tecinmco610

¿Qué caracteriza a las técnicas basadas en reacciones antígeno-anticuerpo primarias?. No requieren el uso de marcadores. Generan precipitados visibles a simple vista. No generan señal visible, por lo que requieren sistemas de detección. Solo se utilizan en diagnóstico veterinario.

¿Qué tipo de inmunoensayo implica la competencia entre un antígeno marcado y uno no marcado por el mismo anticuerpo?. No competitivo. Competitivo. Homogéneo. Cualitativo.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre los inmunoensayos no competitivos es correcta?. A mayor cantidad de antígeno, menor señal. A mayor cantidad de antígeno, mayor señal. No requieren anticuerpos marcados. Solo se utilizan para medir anticuerpos.

¿Qué tipo de marcador se utiliza en un radioinmunoensayo (RIA)?. Isótopos radiactivos. Enzimas. Nanopartículas metálicas. Sustancias fluorescentes.

¿Qué mide un inmunoensayo cualitativo?. La cantidad exacta de anticuerpos. La intensidad de fluorescencia. La concentración en una escala predefinida. La presencia o ausencia del analito.

¿Qué representa una curva de calibración en un ensayo cuantitativo?. Una lista de resultados positivos. La relación entre concentración y señal. Una tabla de valores normales. Un rango de referencia visual.

¿Qué se forma en la zona de detección de un test inmunocromatográfico si el antígeno está presente?. Una banda coloreada. Una fluorescencia visible. Un precipitado gelatinoso. Una señal radiactiva.

¿Cuál de las siguientes es una ventaja de los inmunoensayos homogéneos?. Son rápidos y no requieren separación. Son más sensibles que los ELISA. Requieren menos control de calidad. Detectan múltiples analitos simultáneamente.

En el contexto del laboratorio, ¿por qué es importante la curva de calibración?. Para seleccionar el mejor anticuerpo. Para convertir la señal en concentración. Para confirmar un test cualitativo. Para elegir la muestra correcta.

¿Qué función cumple la zona de control en un test inmunocromatográfico?. Detecta anticuerpos específicos. Indica si hay contaminación. Verifica que la prueba ha funcionado correctamente. Marca el límite de sensibilidad.

¿Qué técnica utiliza una enzima como marcador para generar una señal detectable?. Radioinmunoanálisis. Quimioluminiscencia. Enzimoinmunoensayo. Fluoroinmunoensayo.

¿Qué técnica ha reducido su uso debido a sus riesgos asociados?. Amplificación enzimática. Amplificación fluorescente. Amplificación por radioisótopos. Amplificación por quimioluminiscencia.

¿Cuál es una ventaja principal de la amplificación enzimática?. Uso exclusivo para virus. Elevado coste. Rapidez y bajo coste. Necesidad de radiación.

¿Cuál de los siguientes instrumentos se usa para detectar la señal en amplificación fluorescente?. Contador Geiger. Espectrofotómetro. Citómetro de flujo. Electrodo.

La amplificación por quimioluminiscencia se utiliza principalmente para detectar: Virus completos. Proteínas específicas en suero o plasma. Ácidos nucleicos. Células sanguíneas.

¿Qué método no requiere separación de moléculas no unidas para la detección?. ELISA directo. ELISA indirecto. EMIT. Inmunoanálisis múltiple.

En un inmunoensayo con amplificación por radioisótopos, ¿qué limitación fundamental debe considerarse en el diseño y manejo?. La baja sensibilidad de detección. La imposibilidad de cuantificación precisa. Los requisitos estrictos de seguridad, almacenamiento y eliminación de residuos radiactivos. La interferencia con fluorescencia ambiental.

¿Cuál es la principal diferencia entre la amplificación enzimática y la quimioluminiscencia en inmunoensayos?. La enzima se une directamente al antígeno en la quimioluminiscencia. La quimioluminiscencia usa radiación en lugar de luz. La amplificación enzimática produce un cambio de color, mientras que la quimioluminiscencia genera luz visible como producto de una reacción química. Todas las respuestas son correctas.

¿Cuál es una de las principales ventajas del análisis múltiple con microesferas a los inmunoensayos tradicionales como ELISA?. Requiere mayores volúmenes de muestra para mayor precisión. Solo detecta un analito por muestra para evitar interferencias. Permite detectar y cuantificar simultáneamente múltiples analitos en una misma muestra con alta sensibilidad y especificidad. No requiere anticuerpos para la detección.

¿Qué factor es clave para que un inmunoensayo enzimático multiplicado (EMIT) funcione correctamente en la detección de sustancias de bajo peso molecular?. Que la enzima utilizada sea fluorescente. Que haya un contacto estrecho entre el anticuerpo y la enzima para que la actividad enzimática quede inhibida al unirse. Que el antígeno marcado sea radiactivo. Que la muestra no contenga proteínas.

¿Qué propiedad principal tienen los fluorocromos en los fluoroinmunoensayos?. Emiten luz al absorber calor. Cambian de color al unirse al antígeno. Destruyen antígenos específicos. Emiten luz fluorescente al ser excitados por energía radiante.

¿Qué ventaja principal tiene la inmunofluorescencia indirecta respecto a la directa?. Es más rápida. Usa menos reactivos. Amplifica la señal fluorescente. No requiere microscopía.

¿Qué significa MEIA en el contexto de fluoroinmunoensayos?. Microenzimoinmunoensayo automatizado. Microelectroinmunoensayo avanzado. Macroenzimoinmunoensayo analítico. Microensayo en inmunoabsorción.

¿Cuál es el papel de las micropartículas en el MEIA?. Emitir fluorescencia directa. Capturar los autoanticuerpos de la muestra. Actuar como sustrato enzimático. Aumentar la temperatura de reacción.

¿Qué ocurre en un fluoroinmunoensayo homogéneo?. Se separan las moléculas libres antes de la medición. No se requiere separación de moléculas sobrantes antes de medir la fluorescencia. Se usa solo inmunofluorescencia directa. Solo se miden antígenos, no anticuerpos.

¿Qué tipo de anticuerpos se detectan comúnmente con la IFI en enfermedades autoinmunes?. Anticuerpos monoclonales. Anticuerpos IgE. Anticuerpos anti-VIH. Anticuerpos antinucleares (ANA).

¿Cuál de las siguientes es una limitación común en los fluoroinmunoensayos?. Alta especificidad. Autofluorescencia. Resultados instantáneos. Uso exclusivo en laboratorio clínico.

¿Por qué se usan controles internos en fluoroinmunoensayos?. Para acelerar la reacción. Para cambiar el color de la fluorescencia. Para detectar posibles errores o interferencias en el ensayo. Para reducir el costo del análisis.

¿Qué ocurre si en un MEIA la concentración de autoanticuerpos en la muestra es alta?. La señal fluorescente disminuye. La señal fluorescente aumenta. No cambia la señal fluorescente. Se inhibe la reacción enzimática.

¿Qué característica diferencia a la inmunofluorescencia indirecta de la directa?. Uso de anticuerpos marcados directamente con fluorocromo. Requiere microscopía óptica convencional. Uso de un anticuerpo secundario marcado que se une al anticuerpo primario. No permite detectar autoanticuerpos.

¿Qué característica principal distingue a los inmunoensayos quimioluminiscentes (CLIA) de los ELISA?. Utilizan fluorescencia en lugar de enzimas. No requieren anticuerpos. Solo se aplican a muestras de orina. Miden la emisión de luz, no un cambio de color.

¿Qué fase NO forma parte del Western blot tradicional?. Transferencia de proteínas. Amplificación isotérmica. Electroforesis SDS-PAGE. Detección inmunoenzimática.

¿Qué tipo de soporte se utiliza comúnmente en Western blot?. Filtro de papel. Cristal recubierto. Membrana de nitrocelulosa. Polietileno.

¿Cuál es la principal aplicación diagnóstica del Dot blot?. Separación de proteínas. Detección de ácidos nucleicos. Análisis cualitativo de antígenos o anticuerpos sin separación previa. Visualización de células en cultivo.

¿Cuál es el objetivo de realizar una curva de calibrado en un inmunoensayo?. Cuantificar la concentración del analito. Comparar técnicas diferentes. Medir el tiempo de incubación. Comprobar la temperatura del ensayo.

¿Cuál de los siguientes es un sistema de detección habitual en CLIA?. Colorimetría. Autorradiografía. Emisión de luz. Medición del pH.

¿Cuál de estas normas forma parte del control de calidad en el laboratorio clínico?. Eliminación directa de residuos sin etiquetar. Reutilización de material de un solo uso. Almacenamiento conjunto de productos incompatibles. Calibración periódica de los equipos.

¿Cuál es una medida de prevención de riesgos en inmunoanálisis?. Pipetear directamente con la boca. Uso de EPI adecuado. Trabajar sin campana extractora. Desechar jeringas en papeleras.

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre la automatización en inmunoanálisis es correcta?. Elimina totalmente la supervisión del técnico. Aumenta la variabilidad de los resultados. Permite mayor rapidez y reproducibilidad. Solo se aplica a técnicas ELISA.

¿Cuál de los siguientes problemas puede indicar una interferencia en un inmunoensayo?. Resultados consistentes entre repeticiones. Disminución progresiva de la señal con el tiempo. Resultados inesperadamente altos o bajos sin causa aparente. Buena linealidad de la curva de calibrado.

¿Qué tipo de hipersensibilidad es la hipersensibilidad retardada?. Tipo I. Tipo II. Tipo III. Tipo IV.

¿Cuál es la prueba cutánea más utilizada para diagnosticar dermatitis de contacto?. Pruebas epicutáneas (patch test). Pruebas intradérmicas. Prueba de Mantoux. Test de liberación de histamina.

¿Cuánto tiempo después de la aplicación se debe leer el resultado de un patch test?. 20 minutos. 1 hora. 48-72 horas. 5 días.

¿Qué prueba in vitro se utiliza para evaluar la hipersensibilidad retardada a nivel celular?. Test de activación de basófilos. Test de transformación linfoblástica. Test de liberación de histamina. ImmunoCAP.

¿Cuál es la causa más común de dermatitis de contacto alérgica?. Infección bacteriana. Contacto directo con alérgenos como níquel o fragancias. Reacción viral. Deficiencia inmunitaria.

¿Qué evalúa el test de activación de basófilos?. La proliferación de linfocitos. La concentración de IgE total. La presencia de anticuerpos IgG4. La activación y liberación de mediadores por los basófilos.

Cuál es la diferencia principal entre pruebas epicutáneas e intradérmicas: Las epicutáneas requieren punción, las intradérmicas no. Las epicutáneas aplican el alérgeno sobre la piel, las intradérmicas lo inyectan bajo la piel. Las intradérmicas se leen antes que las epicutáneas. No presentan ninguna diferencia.

¿Qué indica un test de transformación linfoblástica positivo?. Liberación de histamina. Producción de anticuerpos. Ausencia de proliferación celular. Proliferación positiva de linfocitos ante el alérgeno.

¿Cómo se realiza la prueba de Mantoux?. Aplicando un parche en la piel. Inyectando intradérmicamente un antígeno específico. Extrayendo sangre para análisis. Mediante una muestra de orina.

La hipersensibilidad retardada se caracteriza por: Ser inmediata y mediada por IgE. Ser causada por anticuerpos IgG. No causar inflamación. Ser una respuesta mediada por linfocitos T varias horas después.