Repaso Laboratorio 2º Trimestre

¿Qué tres grandes tipos celulares distingue principalmente el hemograma?. Linfocitos, macrófagos y células madre. Serie blanca, serie roja y plaquetas. Plasma, capa leucocitaria y paquete globular. Proteínas plasmáticas, factores de coagulación y electrolitos.

¿Cómo se clasifican morfológicamente los leucocitos?. Mononucleares (linfocitos/monocitos) y polimorfonucleares (neutrófilos/eosinófilos/basófilos). Mononucleares (neutrófilos/basófilos) y polimorfonucleares (linfocitos/monocitos). Mononucleares (eritrocitos/plaquetas) y polimorfonucleares (leucocitos). Mononucleares (macrófagos) y polimorfonucleares (linfocitos B y T).

¿Cuál es la distribución porcentual normal de leucocitos en sangre?. Linfocitos 70%, Neutrófilos 20%, Monocitos 5%, Basófilos 2%, Eosinófilos 1%. Monocitos 70%, Linfocitos 20%, Neutrófilos 5%, Eosinófilos 2%, Basófilos 1%. Neutrófilos 40%, Linfocitos 40%, Eosinófilos 10%, Monocitos 8%, Basófilos 2%. Neutrófilos 70%, Linfocitos 20%, Monocitos 5%, Eosinófilos 2%, Basófilos 1%.

Un analizador hematológico de 3 poblaciones se caracteriza por: Diferenciar únicamente plaquetas, hematíes y hemoglobina por impedancia. Separar eosinófilos y basófilos mediante un canal exclusivo de lisado. Clasificar neutrófilos, linfocitos y monocitos (MID), agrupando eosinófilos y basófilos en GRA. Reportar de manera aislada reticulocitos, blastos y linfocitos reactivos.

Un analizador hematológico de 5 poblaciones se caracteriza por: Diferenciar las cinco poblaciones principales de leucocitos mediante un haz láser. Evaluar subpoblaciones funcionales T y B con anticuerpos monoclonales. Clasificar las células según su velocidad de lisis en la cámara de mezcla. Separar los linajes celulares por absorción de luz ultravioleta del plasma.

Si un analizador automático no utiliza óptica láser: No puede determinar la concentración de hemoglobina por ningún método. Requiere un volumen de aspiración de muestra críticamente superior. El sistema hidroneumático no puede realizar recuentos por impedancia. No se puede afirmar que mida 5 poblaciones leucocitarias separadas de forma directa.

¿Qué diferencia general de reactivos hay entre un equipo de 3 y uno de 5 poblaciones?. El de 3 poblaciones usa reactivos enzimáticos y el de 5 usa soluciones salinas. El de 3 requiere típicamente 3 reactivos básicos y el de 5 suele requerir 5 reactivos. Ambos utilizando exactamente la misma cantidad de reactivos químicos. El de 5 poblaciones funciona en seco mediante sensores ópticos.

¿Qué es el hematocrito (HCT) y qué relación guarda con la hemoglobina (HGB)?. Es el porcentaje de volumen sanguíneo ocupado por hematíes y su relación con HGB es ~3:1. Es el recuento absoluto de plaquetas y guarda una relación de 1:1 con la HGB. Es la concentración de hemoglobina corpuscular y guarda una relación de 2:1 con la serie roja. Es el volumen de leucocitos centrifugados y guarda una relación de 10:1 con el plasma.

En los analizadores automáticos, ¿cómo se mide la hemoglobina?. Por recuento óptico directo en el canal láser sin lisar eritrocitos. Por cálculo matemático multiplicando hematíes por el volumen corpuscular medio. Por fotometría a una longitud de onda cercana a 540 nm tras su conversión química. Por fluorescencia ultravioleta emitida por el estroma de los glóbulos rojos.

¿Qué factores pueden alterar el recuento de plaquetas por impedancia?. Fluctuaciones de la luz ambiental en la sala de análisis. Cambios menores en la presión barométrica interna del equipo. Ruido eléctrico del entorno o presencia de agregados plaquetarios. Desgranulación de los neutrófilos segmentados.

¿Cuál es el procesamiento inicial crítico de la muestra de sangre entera?. Homogeneización rigurosa, medición y dilución exacta (ej. 1/200 y 1/400). Centrifugación a altas revoluciones para separar el suero antes de aspirar. Congelación inmediata para estabilizar las membranas celulares. Hemólisis completa mediante agitación mecánica en el tubo primario.

En la rutina del analizador, ¿qué son el "background" y el "shutdown"?. Background es la calibración con suero; Shutdown es el apagado directo sin reactivos. Background es el recuento de fondo con diluyente; Shutdown es el apagado con limpiador o lejía. Background mide la viscosidad; Shutdown es una limpieza con sangre control envejecida. Background evalúa el láser; Shutdown es el ciclo automático de encendido diario.

¿A qué se refieren las alarmas técnicas "clog" y "flow"?. "Clog" indica obstrucción en el orificio de lectura; "flow" indica inestabilidad en el flujo. "Clog" alerta exceso de hematíes; "flow" señala fallo térmico de incubación. "Clog" indica falta de lisante; "flow" es una variación cromática de la hemoglobina. "Clog" indica error óptico del láser; "flow" señala volumen de muestra insuficiente.

¿Cuál representa un problema operativo común provocado por el usuario?. Ejecución de calibraciones internas en los intervalos recomendados. Procesamiento periódico de sangres control comerciales vigentes. Realización estricta del ciclo de startup al inicio de la jornada. Obstrucción por acumulación de sales/fibrina o mala agitación de la muestra.

¿Cómo se comportan los frotis con EDTA durante la primera hora a temperatura ambiente?. Desarrollan artefactos que invalidan el recuento diferencial. Muestran muy pocos cambios morfológicos frente a los preparados de inmediato. Sufren lisis celular acelerada que destruye la serie blanca. Alteran de forma irreversible el volumen corpuscular medio eritrocitario.

¿Qué cambios sufre la muestra tras un almacenamiento prolongado (3 a 8 horas)?. Estabilización de propiedades reológicas que mejora la precisión del equipo. Lisis completa de eritrocitos con liberación total de hemoglobina al plasma. Cambios morfológicos (vacuolización/tumefacción) y caída artificial de leucocitos/plaquetas. Duplicación artificial de células por fragmentación de núcleos leucocitarios.

¿Cómo influye la temperatura de almacenamiento en la degradación celular con EDTA?. El calor acelera los cambios morfológicos; la refrigeración a 4 °C retrasa la degradación. El frío a 4 °C acelera la destrucción de eritrocitos y lisa la serie blanca. Los cambios morfológicos avanzan igual independientemente de la temperatura. La refrigeración a 4 °C induce agregación plaquetaria que duplica los hematíes.

¿Qué ventaja operativa ofrece un analizador propio frente a un laboratorio externo?. Optimiza la logística de envíos a largas distancias y delega el control de calidad. Reduce costes fijos de reactivos y evita repetir calibraciones. Automatiza la fase preanalítica y elimina la necesidad de frotis confirmatorios. Elimina el transporte (evita degradación celular) y permite un seguimiento inmediato.

¿Qué representa el eje horizontal (X) y las tres regiones de un histograma WBC normal?. El volumen celular (fL); la primera curva son linfocitos, la intermedia es MID y la última granulocitos. El volumen celular (fL); las zonas corresponden a eosinófilos, linfocitos y neutrófilos. El tiempo de tránsito celular; las zonas miden plasma, plaquetas y leucocitos totales. La carga eléctrica de la membrana; separa mononucleares de polimorfonucleares.

¿Qué características gráficas definen un histograma WBC normal y válido?. Fusión completa de las tres curvas en un único pico simétrico. Tres regiones diferenciadas por valles basales cercanos a la línea cero. Dos mesetas planas separadas por picos agudos. Distribución lineal decreciente donde los granulocitos ocupan el área menor.

¿Cuál es la correlación biológica de la zona central o "zona media" (MID)?. Agrupa exclusivamente a neutrófilos en banda y metamielocitos. Corresponde al recuento integrado de plaquetas gigantes. Integra conjuntamente monocitos, eosinófilos, basófilos y formas inmaduras. Representa el área donde los linfocitos se confunden con hematíes mal lisados.

Ante una marcada neutrofilia con bandemia (desviación a la izquierda), ¿qué patrón gráfico se observa?. Compresión de la curva linfocitaria por debajo de 30 fL. Ensanchamiento y elevación de la tercera curva (granulocitos) con llenado del valle previo. Aparición de un pico único y estrecho en la zona inicial de menor tamaño. Desplazamiento completo del histograma a la derecha por ganancia electrónica.

Ante la presencia de blastos o linfocitos atípicos grandes (leucemia/linfoma), ¿qué alteración gráfica ocurre?. Atenuación completa de la señal que impide graficar eventos. Depresión de la curva granulocítica con elevación de plaquetas. Distorsión o ensanchamiento que borra la separación clara entre poblaciones. Retorno estricto de todas las curvas a la línea base antes de 100 fL.

¿Por qué los eritrocitos nucleados o una lisis eritrocitaria incompleta distorsionan el histograma WBC?. Generan impulsos de tamaño similar a leucocitos que alteran la zona baja o inicial del gráfico. Saturan el canal fotométrico bloqueando la lectura de hemoglobina. Inducen un error de flujo al adherirse al orificio de apertura. Elevan la viscosidad modificando los tiempos de tránsito celular.

¿Qué efecto directo tienen los agregados plaquetarios masivos por EDTA en el analizador de 3 poblaciones?. Falso incremento de la hemoglobina por distribución óptica. Elevación artificial de la tercera curva (granulocitos). Alarma de "clog" permanente con histograma central plano. Aumento artificial de WBC totales y señales anómalas en la región de menor tamaño.

¿Qué provoca una "baja ganancia" electrónica en el canal de leucocitos?. Desplazamiento artificial de las curvas a la izquierda, comprimiendo o confundiendo poblaciones. Desborde del histograma a la derecha, clasificando linfocitos como granulocitos. Multiplicación matemática de eventos que eleva falsamente el recuento total. Aparición de un pico único por encima de 300 fL.

Un histograma WBC con un "pico único" o patrón comprimido sin valles indica principalmente: Una muestra homogénea con 100% de neutrófilos segmentados normales. Fallo de calibración, error en la ganancia del amplificador o reactivos deficientes. Contaminación cruzada con el limpiador del ciclo de startup. Interferencia por variaciones de luz o temperatura en la cámara.

Ante un recuento WBC críticamente bajo con histograma de escasos eventos, se debe: Evaluar alarmas, estado de la muestra y descartar fallos de aspiración/flujo antes de validar. Modificar manualmente la ganancia para amplificar la curva granulocítica. Validar el resultado numérico ya que la falta de eventos descarta interferencias. Repetir el análisis modificando la proporción de dilución a 1/2000.

¿Qué criterio distingue si una anomalía del histograma es de la muestra o del equipo?. Si el patrón anómalo persiste idéntico al medir el background con diluyente. Si es aislada, es de la muestra/paciente; si se repite en muestras sucesivas, es del equipo/reactivo. Si las alarmas desaparecen al agitar el tubo durante más de dos horas. Si el recuento de serie roja y plaquetas se mantiene normal en sus canales.

¿Cuál es la definición y el objetivo principal de la hemostasia?. El proceso de destrucción controlada de hematíes envejecidos en el bazo. La producción y maduración exclusiva de megacariocitos en la médula ósea. El conjunto de mecanismos que detienen una hemorragia manteniendo la fluidez sanguínea. La formación permanente de trombos oclusivos en la circulación sistémica.

¿Cuál es la secuencia cronológica correcta del proceso hemostático ante una lesión vascular?. Vasoconstricción -> Hemostasia primaria -> Hemostasia secundaria -> Fibrinólisis. Fibrinólisis -> Vasoconstricción -> Coagulación plasmática -> Adhesión plaquetaria. Hemostasia secundaria -> Fibrinólisis -> Agregación plaquetaria -> Vasodilatación. Agregación plaquetaria -> Síntesis de eritropoyetina -> Fibrinólisis -> Isquemia refleja.

¿Qué ocurre durante la fase inicial de vasoconstricción refleja tras el daño vascular?. Se degrada la red de fibrina preexistente para liberar óxido nítrico. El vaso se contrae para reducir mecánicamente el flujo sanguíneo y la pérdida de sangre. Las plaquetas circulantes se lisan para liberar factores de crecimiento. Se produce una vasodilatación local mediada por la degranulación de mastocitos.

¿Qué define a la hemostasia primaria y cuál es su producto final?. La activación de la cascada de proteasas que genera una red insoluble de fibrina. La interacción entre la pared vascular, proteínas adhesivas y plaquetas para formar el tapón plaquetario. La disolución enzimática del trombo mediante la acción de la plasmina activa. La migración de leucocitos al espacio subendotelial para iniciar la angiogénesis.

En la hemostasia primaria, las fases del comportamiento plaquetario ocurren en el siguiente orden: Agregación, secreción de gránulos y adhesión al endotelio sano. Adhesión al subendotelio expuesto, activación con secreción y agregación mutua. Lisis de membrana, polimerización de actina y retracción del coágulo secundario. Quimiotaxis leucocitaria, pinocitosis de calcio y endocitosis de factor tisular.

¿Por qué el tapón plaquetario inicial de la hemostasia primaria no es suficiente por sí solo?. Porque altera la presión oncótica local destruyendo los capilares adyacentes. Porque bloquea por completo la llegada de factores de coagulación al endotelio. Porque es una estructura inestable que requiere ser consolidada por la hemostasia secundaria. Porque carece de receptores de membrana para unirse al factor von Willebrand.

¿Cuál es el objetivo principal de la hemostasia secundaria o coagulación?. Transformar el fibrinógeno en hilos de fibrina para formar una red que estabilice el tapón plaquetario. Sintetizar albúmina para aumentar la viscosidad plasmática en el sitio de la brecha. Activar la plasmina para destruir el trombo plaquetario antes de que obstruya el vaso. Estimular la agregación de glóbulos rojos nucleados para sellar la lesión arterial.

¿Qué función bioquímica desempeñan la trombina y la fibrina en la cascada de coagulación?. La trombina degrada los gránulos alfa; la fibrina deprime la síntesis endotelial. La trombina inactiva al calcio; la fibrina actúa como un anticoagulante natural. La trombina convierte el fibrinógeno en fibrina; la fibrina forma la malla estructural del coágulo. La trombina lisa el endotelio dañado; la fibrina bloquea la unión del factor tisular.

¿Qué proceso fisiológico evita que un coágulo permanezca indefinidamente tras la reparación del vaso?. La vasoconstricción sostenida por endotelina. La fibrinólisis mediada por la degradación de la malla de fibrina. La degranulación masiva de neutrófilos segmentados. La inhibición por retroalimentación del ion calcio plasmático.

¿Cómo interactúan el endotelio y el subendotelio durante una lesión vascular?. El endotelio intacto estimula la coagulación, mientras que el subendotelio la frena. El endotelio se descama para liberar plasminógeno y el subendotelio se dilata. El endotelio sano es antitrombótico; al lesionarse, el subendotelio expone moléculas procoagulantes. Ambos componentes se fusionan bloqueando el paso de iones calcio.

¿Qué funciones tienen el Factor Tisular (FT) y el Factor von Willebrand (FvW)?. El FT inicia la cascada de coagulación; el FvW facilita la adhesión plaquetaria al subendotelio. El FT disuelve los agregados de fibrina; el FvW regula los niveles circulantes de hemoglobina. El FT actúa como receptor exclusivo de plasmina; el FvW induce la vasoconstricción refleja. Ambos factores actúan de forma aislada en el plasma impidiendo la agregación plaquetaria.

¿Por qué el ion calcio (Ca2+) es un componente crítico en el proceso hemostático?. Porque actúa como cofactor indispensable en múltiples etapas enzimáticas de la cascada de coagulación. Porque es el responsable directo de la conversión de fibrina en fibrinógeno soluble. Porque regula la síntesis de óxido nítrico disminuyendo la viscosidad de la muestra. Porque se une a la plasmina para acelerar la lisis del coágulo maduro.

¿Qué diferencia fisiopatológica fundamental existe entre una hemorragia y una trombosis?. La hemorragia es un defecto de la fibrinólisis; la trombosis es una ausencia de plaquetas. La hemorragia implica salida de sangre por fallo hemostático; la trombosis es la formación anómala u oclusiva de un trombo. La hemorragia es un exceso de fibrina insoluble; la trombosis es la rotura de un vaso sanguíneo sano. Ambos conceptos describen el mismo estado de hipercoagulabilidad en la microcirculación.

¿Cómo se define la Hemofilia A desde el punto de vista molecular y cuál es su consecuencia?. Un déficit congénito de Factor VIII que altera la cascada de coagulación y aumenta el riesgo de sangrado. Una ausencia severa de plaquetas circulantes que impide el inicio de la vasoconstricción. Una mutación en el fibrinógeno que bloquea la acción lítica de la plasmina endotelial. Un defecto estructural en el colágeno subendotelial que anula la agregación plaquetaria.

¿Qué define la función principal de un LIS en el laboratorio clínico?. La calibración óptica de los canales láser del analizador. La gestión informática de peticiones, pacientes y recepción de resultados. El control de la lisis celular por impedancia. La dilución automatizada de muestras de suero y plasma.

¿Qué diferencia la comunicación bidireccional de la unidireccional entre el equipo y el LIS?. En la bidireccional, el LIS y el equipo intercambian órdenes y resultados; en la unidireccional, el equipo solo envía resultados al LIS. En la bidireccional se utiliza cable RJ45 y en la unidireccional solo conexiones serie DB-9. En la unidireccional el equipo realiza consultas (Queries) automáticas antes de pasar el startup. En la bidireccional el instrumento funciona sin necesidad de código de barras físico.

¿Cuáles son las tres fases lógicas consecutivas de una sesión de comunicación ASTM?. Trama -> Bloque -> Registro. Dilución -> Incubación -> Fotometría. Establecimiento -> Transferencia -> Terminación. Consulta -> Carga -> Almacenamiento.

Durante la transferencia de tramas, ¿qué caracteres delimitan el inicio y el fin del bloque de datos?. <CR> y <LF>. <STX> y <ETX>. <ENQ> y <EOT>. <ACK> y <NAK>.

Si el LIS receptor detecta un error de checksum en una trama de datos enviada por el equipo, ¿cómo responde?. Envía un carácter EOT para apagar el puerto. Responde con un carácter NAK para exigir la retransmisión de la trama. Modifica de forma automática el checksum antes de registrar al paciente. Responde con un carácter ACK para fuerza la validación del resultado.

¿Qué significan exactamente los caracteres de control ENQ y EOT en una sesión ASTM?. ENQ: Solicitud de inicio de comunicación; EOT: Fin de la transmisión. ENQ: Error en el bloque de datos; EOT: Trama recibida con éxito. ENQ: Resultado fuera de rango; EOT: Muestra urgente detectada. ENQ: Retorno de carro de impresora; EOT: Salto de línea de registro.

En un mensaje ASTM, ¿cuál es la función de los delimitadores como la barra vertical (|) y el acento circunflejo (^)?. Reemplazar los campos nulos que contienen errores de lectura. Calcular el checksum binario al final de cada número de trama. Separar campos dentro de un registro (|) y componentes dentro de un campo (^). Indicar si el resultado clínico pertenece a una rutina o urgencia (STAT).

¿Qué significan las siglas H, P, O, R y L que estructuran un mensaje ASTM de resultados?. Host, Protocolo, Operación, Repetición, Laboratorio. Hemoglobina, Plaquetas, Oxígeno, Reactivo, Lisis. Hematocrito, Paciente, Observación, Rango, Lote. Cabecera, Paciente, Orden, Resultado, Terminador.

¿Cuál es el orden lógico de los registros cuando el analizador realiza una consulta automática de trabajo (Query)?. H -> Q -> L. R -> O -> P. C -> H -> L. H -> P -> O -> R -> L.

En un registro de comentario (C), ¿qué significan los códigos de alarma ORH / ORL y CRH / CRL?. ORH/ORL: Muestra con suero o plasma; CRH/CRL: Error de calibración. ORH/ORL: Reactivo expirado; CRH/CRL: Muestra duplicada en el sistema. ORH/ORL: Resultado fuera de rango normal; CRH/CRL: Resultado fuera de rango crítico o de pánico. ORH/ORL: Transmisión correcta; CRH/CRL: Trama rechazada por el Host.

En el contexto de la comunicación LIS, ¿qué definen técnicamente los procesos de "Download" y "Upload"?. Download es el apagado del analizador; Upload es la carga inicial de reactivos líquidos. Download es la transmisión desde el LIS hacia el equipo; Upload es el envío desde el equipo hacia el LIS. Download es el borrado de registros antiguos; Upload es la actualización del firmware óptico. Download es el frotis manual; Upload es el recuento por impedancia en la cámara.

De los siguientes parámetros, marca todos aquellos que sean MEDIDOS: HCT. RDW. Volumen corpuscular medio. RBC. Hemoglobina corpuscular media. HGB. RDW%. Concentración media de hemoglobina corpuscular.

Une las siglas con su nombre completo: RBC. HGB. MCV. HCT. MCH. RDW. RDW%. MCHC.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Add and mix hemolysin. Sample probe cleaning. Sucking in prediluted mode. Unblock/reverse flushing.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Sample probe cleaning. Add and Mix Hemolysin. Sample measure. Mixing.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Sucking in whole blood mode. Sucking in prediluted mode. Sample measure. Unblock/reverse flushing.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Sucking in prediluted mode. Add and Mix Hemolysin. Mixing. Sample measure.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Sample measure. Sucking in prediluted mode. Sample probe cleaning. Add and Mix Hemolysin.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Unblock/reverse flushing. Mixing. Sucking in whole blood mode. Add and Mix Hemolysin.

¿A cual de los circuitos pertenece el diagrama?. Mixing. Counting. Sucking in prediluted mode. Add and Mix Hemolysin.

Relaciona cada factor de coagulación con la vía a la que pertenece: I. II. III. V. VII. VIII. IX. X. XI. XII.

Ordene la frase correctamente: plaquetas 2._La_hemostasia_secundaria_activa_la ,_cuyo_objetivo_final_es_formar cascada_de_coagulación ,_que_estabiliza_el_coágulo. fibrina 1._La_hemostasia_primaria_se_basa_principalmente_en_la_actuación_de_las ,que_se_adhieren,_se_activan_y_se_agregan_para_formar_el tapón_plaquetario.

LIS: Une cada letra de registro con su significado: H. P. O. R. C. Q. L.