Microbiología clínica 1-12

El método químico MALDI-TOF se basa en: En que cada especie de microorganismo tiene un perfil o huella química única. En que cada proteína se une a una determina especie de microorganismo. En que cada especie tiene una información genética diferente que es detectada por el equipo de MALDI-TOF. En que cada especie de microorganismo tiene un comportamiento metabólico diferente frente a diferentes pruebas bioquímicas.

En relación a las galerías comerciales para identificar microorganismos, selecciona la respuesta incorrecta: Pueden utilizar antibióticos para observar la resistencia, que puede ayudar a la identificación. Se realizan muchas pruebas bioquímicas a la vez. Se utilizan con mucha frecuencia en los laboratorios actuales. Son muy complejos de interpretar, por lo que se necesita una gran preparación para hacerlo.

En relación a las pruebas de oxidación-fermentación, selecciona la respuesta incorrecta: Se utiliza un medio rico en glucosa. Determina si los microorganismos utilizan o no hidratos de carbono para su metabolismo. Se utilizan dos tubos, uno abierto y otro cerrado (atmósfera anaerobia). Determina si los microorganismos utilizan la vía oxidativa o fermentativa para obtener energía.

En relación al método MALDI-TOF: Es un método con mucha precisión, pero necesita grandes cantidades de muestra para trabajar. Es un método preciso, rápido y permite trabajar con pequeñas cantidades de muestra. Debido a su bajo precio se usa en todos los laboratorios. Es un método con mucha precisión, pero muy lento para emitir resultados.

La imagen de la prueba KLIGER se puede corresponder con: Un fermentador de lactosa. Un productor de CO2. Un fermentador de glucosa. Un no fermentador de lactosa y la glucosa.

La prueba de la oxidasa...: Se puede leer cuando se quiera. Es una prueba rápida, con lectura de < 6 h. Es una prueba de lectura inmediata. Es una prueba de lectura de > 18 h.

La prueba de urea positiva es de color: Rosa. Verde. Amarillo. Azul.

La siguiente imagen muestra el resultado de una prueba de la catalasa. Indica el resultado que se deduce a partir de la imagen: Catalasa negativa. Falso negativo. La prueba no ha salido bien. Catalana positiva.

Señala la respuesta incorrecta. Las primeras pruebas que se realizan en un laboratorio para aproximar la identificación de un microorganismo son: Tinción de Gram y observación en microscopio. Prueba de la ureasa. Observación del tipo de hemolisis que genera en medio de agar sangre. Observación de las características macroscópica de las colonias bacterias, como son la forma, color, textura, etc.

Para una correcta identificación es imprescindible: Hacer el cultivo a 37ºC durante más de 24h. Realizar las pruebas de la catalasa u oxidasa. Mantener la pureza de la cepa que se quiere identificar. Hacer la tinción de Gram.

Cuál de las siguientes características no es típica de familia Enterobacteriaceae?. Son bacilos Gram-. Son nitrato positivas. Fermentan la lactosa. Son difíciles de cultivar.

Cuál de las siguientes características no pertenece a Nisseria?. Son catalasa –. Son oxidasa +. Se agrupan como diplococos con aspecto de granos de café. Son cocos Gram-.

¿Para qué se utiliza la clasificación de Lancefield?. Para diferenciar entre los diferentes tipos de bacilos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de estafilococos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de estreptococos. Para diferenciar entre los diferentes tipos de enterococos.

pregunta ¿Qué pruebas caracterizan a Enterococcus faecium y E. faecalis?. PYR +. Bilis-esculina +. Catalasa -. Todas las respuestas son correctas.

Algunas de las características más importantes de los cocos son: Tienen forma esférica y se les suele observar formando agrupaciones. Tienen forma alargada y se les suele observar formando agrupaciones. Tienen forma esférica y se les suele observar solos, como células individuales. Tienen forma alargada y se les suele observar solos, como células individuales.

El medio BCYE es específico para el crecimiento de: Bordetella. Haemophilus. Clostridium. Legionella.

Las bacterias pertenecientes a los géneros Rickettsia, Chlamydia y Mycoplasma: No suelen diagnosticarse por métodos genotípicos las infecciones que causan. Se aíslan bien en cultivos habituales. Son intracelulares. No suelen diagnosticarse por serología las infecciones que causan.

Las técnicas de aislamiento se basan en: En técnicas de siembra en masa en superficies de placas de Petri con medio de cultivo. En las técnicas de siembra por agotamiento y las de diluciones seriadas. En seleccionar genéticamente las bacterias que quieres estudiar y posteriormente cultivarla en el medio adecuado. En trabajar en cabinas de bioseguridad para evitar que los patógenos peligrosos salgan del laboratorio.

Listeria spp es: Bacilos Gram+ aerobios. Cocos Gram+ aerobios. Bacilos Gram+ anaerobios. Cocos Gram+ anaerobios.

Señala la opción correcta sobre S. aureus: Crece formando colonias beta-hemolíticas en agar sangre. Coagulasa positiva. Todas las respuestas son correctas. Fermenta el manitol.

El enzimoinmunoanálisis: Se basa en la precipitación. No se puede utilizar para detectar infecciones pasadas. Se realiza sobre placas de acrilamida. Se produce un cambio de color al interaccionar con el sustrato.

La membrana de nitrocelulosa se usa en: Inmunofluorescencia. Enzimoinmunoanálisis. Inmunocromatografía. Técnicas de aglutinación.

El termociclador se usa en biología molecular para: Amplificación de ADN. No se usa para realizar PCR. Extracción de ADN. Centrifugar.

En el proceso de secuenciación: Se usan terminadores de cadena. Ninguna respuesta es correcta. Todos los nucleótidos terminadores se marcan con el mismo fluorocromo. No se realiza electroforesis capilar.

La seroconversión (señala la opción falsa). Es una manera de detectar la formación anticuerpos frente a una infección vírica. Tan sólo es necesario recoger una única muestra de suero del paciente. Puede realizarse estudiando IgM e IgGw. Requiere tomar dos muestras de sangre (suero), una en la etapa aguda y la otra, al menos, 15 días después.

La técnica LiPA: No conlleva una desnaturalización. Es un ensayo de hibridación. No permite identificar distintas especies de micobacterias. Es una técnica rápida de detección de antígeno.

La base GenBank: Es de acceso público. Contiene una sección de taxonomía. Todas las respuestas son correctas. Incluye información y secuencias de más de 160.000 microorganismos.

La RT- PCR: Se lleva a cabo en dos rondas de amplificación para aumentar la sensibilidad de detección. Es una reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa. Es una PCR múltiple. Ha quedado anticuada.

La IgG aparece en: Fases convalecientes de la enfermedad. No es útil en el diagnóstico serológico. Fases agudas de la enfermedad. En la primera semana de enfermedad.

Los arrays son: Cebadores. Bases de adenina. Sondas. Primers.

Si la concentración de antimicrobiano en el lugar de infección es inferior a la CMI necesaria para inhibir el microorganismo, estamos hablando de: Microorganismos resistentes. Microorganismos sensibles. Las respuestas a y b son correctas. Ninguna respuesta es correcta.

Las cefalosporinas son antibióticos que pertenecen al grupo de: Betalactámicos. Antituberculosos. Tetraciclinas. Aminoglicósidos.

Para la realización de un antibiograma mediante el método de disco-placa necesitamos estandarizar el inóculo bacteriano a una escala de: 0,5 Mc Farland. 0,05 Mc Farland. 1 Mc Farland. 1,5 Mc Farland.

El método que nos permite determinar la CMB, además de la CMI, es: Método de macrodilución en caldo. Ninguna respuesta es correcta. Método de difusión en medio sólido. Método del Épsilon test.

Cuando en ocasiones se necesita un incremento en la dosis habitual de antibiótico para que éste sea eficaz, sin producir toxicidad, estamos hablando de: Ninguna respuesta es correcta. Microorganismos sensibles. Microorganismos se sensibilidad intermedia. Microorganismos resistentes.

El sistema Micro-Scan es un método: Las respuestas a y b son correctas. De difusión en medio sólido (disco-placa). Ninguna respuesta es correcta. Automatizado que permite la identificación y el estudio de la sensibilidad antimicrobiana.

La menor concentración de antibiótico que mata por lo menos al 99,9% del inóculo original se define como: Ninguna respuesta es correcta. Inóculo 0,5 Mc Farland. CMI. CMB.

Si empleamos el medio Wilkins-Chalgren para realizar un antibiograma por dilución en medio sólido, estaremos estudiando la sensibilidad antimicrobiana de: Bacterias aerobias estrictas. Micobacterias. coli. Bacterias anaerobias.

La técnica que permite leer el diámetro de los halos obtenidos alrededor de discos impregnados con antibióticos se llama: Métodos automatizados. Método de dilución en medio sólido. Antibiograma por dilución en medio líquido. Método de difusión en medio sólido.

El aciclovir es…. Un antituberculoso. Un antifúngico. Un antiviral. Un glucopéptido.

La membrana plasmática de los hongos, es: Rica en esteroles. Rica en celulosa. Rica en cloroplastos. Ninguna respuesta es correcta.

Senala la respuesta incorrecta en relación a Los hongos: Son organismos heterótrofos. Poseen ribosomas 70S. Poseen quitina en su pared celular. Son células eucariotas.

Señala cuál de los siguientes hongos es un dermatofito: Aspergillus fumigatus. Candida albicans. Trichophyton. Saccharomyces cerevisiae.

Si al realizar la técnica de Scotch o lactofenol a un hongo filamentoso se observan hifas no septadas y rizoides, podemos estar hablando de: Aspergillus fumigatus. Phylum Basidiomycota. Candida albicans. Orden Mucorales.

Hongos como Epidermophyton spp. causan: Daño hepático por liberar micotoxinas. Candidiasis en boca o vagina. Infecciones pulmonares graves en VIH. Infecciones en la piel, por ejemplo tiñas.

Cuál de los siguientes medios de cultivo para hongos se considera especializado?: Agar Saboureaud con cloranfenicol y gentamicina. Agar Saboureaud con cicloheximida. Agar patata-zanahoria. Agar BHI con sangre.

Señala cuál de las siguientes técnicas de identificación de hongos sirve para visualizar estructuras reproductoras: Técnica de Scotch (o lactofenol). Prueba de filamentación. Ninguna respuesta es correcta. Montaje húmedo de KOH.

Señala qué infección fúngica puede ser diagnosticada definitivamente por examen microscópico, sin necesidad de esperar el resultado del cultivo: Infecciones pulmonares. Meningitis. Pitiriais versicolor. Ninguna respuesta es correcta.

El medio Mycosel: Es un medio diferencial. Es un medio general. Es un medio especializado. Es un medio selectivo.

Un micelio cenocítico es aquél que: Se compone de hifas septadas. Se reproduce por esporas. Se compone de hifas no septadas. Se reproduce sexualmente.

Señala la afirmación falsa sobre protozoos: Son poco sensibles a agentes físico-químicos. Son organismos heterótrofos. Son móviles. La forma vegetativa es el trofozoíto.

Señala la opción incorrecta: Leishmania spp. es un protozoo flagelado. Plasmodium es un protozoo flagelado. Entamoeba histolytica tiene pseudópodos. Cryptosporidium spp. forma ooquistes.

La imagen siguiente después del centrifugado para concentrar heces se corresponde con: Ninguna. Técnica de Ritchie. Técnica de Baermann. Técnica de concentración por flotación.

Para detectar Trichomonas vaginalis podemos: Utilizar un examen de heces. Recoger un hisopo de exudado vaginal. Realizar una extracción de LCR. Sacar muestra de sangre.

Para que se utiliza el test de Graham: Para la detección de Giardia lamblia. Para detectar Plasmodium. Para el diagnóstico de Oxiuros. Para visualizar entamoeba histolytica.

La tinción de Ziehl-Neelsen tiñe los ooquistes de: Rosa fucsia. De amarillo. De verde. De azul.

Las técnicas de concentración de heces que se basan en usar una solución más densa que lo que se pretende recoger (huevos, protozoos, quistes) son: De flotación. De tropismo. De sedimentación. De coloración.

Cuando hablamos de Coccidios, nos referimos a: Flagelados. Ciliados. Amebas. Phylum Apicomplexa.

Schistosoma es un…. Ameba. Helminto. Protozoo. Artrópodo.

El medio NNN sirve para aislar: Leishmania. Necator. Trichomonas. Strongyloides.

Señala en qué medio no se puede llevar a cabo el aislamiento de un virus: Embriones animales. Animales de experimentación. Cultivos celulares. Medio nutritivo carente de células.

Señala la respuesta incorrecta sobre los retrovirus: No necesitan transcriptasa inversa, sólo ARN polimerasa. Contienen transcriptasa inversa. Sintetizan una cadena de ADN a partir de ARN. Su genoma está compuesto de ARN.

Los virus Influenzae, Parainfluenzae y Virus Respiratorio Sincitial se buscan en: Muestras respiratorias. Sangre. Heces. Muestras de LCR.

La nucleocápside…: Está compuesta por ácidos nucleicos + cubierta proteica. La contienen sólo los virus de ADN bicatenario. La contienen sólo los virus envueltos. La contienen sólo los virus desnudos.

Para detectar ácidos nucleicos virales en una muestra podemos realizar: Mirar por el microscopio. Técnicas de hibridación (con sondas) de ácidos nucleicos. ELISA. Test de Graham.

Señala la respuesta incorrecta: Según la simetría que adoptan las cápsides virales, los virus se dividen en helicoidales e icosaédricos. Algunos virus no tienen envuelta lipídica. Los ácidos nucleicos de un virus pueden tener estructura monocatenaria o bicatenaria. Si un virus contiene a la vez ADN y ARN en su genoma se llama mixto.

Señala la respuesta incorrecta: En la práctica diaria no se utiliza la microscopía electrónica. Los test inmunocromatográficos no sirven para detectar virus. En el cultivo Shell vial pueden crecer virus. La viremia se asocia con la fase aguda de la enfermedad y puede preceder al desarrollo de los síntomas.

Ante una sospecha de VHS-1/VHS-2 genital en un paciente adulto, se debe recoger: Heces en envase estéril. Un exudado de las lesiones genitales en medio de virus TVM. Un esputo en envase estéril. Un exudado de las lesiones genitales en torunda seca.

Señala la respuesta correcta sobre el tamaño de los virus: Mayores que las bacterias. Son mayores de 400 nm. Entre 300-400 nm. De 20-400 nm.

Para detectar el crecimiento de un virus en un cultivo celular podemos: Hacer PCR. Observar al microscopio. No me sirve con visualizar el efecto citopático. Detectar con Ac marcados con fluorescencia los antígenos víricos.

Cuál de las siguientes opciones se corresponden con barreras primarias en un laboratorio de microbiología?. Equipos de protección individual (EPIs). Todas son correctas. Diseño y construcción de la instalación. Cabinas de flujo laminar.

En relación con la transmisión parenteral, selecciona la respuesta correcta: Para evitarla hay que reencapsular las agujas hipodérmicas antes de desecharlas. Se produce cuando manipulamos objetos corto-punzantes. Los guantes son la mejor manera de protección. Se produce cuando centrifugamos muestras en recipientes no herméticos.

En relación con los grupos de riesgo que clasifican a los agentes biológicos, selecciona la respuesta correcta: Los agentes del grupo 1 son los más peligrosos. Los agentes del grupo 4 son los más peligrosos. Cada laboratorio realiza su propia clasificación. Los agentes de los grupos 1, 2 y 3 tienen poco riesgo para los seres humanos.

Los organismos empleados en la industria de la alimentación, como _Lactobacillus_, corresponden al nivel de contención: NCB-1. NCB-2. NCB-4. NCB-3.

Para el manejo con seguridad de productos químicos en el laboratorio es importante: Manejarlos en CBS (cabinas de seguridad biológica). Tener a mano la ficha de seguridad del producto. Estar en contacto con el Colegio Oficial de Químicos de la comunidad. Conocer la composición y el proceso de fabricación de los mismos.

Para el transporte y envío de muestras biológicas se necesitan, según el RD 65/2006, modificado por la orden SAS/3166/2009: Un recipiente sólo, mientras sea hermético. Ninguna es correcta. Dos recipientes: primario y secundario. Tres recipientes: primario, secundario y externo.

Para evitar el riesgo de inhalación de aerosoles se usan: Gafas de protección. Bata. Mascarillas. Guantes.

Sabiendo que el virus de Lassa es un agente biológico del grupo 4, ¿qué tipo de CSB sería apropiada para trabajar con él en su interior?. CSB de Clase I. CSB de Clase II. Cabinas de Flujo Laminar. CSB de Clase III.

Señala en qué grupo de residuos se clasifican los citotóxicos: Grupo V. Grupo VII. Grupo III. Grupo VI.

Señala la respuesta correcta sobre CSB: Todas las CSB protegen el material con el que se trabaja. Existen hasta 4 tipos (I, II, III y IV). Las CSB de Clase II sólo protegen frente a agentes del grupo 2. Todas ellas protegen al operador y la zona que le rodea.

En relación con la Familia Enterobacteriaceae o enterobacterias: Son un tipo de micoplasmas. Son cocos Gram+. No tienen interés clínico. Muchas se encuentran el tracto intestinal.

En relación con la tinción de Gram, selecciona la respuesta incorrecta: Las bacterias Gram- se tiñen de rojo-rosa. No es una técnica muy utilizada en microbiología. Se usa para la taxonomía y clasificación de las bacterias. Las bacterias Gram+ se tiñen de azul-violeta.

En relación al crecimiento bacteriano selecciona la respuesta incorrecta: El crecimiento tiene una fase exponencial o logarítmica. El crecimiento bacteriano sigue la fórmula Nt = N0 x 2n. Se basa en el aumento de tamaño de las bacterias. Es un término que hace referencia al aumento de individuos de una población bacteriana.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un bacilo Gram-: Género Haemophilus. Género Vibrio. Género Listeria. Género Pseudomonas.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un coco Gram+: Género Enterococcus. Género Staphylococcus. Género Streptococcus. Género Pseudomonas.

En qué se diferencian las células procariotas (bacterias) de las células eucariotas humanas?. Es muy difícil diferenciarlas porque ambas son microscópicas. Ambas tienen núcleo, pero solo las bacterias tienen pared celular. Ambas tienen pared celular, pero solo las células eucariotas tienen núcleo. A diferencia de las células eucariotas, las bacterias no tienen núcleo, pero sí tienen pared celular.

Las esporas bacterianas son: Un tipo de reproducción bacteriana. Una forma por la que pasan todas las bacterias a lo largo de su ciclo vital. Una forma de resistencia bacteriana. La fase en la que las bacterias están más activas metabólicamente.

Selecciona la característica que NO representa a las Cocos Gram-: Se tiñen de color azul-violeta. Muchas de las bacterias que forman este grupo forman diplococos. Dos de los géneros más importantes son Neisseria y Moraxella. Son bacterias con forma esférica.

Si una bacteria puede sobrevivir en presencia de oxígeno, pero no lo usa porque su metabolismo es anaerobio, nos referimos a: Una bacteria anaerobia facultativa. Una bacteria anaerobia estricta. Una bacteria aerotolerante. Una bacteria microaerófila.

Señala la respuesta incorrecta respecto al Staphylococcus saprophyticus: Pertenece a la misma especie que Staphylococcus aureus. Es un microorganismo Gram positivo. Infecta el tracto urinario de las mujeres sexualmente activas. Pertenece al mismo género que S. aureus.

El objetivo de la fijación es: Evitar que las bacterias móviles se desplacen en la preparación. Mantener los microorganismos lo más parecidos a su estado vivo. Destruir las bacterias con elevado riesgo biológico. Todas las respuestas son correctas.

La tinción Ziehl-Neelsen es una tinción ácido-alcohol resistente (señala la respuesta INCORRECTA): Los microorganismos ácido-alcohol resistentes aparecen teñidos de rojo/rosa sobre fondo azul en esta tinción. Se utiliza el colorante de fucsina de Ziehl y Azul de Metileno. Los microorganismos son alcohol-resistentes porque resisten la fijación con ácidos y alcoholes. Se basa en que los microorganismos ácido-alcohol resistentes no se decoloran debido a que tienen ácidos grasos que lo impiden.

Las tinciones diferenciales se llaman así porque: Utilizan técnicas que difieren mucho de las técnicas clásicas de tinción de microorganismos. Utilizan diferentes sustancias para colorear. Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su afinidad a diferentes colorantes. Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su color natural.

Para la tinción de parásitos en heces se utiliza: Hidróxido sódico. Lugol. Azul de metileno. Safranina.

Para lograr teñir bacterias esporuladas usamos: Ziehl-Neelsen modificado. Lugol. Verde malaquita. Azul de metileno.

Para preparar un frotis bacteriano se debe seguir el siguiente orden: Fijado, coloración, lavado y secado único. Fijación, secado, coloración, lavado y secado final. Secado, fijación, coloración, lavado y secado final. Secado, coloración, fijación, lavado y secado final.

Para realizar y visualizar tinciones fluorescentes necesitamos: Bacterias con fluorescencia natural. Microscopios de fluorescencia. La tinción de Kinyoun. Microscopios electrónicos con luz fluorescente.

Parásitos sanguíneos como Leishmania y Trypanosoma pueden teñirse con: Giemsa. Verde malaquita. Ziehl-Neelsen. Auramina-rodamina.

Señala el orden correcto para realizar una tinción de Gram: Cristal violeta, Lugol, safranina y decolorante. Cristal violeta, decolorante, lugol y safranina. Safranina, lugol, decolorante y cristal violeta. Cristal violeta, lugol, decolorante y safranina.

Señala la respuesta incorrecta sobre el examen en fresco: Se puede apreciar con esta técnica la movilidad de Trichomonas vaginalis. Se observa con el objetivo de x 40 y con poca luz. Se fija la preparación. Se puede realizar a partir de muestra sólida o líquida.

Cuando preparamos medio de cultivo, uno de los pasos es autoclavarlo, ¿por qué se realiza este proceso?. Porque modifica el pH a unos valores adecuados para el crecimiento bacteriano. Realmente, no es necesario en todos los casos. Porque ayuda a gelificar el agar al calentar la disolución. Porque esteriliza el medio de cultivo y así se evita el crecimiento de bacterias indeseadas.

El agar SS es selectivo para: Pseudomonas. S. aureus. S. pyogenes. Salmonella spp.

El medio agar inclinado de Lowestein – Jensen/Coletsos se usa para aislar: Levaduras. Trichomonas. Micobacterias. Campylobacter.

El medio Chapman o manitol salado permite el crecimiento de: Solo estafilococos distintos a S.aureus. Solo S. aureus. Estreptococos. Estafilococos, tanto S.aureus, como los coagulasa negativa.

El medio CLED se usa para: Como agar para anaerobios. Como agar para cultivo de orina. Como caldo de enriquecimiento. Para aislar Haemophilus spp.

En relación con los medios de transporte, selecciona la afirmación FALSA: Suelen utilizarse viales o tubos donde se introduce la muestra directamente o por medio de una torunda o hisopo. Contiene agar y agua para evitar la desecación de los microorganismos. Puede mantenerse sin refrigerar entre 12 y 24 horas. Contiene nutrientes para mantener vivas a las bacterias hasta que llegan al laboratorio.

En relación con los medios líquidos, señala la respuesta incorrecta: Se utilizan para el aislamiento de bacterias. No llevan agar. Permiten un mayor crecimiento bacteriano. Se suelen realizar en tubos de ensayo.

En un medio de agar Hektoen, ¿a qué tipo de bacterias puede corresponder esta imagen?: Salmonella. Levaduras. Shigella. E. coli.

Para que un microorganismo crezca es necesario unas condiciones de cultivo determinadas, selecciona la respuesta incorrecta: Una atmosfera rica en oxígeno (aerobia). Elementos como carbono, azufre, fosforo, etc. Un pH definido, normalmente cercano a la neutralidad. Una temperatura determinada, normalmente entre 25 y 40°C.

Señala en cuál de estos agares se pueden observar la alfa, beta y gamma-hemólisis: CLED. MacConkey. Sangre. Mycosel.

Para qué se utiliza la siembra por picadura?. Para almacenar cultivos mixtos. Para realizar antibiograma. Para almacenar colonias en poco tiempo. Para el estudio de la movilidad.

¿Para qué sirve el asa de Digralsky?. Realización de antibiograma. Siembra masiva en superficie. Recuento de colonias. Todas las respuestas s son correctas.

Qué tipo de siembra es la siguiente?. Siembra por recuento. Siembra en masa. Siembra por aislamiento. Técnica de Barry.

A qué nos referimos cuando hablamos de bacterias capnófilas?. A microorganismos aerobios que crecen bien en atmósfera enriquecida con 5-10 % de CO2. A las bacterias anaerobias. A las bacterias que crecen a bajas temperaturas. A los que no necesitan CO2 para vivir.

Al realizar el recuento de viables en placa…. Hay que tener en cuenta el factor de dilución. No hay que contar colonias. Es un método de recuento electrónico. Contamos las células individuales.

Cuando realizamos la siembra de microorganismos debemos seguir una serie de recomendaciones, ¿cuál de ellas es FALSA?. Las tapas de las placas Petri no deben colocarse nunca sobre la mesa de trabajo. Las bocas de los tubos y placas de plástico se flamean ligeramente una vez destapadas. Si las asas de siembra que se emplean no son desechables es imprescindible esterilizarlas flameándolas cada vez y enfriarlas antes de su reutilización. Los tubos abiertos deben mantenerse en posición inclinada para que el riesgo de contaminación sea mínimo.

De las siguientes muestras, ¿cuál rechazarías?. Muestra tomada con métodos invasivos en un envase inadecuado. Muestra tomada con métodos invasivos con más de 24 horas de transporte. Muestras identificadas con código de barras. Una muestra de vómito.

En relación a las colonias bacterianas que crecen sobre los medios de cultivo sólidos. Selecciona la afirmación verdadera: A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar de manera presuntiva alguna especie bacteriana. Todas tienen un aspecto blanquecino y redondeado. Cada colonia visible está formada por una sola bacteria. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar inequívocamente alguna especie bacteriana.

La siembra en masa o técnica de Barry se basa en: Mezclar un volumen determinado de la muestra con uno del medio de cultivo y verterlo en la placa. Siembras en superficie para posteriormente hacer recuentos. Realizar la siembra en cuatro cuadrantes marcados en la placa. En hacer siembras en matraces tipo Erlenmeyer.

Las jarras y bolsas de anaerobiosis se utilizan para: El cultivo de microorganismos aerobios, ya que los protege del CO2 atmosférico. El cultivo de microorganismos anaerobios, porque llevan unos reactivos que producen el agotamiento del O2. Para el cultivo de microorganismos microaerófilos, ya que los aísla del O2 atmosférico. Para el aislamiento y transporte de microorganismos patógenos peligrosos.

Teniendo en cuenta que se va a realizar un cultivo de Mycobacterium tuberculosis en el laboratorio de microbiología, ¿con qué nivel de bioseguridad debemos trabajar?. Con el BSL-1, lo que implica trabajar con CBS clase III o trajes presurizados con CBS clase II. Con el BSL-3, lo que implica trabajar con CBS de clase I y EPI. Con el BSL-1, lo que implica trabajar con las técnicas microbiológicas habituales. Con el BSL-3, lo que implica trabajar con CBS de clase III o trajes presurizados con CBS claseII.

En un procedimiento debe utilizar ácido clorhídrico concentrado, ¿qué precauciones debe tomar a la hora de manipular este líquido?. Trabajar con BSL-3, utilizando trajes presurizados y CBS de clase III, teniendo especial cuidado al manipular el recipiente. Utilizar guantes y trabajar con normalidad sobre la mesa de trabajo, teniendo especial cuidado al trabajar a la llama. Se pueden verter los residuos por el fregadero. Utilizar guantes y ropa de protección, no es necesario utilizar gafas de seguridad ni trabajar en campana de flujo laminar ya que no hay peligro de salpicaduras ni gases. Utilizar guantes, ropa de protección, gafas de seguridad, trabajar en campana de flujo laminar a ser posible y, en caso de tener que verter el líquido, realizar el vertido delicadamente sobre la pared del recipiente. Se deben verter los residuos en un recipiente de desecho especial.

Está realizando un recuento microbiano de la población de Saccharomyces cerevisiae que hay en los tanques de fermentación para la producción de cerveza, ¿qué medidas de seguridad debe aplicar en función del grupo de riesgo al que pertenece esta levadura. Se deben tomar medidas de protección especiales para el grupo de riesgo 1, que incluyen trabajar en cabina de seguridad biológica de clase II. Se deben tomar las medidas de protección rutinarias dado que trabajamos con un microorganismo de riesgo 4, el más bajo, que no causa patologías en humanos. Se deben tomar medidas rutinarias junto con ropa protectora, señal de riesgo biológico y cabina para aerosoles. Se deben tomar las medidas de protección rutinarias dado que trabajamos con un microorganismo perteneciente al grupo de riesgo 1, que es muy poco probable que cause patologías en humanos.

Debe desechar una jeringuilla que ha extraído sangre de un paciente contagiado con VIH. ¿En qué contenedor debe tirar este residuo?. En un contenedor de residuos clase VI. En un contenedor para residuos citotóxicos. En un contenedor para residuos de clase III como en los que se desechan químicos peligrosos. En un contenedor para residuos de clase III, que además sean punzantes.

Staphylococcus aureus es una bacteria: Gram positiva y aerobia estricta, responsable de la caries dental. Gram positiva y anaerobia facultativa, responsable de neumonía y meningitis. Gram negativa y anaerobia facultativa, forma parte de la microbiota intestinal. Gram negativa y aerobia, responsable de neumonía y sepsis.

Señala el orden correcto en la tinción de GRAM: Cristal violeta, lugol, decolorante y safranina. Cristal violeta, lugol, safranina y decolorante. Safranina, lugol, decolorante y cristal violeta. Cristal violeta, decolorante, lugol y safranina.

Clostridium sp. es: Un género de bacterias cocoidales gram negativos. Una especie de bacterias cocoidales gram positivos. Una especie de bacterias bacilares gram negativos. Un género de bacterias bacilares gram positivos.

Escherichia coli es una: Bacteria bacilar gram positiva. Enterobacteria (bacilos gram negativos). Enterobacteria (cocos gram negativos). Bacteria cocoidal gram negativa.

Las micobacterias se caracterizan por: ser bacterias cocoidales, móviles y de crecimiento lento. ser bacterias cocoidales, anaerobias y gram positivas. ser bacterias bacilares, anaerobias, inmóviles, de crecimiento rápido. ser bacterias bacilares, aerobias y móviles de crecimiento lento.

Qué tinción se emplea específicamente para teñir micobacterias?. Tinción Giemsa. Tinción simple con azul de metileno. Tinción de Gram. Tinción Ziehl-Neelsen.

Qué medio de cultivo se utiliza para observar hemólisis?. Agar Hecktoen. Agar MacConkey. Agar chocolate. Agar sangre.

Un neonato y su madre han desarrollado una infección bacteriana grave poco después del parto, siendo el principal agente infeccioso sospechoso Streptococcus agalactiae. ¿Qué medio podemos utilizar para una identificación rápida?. Medio Sabouraud. Medio granada. Medio Chapman. Medio Sevilla.

El medio Chapman o manitol salado es: Diferencial para Gram y selectivo para coagulasa negativo. Diferencial para Gram y selectivo para coagulasa positivo. Selectivo para Gram negativas y diferencial para coagulasa positivo o negativo. Selectivo para Gram positivas y diferencial para coagulasa positivo o negativo.

Los medios de transporte... Sólo protegen a los microorganismos de la muestra durante 2-3 horas, suficiente para su transporte al laboratorio. Se usan para preservar la supervivencia de los microorganismos de la muestra favoreciendo el crecimiento bacteriano mediante la adición de fructosa. Pueden proteger a los microorganismos de la muestra durante 48-72 horas sin refrigeración, facilitando el trabajo en el laboratorio. Se usan para preservar la supervivencia de los microorganismos de la muestra evitando el crecimiento bacteriano mediante la ausencia de nutrientes.

Respecto a la siembra de microorganismos. Se debe hacer uso del equipo de protección individual pero no es necesario hacer uso de cabinas de seguridad biológica. Es necesario esterilizar el asa de siembra, pasándola por la llama sin que llegue a ponerse incandescente para evitar quemar los microorganismos. Durante la inoculación, las tapas de las placas Petri se mantienen boca abajo en la mesa de trabajo y los tapones de los tubos sobre la gradilla, ambos se flamearán antes de volver a colocarlos en las placas. Hay que evitar golpear bruscamente las asas de siembra sobre el medio o el recipiente así como la expulsión intensa de las pipetas para evitar la formación de microaerosoles.

Selecciona la respuesta INCORRECTA sobre la siembra masiva en superficie. Se puede emplear el asa de Drigalsky para realizarla. Se utiliza para el recuento de colonias (UFC). Se realiza partiendo de una descarga central que se va distribuyendo uniformemente girando la placa. Se realiza dividiendo la placa en cuatro cuadrantes, inoculando la muestra en cada una de ellas y realizando estrías longitudinales.

En medios líquidos: Las bacterias anaerobias estrictas aparecen en todo el tubo menos en el segmento más superficial. Las bacterias microaerófilas aparecen en todo el tubo, más concentradas en la superficie. Las bacterias aerobias aparecen sólo al fondo del tubo. Las bacterias anaerobias facultativas aparecen en toda la longitud del tubo.

En relación a las colonias bacterianas que crecen sobre los medios de cultivo sólidos... Todas tienen un aspecto blanquecino y redondeado. Cada colonia visible está formada por una sola bacteria. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar inequívocamente las especies bacterianas. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar de manera presuntiva alguna especie bacteriana.

Se está realizando una identificación fenotípica de una bacteria, ¿Qué puedes saber sobre la bacteria tras realizar una tinción de Gram, un cultivo en agar sangre y la prueba de la catalasa?. Es un coco gram positivo, concretamente un estreptococo, catalasa negativo y alfa hemolítico. Es un coco gram negativo, concretamente un estafilococo, catalasa negativo y beta hemolítico. Es un coco gram positivo, concretamente un estreptococo, catalasa positivo y alfa hemolítico. Es un coco gram negativo, concretamente un estreptococo, catalasa negativo y beta hemolítico.

Sabemos que el microorganismo anterior es anaerobio facultativo y que se ha obtenido de una muestra de un paciente con neumonía. ¿Cuál es el microorganismo del que podemos sospechar?. Enterococcus faecalis. Streptococcus pneumoniae. Staphylococcus aureus. Streptococcus mutans.

Se está realizando una identificación fenotípica de una bacteria, ¿qué puedes saber sobre la bacteria tras realizar una tinción de Gram, la prueba de la ureasa y la prueba de la oxidasa?. Es un bacilo gram negativo, ureasa negativo y oxidasa negativo. Es un bacilo gram positivo, ureasa positivo y oxidasa negativo. Es un bacilo gram negativo, ureasa negativo y oxidasa positivo. Es un bacilo gram negativo, ureasa positivo y oxidasa positivo.

Sabiendo que la muestra anterior se ha tomado de un paciente con gastritis y úlcera duodenal y descartando que sea una Enterobacteria, ¿de qué microorganismo podemos sospechar?. Bacillus subtilis. Helicobacter pylori. Escherichia coli. Salmonella enterica.

realiza la prueba de la coagulasa sobre un estafilococo, ¿de qué especie estamos hablando si el resultado es positivo?. Staphylococcus aureus. Streptococcus mutans. Streptococcus pyogenes. Staphylococcus epidermidis.

Qué representa la imagen? ¿Qué tipo de identificación permite realizar?. Un microarray de DNA, permite realizar una interpretación fenotípica mediante pruebas bioquímicas. Un microarray de DNA, permite realizar una interpretación genotípica mediante hibridación. Una galería comercial, permite realizar una interpretación genotípica mediante pruebas químicas. Una galería comercial, permite realizar una interpretación fenotípica mediante pruebas bioquímicas.

Indica la opción incorrecta respecto a la espectrometría de masas MALDI-TOF: Es un método químico de identificación fenotípica. Se usa para la identificación fenotípica de distintos tipos de microorganismos. Únicamente permite la identificación fenotípica de bacterias. Se basa en que cada microorganismo deja un perfil característico de sus proteínas.

Si observamos un diplococo gram negativo intracelular en células epiteliales de un frotis vaginal debemos sospechar de: Trichomonas vaginalis. Neisseria meningitidis. Treponema pallidum. Neisseria gonorrhoeae.

Las Enterobacterias son: Bacilos gram positivos, aerobios estrictos, oxidasa negativo y lactosa positivo. Bacilos gram negativos, aerobios estrictos, oxidasa positivo y lactosa positivo. Bacilos gram positivos, anaerobios facultativos, oxidasa positivo y lactosa negativo. Bacilos gram negativos, anaerobios facultativos, oxidasa negativo y lactosa positivo.

Las pruebas de inmunocromatografía son: Pruebas de identificación genotípicas de detección de anticuerpos del hospedador, mediante cromatografía en una membrana de nitrocelulosa. Pruebas serológicas de diagnóstico indirecto, basado en la aparición de las inmunoglobulinas G y M. Pruebas de identificación genotípicas de detección de antígenos mediante cromatografía, en la que la muestra migra a través de una membrana de nitrocelulosa. Pruebas de identificación fenotípicas de detección de antígenos mediante cromatografía, en la que la muestra migra a través de gel de agarosa.

Qué técnica elegirías si tuvieras que realizar un diagnóstico genotípico mediante la identificación del ADN del microorganismo?. Citometria de flujo. Amplificación por PCR. Inmunoflorescencia. ELISA.

Qué tipo de prueba ha realizado este test? Interpreta los resultados. Test de anticuerpos de un paciente en fase aguda de la infección. Test serológico de un paciente que ha pasado la infección. Test serológico de un paciente en fase aguda de la infección. Test de anticuerpos de un paciente convaleciente.

Cuando la concentración máxima de un antimicrobiano que se puede localizar en el lugar de la infección no es suficiente para eliminar al microorganismo, hablamos de: Microorganismos susceptibles. Microorganismos sensibles. Microorganismos ultrarresistentes. Microorganismos resistentes.

Qué representa la C.M.I.?. La cantidad mínima de antimicrobiano que es capaz de inhibir el crecimiento de un microorganismo. La concentración mínima de antimicrobiano que se alcanza en plasma tras la administración. La cantidad máxima de antimicrobiano que se puede administrar con seguridad en el paciente. La cantidad mínima necesaria de antimicrobiano para matar un determinado microorganismo.

Qué método de antibiogramas muestran las imágenes?. Métodos de dilución: a) Épsilon test, b) Kirby-Bauer. Métodos de difusión: a) Kirby-Bauer, b) Épsilon test. Métodos de difusión: a) Épsilon test, b) Kirby-Bauer. Métodos de dilución: a) Kirby-Bauer, b) Épsilon test.

En qué método se basan los paneles comerciales, como Micro-Scan, para el estudio de la sensibilidad microbiana a antibióticos?. Método de macrodilución. Método de microdilución. Método disco-placa. Método de difusión.

Los hongos son: organismos eucariotas autótrofos, cuyas células presentan una pared celular de celulosa. organismos eucariotas heterótrofos, cuyas células presentan una pared celular quitinosa. organismos eucariotas autótrofos, cuyas células presentan una pared celular quitinosa. organismos eucariotas heterótrofos, cuyas células presentan una pared celular de celulosa.

La mayoría de las mohos que producen masas de hifas sobre pan, fruta y otros alimentos deteriorados pertenecen al: Phylum Glomeromycota. Phylum Ascomycota. Phylum Zygomycota. Phylum Basidiomycota.

Indica el tipo de microorganismo que podemos observar en esta imagen: Un hongo del phylum Ascomycota, concretamente un hongo pluricelular que forma hifas septadas. Un hongo del phylum Basidiomycota, concretamente un hongo unicelular que forma pseudohifas. Un hongo del phylum Ascomycota, concretamente una levadura (unicelular) que forma pseudohifas. Un hongo del phylum Basidiomycota, concretamente un hongo pluricelular que forma hifas sincitiales.

Los basidiomicetos: Presentan las esporas reunidas en ascas y conidios. Son los principales causantes de micosis en humanos. Presentan hifas cenocíticas (no septadas). No producen patologías en el ser humano, pero pueden producir toxinas que causen envenenamiento.

Medio de cultivo clásico y general para realizar la descripción morfológica de la mayoría de los hongos. Agar Mycosel}. Agar cerebro-corazón con sangre (BHI). Agar glucosado de Sabouraud (AGS). Agar cromógeno CandiSelect.

Qué procedimiento podemos utilizar para observar las formas de reproducción de un hongo al microscopio teñido con azul de lactofenol?. Técnica patata-zanahoria. Técnica de Chapman. Técnica de Scotch. Técnica cromogénica.

Clasifica los siguientes parásitos protozoarios: 1) ameba, 2)coccidio, 3) flagelado. 1) ameba, 2) ciliado, 3) flagelado. 1) flagelado, 2) ciliado, 3) ameba. 1) ciliado, 2) ameba, 3)coccidio.

Clasifica el siguiente parásito: Protozoo, Helminto, Nematodo. Metazoo, Helminto, Cestodo. Metazoo, Helminto, Trematodo. Protozoo, ameba.

Clasifica el siguiente parásito: Metazoo, Helminto, Nematodo. Metazoo, Artrópodo, Insecto. Metazoo, Helminto, Cestodo. Metazoo, Helminto, Trematodo.

Cuál es la técnica más habitual para análisis de heces en casos de parasitosis intestinales?. Técnica de Baermann. Extracción de LCR. Concentración por centrifugación. Técnica de Ritchie.

Prueba específica para detectar “lombrices” intestinales (oxiuriasis): Técnica de Baermann. Test de Graham. Método MIF. Técnica de Ritchie.

Indica la opción correcta respecto a los virus: Son moléculas conjugadas de ADN y proteínas que infectan células, por lo que se dice que son parásitos intracelulares obligados. Son microorganismos vivos muy pequeños compuestos esencialmente por material genético y una envoltura lipoproteica. Son parásitos intracelulares obligados. Son entidades biológicas acelulares compuestos esencialmente por material genético y una cápside proteica, aunque pueden presentar otros elementos como una envuelta. Son parásitos intracelulares obligados. Son entidades biológicas acelulares compuestas por ARN y lipoproteínas, a veces con estructuras anejas. Son parásitos intracelulares facultativos.

Qué representa la siguiente figura?. El ciclo lítico. El ciclo lisogénico. El ciclo celular. La conjugación bacteriana.

Como se denomina y para que se utiliza el siguiente material?. Tubos de Shell-vial, para la producción y el mantenimiento de líneas celulares. Matraces Erlenmeyer, para cultivos celulares en suspensión. Frascos de Roux, para la técnica de cultivo celular de Shell-vial. Frascos de Roux, para la producción y el mantenimiento de líneas celulares.

Medio de cultivo para detectar hongos. Agar patata- zanahoria. Rosa Bengala con Cloranfenicol. BHI. Medio CLED. Agar Sabouraud.

Virus. Un virus icosaédrico esta compuesto por 12 capsómeros. El material genético es siempre ADN. Celulares. Pueden crecer en cualquier edio.

Indica la opción correcta. Ninguna opción es correcta. Todo peligro tendrá un riesgo alto asociado. Los agentes biológicos se clasifican en 5 categorías según su riesgo. El manual de seguridad indica como usar los equipos correctamnte.

Técnica de determinación del crecimiento que emplea espectroftometria. Todas las opciones emplean un espectfotometro. Método Coulter. Cámara de Neubauer. Turbidimetria.

Tinción simple. Verde malaquita. Yodo. Giemsa. Gram. Nigrosina.

Tinción diferencial. Yodo. Nigrosina. Tinta china. Verde malaquita. Azul de metileno.

Agente que inhibe el crecimiento bacteriano pero no destruye la bacteria. Clavaminas. Penicilina. Bacteriostatico. Bacteriolitico. Bactericida.

Medio solido en placa especifico para determinar la sensibilidad de los antibioticos. Agar Thayer Martin. Agar Hektoen. Agar sangre. Agar MacConkey. Agar Mueller-Hinton.

Prueba para detectar la actividad de la enzima triptófano desaminasa. Medio KLIGLER. Prueba diferida. Prueba inmediata. Prueba rápida. LAP.

Phylum Ascomycota. Basidiomycota. Zygomycota. Moho negro. Seta venenosa. Trichophyton.

Elemento imprescindible de la bacteria que sirve de protección frente a sustancias toxicas. Cápsula. Pared celular. Membrana plasmática. Endospora.

Método de realización de antibiogramas que es una expansión de la técnica de difusión en disco. Método Épsilon tets. Método de dilucion agar. Método de Mueller - Hinton. Método microdilucion.

Uso de partículas de látex en la detección de antigenos. Contrainmunoelectroforesis. Inmunocromatografia. Enzimoinmunoalalisis. Técnica de aglutinacion. Inmunofluorescencia.

Técnica rápida de detección de antigenos. Inmunocromatografia. Métodos de hibridacion. Secuenciacion. PCR.

Prueba mas utilizada para el diagnostico de Filariasis linfatica. Exudado vaginal. Muestra nasofaringea. Líquido cefalorraquideo. Muestra de sangre. Muestra de heces.

Prueba de sensibilidad para detectar S. Saprophyticus. Bacitracina. Novobiocina. Optoquina. Oxidasa. Malonato.

Prueba bioquímica diferida. Ureasa. Hidrolisis de hipurato. Catalasa. Reacción de Voges-Proskauer. Indol.

Técnica de Ritchie. Se emulsiona en heces. Se emplea solo para protozoos. Se emplea lugol. Se centrifuga con formol y éter. Emplea mertiolato-yodo-formalina.

Ectoparasitos. Un ejemplo son los helmintos. Pueden ser pátogenos y no patógenos. Parasitan el interior del hospedador. Son todos parásitos obligados.

Fase ciclo lítico irreversible y que depende de la temperatura y del PH. Fase de proliferación. Fase de ensamblaje. Fase de adsorcion. Fase de penetracion. Fase de lisis.

La nucleocapside. La contienen solo los virus desnudos. La contienen sol los virus envueltos. Está compuesta por ácidos nucleicos + cubierta proteica. La contienen solo los virus de ADN bicatenario.

Secuencia de ARN circular que interfiere con el ARN celular. Giroides. Priones. Virusoidese. Transposones. Viroides.

Componente que facilita el crecimiento de bacterias anaerobias. Bilis. Cloruro sodico. Colorantes. Cisteína.

Gusano plano. Fasciola hepatica. As caris lumbricoides. Cestodos. Películas humnus.

Componente de los virus. Mitocondrias. Membrana plasmatica. Todos los virus presentan ADN monocatenario. Cápsides. Retículo endoplasmatico.