Microbiología Tema 2 solo tinciones

Tinción para identificar estructuras. Tinción simple. Tinción diferencial. Tinción estructural.

Se tiñe todo de un mismo color. Para estudiar tamaño, forma, agrupaciones celulares y densidad. Tinción simple. Tinción diferencial. Tinción estructural.

Tinción que utiliza 2 o más colorantes. Para estudiar la morfología de organismos que tienen diferente respuesta a la tinción. Tinción simple. Tinción diferencial. Tinción estructural.

Une cada tinción con su tipo: Azul de metileno y azul de lactofenol. Auramina-rodamina. Lugol. Nigrosina. Giemsa. Ziehl-Neelsen. Gram. Flagelo, cápsula y esporas. Naranja de acridina. Blanco calcoflúor.

Tinción simple que tiñe todas las células de azul. Azul de metileno. Azul de lactofenol. Lugol. Nigrosina.

Tinción para hongos filamentosos. Para detectar hongos dermatofitos. Se tiñen las hifas. Azul de metileno. Azul de lactofenol. Lugol. Nigrosina.

Tinción para parásitos intestinales. Azul de metileno. Azul de lactofenol. Lugol. Nigrosina.

Tinción para observar si la bacteria tiene cápsula o no. Azul de metileno. Azul de lactofenol. Lugol. Nigrosina.

¿Cuál de las siguientes tinciones no necesita fijación?. Azul de metileno. Azul de lactofenol. Lugol. Nigrosina.

Maraca la incorrecta en relación a la tinción gram. Se tiñen de violeta las bacterias gram+. Las gram- tienen una pared gruesa de péptidoglicano. Es una tinción diferencial. Se tiñen de rosa las bacterias gram-.

Pon en orden los colorantes de la tinción Gram: lugol cristal_violeta safranina alcohol_etilico.

¿Que función cumple el alcohol etílico en la tinción gram?. Quita la membrana lipídica externa de las gram-. Quita el cristal violeta de las gram+. Fija el cristal violeta a la capa de péptidoglicano. Potencia el efecto del lugol.

En la tinción Gram, el cristal violeta: Tiñe todas las celulas. Solo tiñe las Gram+. Solo tiñe las Gram-. No se usa en la tinción Gram.

Paciente con sospecha de tuberculosis. Marca la incorrecta: Generalmente causada por Mycobacterium tuberculosis. Causada por una bacteria BAAR. Podría hacer diagnóstico con una tinción Ziehl-Neelsen. Podría hacer diagnóstico con una tinción Gram.

La tinción Ziehl-Neelsen determina si la bacteria: Tiene pared celular de péptidoglicano. Tiene cápsula. Tiene pared celular ácido alcohol resistente. Tiene flagelo.

Ordena los pasos de la tinción Ziehl-Neelsen: se_coloca_fuccina_fenicada en_caliente en_frío acido_alcohol azul_de_metileno fijación_de_la_muestra.

¿Que ocurre en la tinción Ziehl-Neelsen cuando se coloca el acido-alcohol?. La bacterias BAAR+ quedan rojas. Las bacterias BAAR+ pierden el color. Las bacterias BAAR- se tiñen de azul. Las bacterias BAAR- quedan rojas.

En una muestra con Mycobacterium tuberculosis teñida con tinción Ziehl-Neelsen veré: Bacterias BAAR- color rojas. Bacterias BAAR- color azul. Bacterias BAAR+ color rojas. Bacterias BAAR+ color azul.

¿Con que tinción y de qué color se observarán los ooquistes de Cryptosporidium?. Rojo con Ziehl-Neelsen. Azul con blanco calcoflúor. Rojo con Moeller. Verde con Wirtz-Conklin.

¿Cuál se las siguientes es incorrecta en relación a la tinción Giemsa?. Diagnóstico de plasmodium. Diagnóstico de Malaria. Para frotis sanguíneo y líquido cefalorraquídeo. Usa eosina y azul de metileno.

Une cada estructura con su tinción. Capsula. Flagelo. Espora.

Marca la incorrecta en relación a la tinción de Hiss. Usa cristal violeta. La bacteria se ve morda. La cápsula se ve azul claro. Usa azul de metileno.

En una tinción de Hiss se observan bacterias todas color morado ¿Que puedo decir al respecto?. Se ha tenido con azul de lactofenol. Son bacterias con cápsula. Son bacterias sin cápsula. Se ha teñido con safranina.

Une cada tinción para flagelos con el color que se verá. Leifson. Rhodes. Tribondeau.

Une cada tinción para esporas con las características que corresponde. Moeller. Wirtz-Conklin.

Marca las correctas. Se puede utilizar el examen en fresco de las muestras para observar la movilidad de los protozoos. Con el test Graham se identifica microscópicamente a las hembras de los nematodos Enterobius vermicularis. En el método de la gota pendiente se deposita una gota del medio de cultivo en el portaobjetos. Para la extensión de las muestras de exudado se recoge la muestra con una torunda y se extiende directamente sobre el portaobjetos. Para depositar la muestra de medio líquido en el portaobjetos se puede usar una pipeta Pasteur. La fijación de la muestra antes de teñirla permite que la muestra quede adherida al portaobjetos, pero la morfología de la célula puede que no se conserve intacta.

Une cada descripción con su tinción. Tinción que utiliza eosina y azul de metileno para teñir protozoos. Tinción utiliza Cristal violeta para teñir cápsulas. Tinción que tiñe las esporas de color verde y las formas activas de color rosa. Tinción que tiñe los flagelos de color marrón. Tinción se utiliza para bacterias que no se pueden teñir con tinción Gram. Tinción que tiñe los parásitos intestinales de color azul-violeta. Tinción que tiñe ooquistes de Cryptosporidium,. Tinción que tiñe las hifas y los conidios de color azul. Tinción que utiliza fucsina fenicada y azul de metileno para teñir esporas.

Marca la incorrecta en relación a la tinción naranja de acridina. Tiñe tanto ADN como ARN. Tiñe el ADN bicatenario verde y el monocatenario rojo. Tiñe el ADN bicatenario rojo y el ARN verde. Se necesita microscopio de fluorescencia para su observación.

La tinción auramina-rodamina tiñe: De amarillo naranja las micobacterias BAAR+. De verde las bacterias BAAR-. De amarillo naranja las micobacterias BAAR-. De verde las bacterias BAAR+.

Marca la correcta en relación a la tinción blanco calcoflúor. Tiñe de morado los paracitos intestinales. Tiñe de azul la cápsula de los hongos. Tiñe de azul la quitina de las hifas. Tiñe de azul claro el ADN bicatenario.

¿En cual de las siguientes no encontrare células vivas?. Método gota pendiente. Tinción con nigrosina. Examen en fresco. Tinción con lugol.

Al microscopio observo ooquistes rojos y otras células azules. ¿Que tinción se ha utilizado?. Ziehl-Neelsen. Gram. Giemsa. Moeller.

Observó al microscopio de fluorescencia células con ADN bicatenario verde y monocatenario rojo. ¿Que tinción se ha utilizado?. Naranja de acridina. Auramina-rodamina. Ziehl-Neelsen. Blanco calcoflúor.

Veo células BAAR+ color amarillo anaranjado. ¿Que tinción he utilizado?. Naranja de acridina. Auramina-rodamina. Tinción BAAR. Ziehl-Neelsen.

Quieres ver hifas de hongos de color azul ¿Que tinción no utilizarías?. Blanco calcoflúor. Azul de lactofenol. Azul de metileno. Todas tiñen los hongos color azul.

Quieres determinar si una bacteria tiene o no cápsula ¿Que tinción utilizarías?. Tinción de Hiss. Tinción nigrosina. Tinción negativa. Todas son correctas.

Quieres hacer diagnóstico de tuberculosis por Mycobacterium ¿Que tinción no utilizarías?. Ziehl-Neelsen. Auramina-rodamina. Giemsa. Ninguna sirve para detectar Mycobacterium tuberculosis.

¿Cuál de las siguientes no es una tinción estructural?. Giemsa. Hiss. Negativa. Leifson.

¿Que estamos observando al microscopio óptico?. Células BAAR. Hongos. Protozoos. Cápsulas.

¿Que técnica se utiliza para observar el movimiento de bacterias vivas en suspensión?. Tinción de His. Test de Graham. Método de gota pendiente. Tinción Ziehl-Neelsen.

Realizamos una tinción Wirtz-Conklin y obsérvalos lo siguiente ¿Que estamos viendo?. Esporas rosa y formas activas verde. Bacterias BAAR+ rosa y BAAR- verde. Esporas verdes y formas activas rosa. Bacterias BAAR+ verde y BAAR- rosa.