positivo y oxidasa positivo.

Sabiendo que la muestra anterior se ha tomado de un paciente con gastritis y úlcera duodenal y descartando que sea una Enterobacteria, ¿de qué microorganismo podemos sospechar?. Salmonella enterica. Bacillus subtilis. Escherichia coli. Helicobacter pylori.

Se realiza la prueba de la coagulasa sobre un estafilococo, ¿de qué especie estamos hablando si el resultado es positivo?. Staphylococcus epidermidis. Streptococcus pyogenes. Streptococcus mutans. Staphylococcus aureus.

¿Qué representa la imagen? ¿Qué tipo de identificación permite realizar?. Una galería comercial, permite realizar una interpretación fenotípica mediante pruebas bioquímicas. Un microarray de DNA, permite realizar una interpretación fenotípica mediante pruebas bioquímicas. Una galería comercial, permite realizar una interpretación genotípica mediante pruebas químicas. Un microarray de DNA, permite realizar una interpretación genotípica mediante hibridación.

Indica la opción incorrecta respecto a la espectrometría de masas MALDI-TOF: Se usa para la identificación fenotípica de distintos tipos de microorganismos. Es un método químico de identificación fenotípica. Se basa en que cada microorganismo deja un perfil característico de sus proteínas. Únicamente permite la identificación fenotípica de bacterias.

Si observamos un diplococo gram negativo intracelular en células epiteliales de un frotis vaginal debemos sospechar de: Trichomonas vaginalis. Neisseria gonorrhoeae. Treponema pallidum. Neisseria meningitidis.

Las Enterobacterias son: Bacilos gram negativos, aerobios estrictos, oxidasa positivo y lactosa positivo. Bacilos gram positivos, aerobios estrictos, oxidasa negativo y lactosa positivo. Bacilos gram negativos, anaerobios facultativos, oxidasa negativo y lactosa positivo. Bacilos gram positivos, anaerobios facultativos, oxidasa positivo y lactosa negativo.

Las pruebas de inmunocromatografía son: Pruebas de identificación genotípicas de detección de antígenos mediante cromatografía, en la que la muestra migra a través de una membrana de nitrocelulosa. Pruebas de identificación fenotípicas de detección de antígenos mediante cromatografía, en la que la muestra migra a través de gel de agarosa. Pruebas de identificación genotípicas de detección de anticuerpos del hospedador, mediante cromatografía en una membrana de nitrocelulosa. Pruebas serológicas de diagnóstico indirecto, basado en la aparición de las inmunoglobulinas G y M.

¿Qué técnica elegirías si tuvieras que realizar un diagnóstico genotípico mediante la identificación del ADN del microorganismo?. ELISA. Amplificación por PCR. Inmunofluorescencia. Citometría de flujo.

¿Qué tipo de prueba ha realizado este test? Interpreta los resultados. Test de anticuerpos de un paciente en fase aguda de la infección. Test de anticuerpos de un paciente convaleciente. Test serológico de un paciente en fase aguda de la infección. Test serológico de un paciente que ha pasado la infección.

Cuando la concentración máxima de un antimicrobiano que se puede localizar en el lugar de la infección no es suficiente para eliminar al microorganismo, hablamos de: Microorganismos resistentes. Microorganismos susceptibles. Microorganismos sensibles. Microorganismos ultrarresistentes.

¿Qué representa la C.M.I.?. La cantidad mínima de antimicrobiano que es capaz de inhibir el crecimiento de un microorganismo. La cantidad mínima necesaria de antimicrobiano para matar un determinado microorganismo. La cantidad máxima de antimicrobiano que se puede administrar con seguridad en el paciente. La concentración mínima de antimicrobiano que se alcanza en plasma tras la administración.

¿Qué método de antibiogramas muestran las imágenes?. Métodos de dilución: a) Épsilon test, b) Kirby-Bauer. Métodos de dilución: a) Kirby-Bauer, b) Épsilon test. Métodos de difusión: a) Épsilon test, b) Kirby-Bauer. Métodos de difusión: a) Kirby-Bauer, b) Épsilon test.

¿En qué método se basan los paneles comerciales, como Micro-Scan, para el estudio de la sensibilidad microbiana a antibióticos?. Método de difusión. Método disco-placa. Método de microdilución. Método de macrodilución.

Los hongos son: organismos eucariotas autótrofos, cuyas células presentan una pared celular quitinosa. organismos eucariotas autótrofos, cuyas células presentan una pared celular de celulosa. organismos eucariotas heterótrofos, cuyas células presentan una pared celular quitinosa. organismos eucariotas heterótrofos, cuyas células presentan una pared celular de celulosa.

La mayoría de las mohos que producen masas de hifas sobre pan, fruta y otros alimentos deteriorados pertenecen al: Phylum Ascomycota. Phylum Glomeromycota. Phylum Zygomycota. Phylum Basidiomycota.

Indica el tipo de microorganismo que podemos observar en esta imagen: Un hongo del phylum Basidiomycota, concretamente un hongo unicelular que forma pseudohifas. Un hongo del phylum Basidiomycota, concretamente un hongo pluricelular que forma hifas sincitiales. Un hongo del phylum Ascomycota, concretamente un hongo pluricelular que forma hifas septadas. Un hongo del phylum Ascomycota, concretamente una levadura (unicelular) que forma pseudohifas.

Los basidiomicetos: No producen patologías en el ser humano, pero pueden producir toxinas que causen envenenamiento. Presentan las esporas reunidas en ascas y conidios. Presentan hifas cenocíticas (no septadas). Son los principales causantes de micosis en humanos.

Medio de cultivo clásico y general para realizar la descripción morfológica de la mayoría de los hongos. Agar Mycosel}. Agar glucosado de Sabouraud (AGS). Agar cromógeno CandiSelect. Agar cerebro-corazón con sangre (BHI).

¿Qué procedimiento podemos utilizar para observar las formas de reproducción de un hongo al microscopio teñido con azul de lactofenol?. Técnica patata-zanahoria. Técnica de Scotch. Técnica cromogénica. Técnica de Chapman.

Clasifica los siguientes parásitos protozoarios: 1) ameba, 2)coccidio, 3) flagelado. 1) flagelado, 2) ciliado, 3) ameba. 1) ameba, 2) ciliado, 3) flagelado. 1) ciliado, 2) ameba, 3)coccidio.

Clasifica el siguiente parásito: Protozoo, ameba. Metazoo, Helminto, Trematodo. Metazoo, Helminto, Cestodo. Protozoo, Helminto, Nematodo.

Clasifica el siguiente parásito: Metazoo, Helminto, Nematodo. Metazoo, Helminto, Cestodo. Metazoo, Helminto, Trematodo. Metazoo, Artrópodo, Insecto.

¿Cuál es la técnica más habitual para análisis de heces en casos de parasitosis intestinales?. Extracción de LCR. Técnica de Ritchie. Técnica de Baermann. Concentración por centrifugación.

Prueba específica para detectar “lombrices” intestinales (oxiuriasis): Método MIF. Test de Graham. Técnica de Ritchie. Técnica de Baermann.

Indica la opción correcta respecto a los virus: Son entidades biológicas acelulares compuestas por ARN y lipoproteínas, a veces con estructuras anejas. Son parásitos intracelulares facultativos. Son moléculas conjugadas de ADN y proteínas que infectan células, por lo que se dice que son parásitos intracelulares obligados. Son entidades biológicas acelulares compuestos esencialmente por material genético y una cápside proteica, aunque pueden presentar otros elementos como una envuelta. Son parásitos intracelulares obligados. Son microorganismos vivos muy pequeños compuestos esencialmente por material genético y una envoltura lipoproteica. Son parásitos intracelulares obligados.

¿Qué representa la siguiente figura?. El ciclo lítico. El ciclo lisogénico. La conjugación bacteriana. El ciclo celular.

¿Cómo se denomina y para qué se utiliza el siguiente material?. Frascos de Roux, para la producción y el mantenimiento de líneas celulares. Matraces Erlenmeyer, para cultivos celulares en suspensión. Tubos de Shell-vial, para la producción y el mantenimiento de líneas celulares. Frascos de Roux, para la técnica de cultivo celular de Shell-vial.

Para la tinción de parásitos sanguíneos se utiliza: Verde Malaquita. Giemsa. Hematoxilina. Auramina-rodamina.

Diplococos gram negativos, oxidasa positivo, intracelulares facultativos que se presentan en infecciones de transmisión sexual: Neisseria gonorrhoeae. Chlamydia trachomatis. Trichomonas vaginalis. Escherichia coli.

Clasifica el siguiente parásito: Protozoo, ciliado. Protozoo, flagelado. Metazoo, ameba. Metazoo, trematodo.

Los virus son: Entidades biológicas compuestas por ARN y lipoproteínas. Entidades biológicas compuestas por material genético y una cápside proteica. Parásitos intracelulares facultativos. Moléculas conjugadas de ADN y proteínas.

¿Cómo se denomina el siguiente material?. Frascos de Roux. Tubos de Shell-vial. Matraces Erlenmeyer. Placa Petri.