Procesamiento citologico

¿Por qué debe introducirse la muestra en el fijador inmediatamente después de su obtención?. Para endurecer el tejido rápidamente. Para facilitar el corte con micrótomo. Para evitar la degradación celular y tisular. Para eliminar el contenido acuoso.

En el procesamiento previo a la fijación de una pieza quirúrgica voluminosa, ¿qué procedimiento mejora la penetración homogénea del fijador?. Aumentar el tiempo de aclaramiento. Dividir la muestra en fragmentos representativos. Aplicar calor al tejido. Reducir el volumen de fijador.

¿Qué característica diferencia al glutaraldehído del formol en histología?. Produce mayor deshidratación. Tiene menor toxicidad. Posee una capacidad de reticulación proteica más intensa. Se emplea solo en citología.

Durante el tallado aparecen fragmentaciones irregulares del tejido. ¿Qué medida preventiva sería la más adecuada?. Utilizar pinzas de presión fuerte. Mantener la cuchilla en uso prolongado. Cambiar frecuentemente la cuchilla de corte. Aumentar la temperatura de la parafina.

¿Por qué es imprescindible eliminar completamente el agua antes de la inclusión en parafina?. Porque el agua endurece la muestra. Porque la parafina no es miscible con el agua. Porque mejora la tinción nuclear. Porque evita la retracción tisular.

Un tejido permanece opaco tras el aclaramiento. ¿Qué indica este hallazgo?. Correcta sustitución del alcohol. Exceso de impregnación en parafina. Penetración incompleta del reactivo aclarador. Buena conservación tisular.

¿Cuál es la función principal del xileno durante el procesamiento histológico?. Fijar proteínas nucleares. Sustituir el agua intracelular. Actuar como medio intermedio entre alcohol y parafina. Teñir estructuras citoplasmáticas.

En un bloque de parafina el tejido se desprende durante el corte. ¿Qué problema técnico es más probable?. Exceso de refrigeración. Defecto de impregnación con parafina. Uso de alcohol diluido. Corte demasiado fino.

¿Qué característica hace que el micrótomo de rotación sea el más empleado en histología rutinaria?. Permite cortes nanométricos. Utiliza bloques congelados. Produce cortes uniformes mediante avance micrométrico. Funciona sin cuchilla metálica.

Para estudios histológicos habituales, ¿qué grosor permite observar correctamente varias capas celulares sin perder detalle?. 0,5–1 µm. 3–5 µm. 12–15 µm. Más de 20 µm.

¿Qué efecto produce el agua templada del baño de flotación sobre el corte histológico?. Disuelve el tejido. Incrementa la tinción eosinófila. Relaja la parafina y elimina arrugas. Fija el tejido al portaobjetos.

Durante el corte histológico aparecen líneas irregulares y superficies ásperas. ¿Qué ajuste debe revisarse primero?. Concentración del alcohol. Temperatura del baño de flotación. Estado y filo de la cuchilla. Tipo de portaobjetos utilizado.

¿Qué propiedad química explica que la hematoxilina se una preferentemente al núcleo celular?. Su afinidad por lípidos. Su carácter ácido. Su comportamiento como colorante básico. Su insolubilidad en agua.

Antes de aplicar colorantes acuosos sobre cortes en parafina, ¿qué procedimiento debe realizarse obligatoriamente?. Oxidación tisular. Eliminación de la parafina y paso a medio acuoso. Congelación rápida del tejido. Tratamiento enzimático previo.

En la tinción H-E, ¿qué estructuras suelen adquirir tonalidades rosadas?. Cromatina nuclear. Ácidos nucleicos. Citoplasma y fibras extracelulares. Membranas basales.

Una preparación histológica presenta una coloración muy débil tanto nuclear como citoplasmática. ¿Qué factor técnico puede justificarlo?. Exposición insuficiente a los colorantes. Exceso de diferenciación alcohólica. Uso de eosina concentrada. Permanencia prolongada en xileno.

¿Qué tipo de sustancias se demuestran principalmente mediante la técnica PAS?. Lípidos complejos. Hidratos de carbono y mucinas neutras. Sales cálcicas. Fibras elásticas.

En una técnica PAS-diastasa, la desaparición de la coloración indica digestión de: Proteínas fibrilares. Sustancia amiloide. Depósitos de glucógeno. Mucinas sulfatadas.

¿Qué hallazgo microscópico confirma la presencia de amiloide tras tinción específica?. Fluorescencia roja intensa. Birrefringencia verde bajo luz polarizada. Coloración azul turquesa. Depósitos negros metálicos.

¿Qué método de preparación tisular ayuda mejor a preservar enzimas activas para estudios enzimohistoquímicos?. Inclusión prolongada en parafina. Descalcificación ácida. Congelación rápida del tejido. Aclaramiento con xileno.

¿Cuál es el principio fundamental de la inmunohistoquímica?. Reacción entre ácido y base. Unión selectiva entre antígeno y anticuerpo. Oxidación de proteínas tisulares. Captación inespecífica de colorantes.

¿Por qué la técnica indirecta suele utilizarse más en inmunohistoquímica diagnóstica?. Porque requiere menos anticuerpos. Porque reduce el tiempo técnico. Porque amplifica la señal antigénica. Porque evita reactivos marcados.

¿Qué marcador permite visualizar un depósito coloreado mediante microscopio óptico convencional?. Fluoresceína. Rodamina. Peroxidasa. Oro coloidal.

¿Qué procedimiento permite concentrar células presentes en líquidos biológicos antes de extenderlas en un portaobjetos?. Inclusión en resina. Centrifugación. Descalcificación. Filtración osmótica.

¿Qué ventaja aporta la citocentrífuga frente a la centrífuga convencional?. Fija automáticamente las células. Elimina proteínas plasmáticas. Distribuye las células uniformemente sobre el portaobjetos. Tiñe simultáneamente la preparación.

¿Cuál es la aplicación más característica de la tinción de Papanicolaou?. Diagnóstico de amiloidosis. Estudio de muestras ginecológicas. Detección de glucógeno. Identificación de enzimas celulares.

En un extendido citológico aparecen células con núcleos deformados y citoplasmas retraídos. ¿Qué problema técnico suele producir este artefacto?. Exceso de hematoxilina. Retraso en la fijación y secado de la muestra. Sobrecarga de células en el porta. Uso de colorantes ácidos.

¿Cuál es la finalidad principal del uso de guantes, mascarillas y gafas en el laboratorio?. Mejorar la productividad. Garantizar la trazabilidad diagnóstica. Reducir la exposición a riesgos biológicos y químicos. Facilitar la identificación de muestras.

¿Cómo deben considerarse las cuchillas usadas de micrótomo tras su utilización?. Residuos reciclables. Material urbano convencional. Residuos punzantes con riesgo biológico. Residuos químicos corrosivos.