TECNICAS COMPLEMENTARIAS EN CULTIVOS CELULARES

¿Qué limitación técnica presenta la detección de micoplasmas mediante tinción con DAPI respecto a la viabilidad?. No puede detectar ADN de micoplasmas muertos. Existe riesgo de falsos positivos por restos celulares que emiten fluorescencia similar. Requiere que las células hospedadoras estén infectadas por virus.

¿Qué ventaja ofrece el uso de iones de plata en el control de la contaminación?. Baja toxicidad celular y alta eficacia contra bacterias, hongos y virus. Alta toxicidad para las células animales. Sirve para detectar mutaciones cromosómicas.

¿Qué alteración celular puede hacer sospechar de una contaminación vírica a pesar de no ver al agente?. Aumento de la tasa de proliferación. Cambio de las células a una morfología filamentosa. Efectos citopáticos como lisis, vacuolización o cuerpos de inclusión.

¿Qué proporción pueden alcanzar los micoplasmas respecto a las células hospedadoras durante su replicación?. Uno por cada diez células. Hasta 1000 micoplasmas por cada célula. Exactamente el mismo número.

¿Qué fuente de contaminación está asociada al uso de sueros y enzimas como la tripsina?. El aire acondicionado del edificio. Los reactivos de origen animal mal controlados. Las superficies de acero inoxidable.

¿Qué tipo de contaminación supone un grave compromiso de viabilidad al introducir líneas inmortales como las células HeLa?. Contaminación química. Contaminación por priones. Contaminación cruzada.

¿Qué se entiende por “microsatélites” en el contexto del perfil genético STR?. Bacterias muy pequeñas que orbitan la célula. Secuencias repetidas de 1 a 6 pares de bases en regiones hipervariables del ADN. Equipos de monitorización remota del laboratorio.

¿Qué medida se recomienda para evitar la contaminación cruzada entre diferentes líneas celulares?. Manipular todas las líneas a la vez en la misma cabina. Manipular en último lugar las líneas de mayor proliferación. Usar los mismos medios para todas las células del laboratorio.

¿Cuál es el método más preciso y estandarizado actualmente para la identificación de líneas celulares humanas?. Observación de la forma celular. Perfil de repeticiones cortas en tándem (STR). Medición del pH del medio.

¿Cuál es el mecanismo de acción de la anfotericina B?. Se une a los esteroles de la membrana fúngica alterando su permeabilidad. Bloquea el ARN ribosómico de los virus. Impide que las células HeLa se dividan.

¿Qué función cumplen los aditivos comerciales como Incuwater-Clean™?. Nutrir a las células del cultivo. Teñir el ADN de los micoplasmas. Prevenir el crecimiento de microorganismos en sistemas acuosos como incubadoras.

¿Cuál es el antimicótico más utilizado para el tratamiento de hongos y levaduras en cultivos celulares?. Estreptomicina. Anfotericina B. Plasmocin.

¿Cuál es el procedimiento recomendado para las superficies de trabajo al finalizar el uso de la cabina?. Limpiarlas únicamente con agua destilada. Dejarlas secar al aire sin intervención. Desinfectarlas con etanol y utilizar luz ultravioleta.

¿Cuál es la función del medio de recuperación tras realizar una electroporación?. Aumentar el voltaje del pulso aplicado previamente. Eliminar el ADN que no ha entrado en la célula. Permitir la reparación de la membrana plasmática tras el pulso eléctrico.

¿Por qué se considera la lipofección como una técnica de transfección muy versátil?. Puede introducir ADN de todas las tallas, ARN y proteínas, incluso in vivo. Porque es la técnica más económica de todas las químicas. Porque no requiere optimización para diferentes tipos celulares.

¿Qué técnica de medida se asocia al análisis de microdeformaciones en materiales rígidos?. Plataforma dinamométrica. Goniómetro digital. Extensómetro.

¿Qué elemento de seguridad es indispensable para manipular vectores virales según el nivel de contención?. Guantes de látex domésticos sin esterilizar. Mascarillas quirúrgicas simples en espacios abiertos. Cabinas de bioseguridad y cumplimiento de protocolos de desinfección.

¿Qué elementos componen esencialmente un vector viral?. Solo el ADN exógeno sin envoltura. El genoma modificado y la estructura del virión que lo rodea. Proteínas de choque térmico y lípidos catiónicos.

¿Qué es la dilución límite en un ensayo de transfección estable?. Añadir la máxima cantidad de antibiótico posible al medio. Diluir las células hasta que quede, estadísticamente, solo una por pocillo. Reducir el tiempo de incubación a menos de 1 hora.

¿Cuál es una ventaja de utilizar adenovirus en terapia génica in vivo?. Se integran de forma permanente en el genoma celular. Pueden infectar eficazmente células que no están en fase de división. No producen ninguna respuesta inmune en el huésped.

¿Qué sucede en un experimento de transducción si el valor de MOI es menor a 1?. Se producirá una transducción parcial, ya que no todas las células recibirán un virus. Todas las células recibirán al menos un virus. Las células morirán por exceso de carga viral.

¿Cuál es el objetivo principal de las técnicas químicas de transfección?. Integrar el ADN en el genoma mediante enzimas virales. Acelerar partículas a alta velocidad con helio. Enmascarar la carga negativa de los ácidos nucleicos para facilitar la endocitosis.

¿Por qué es difícil desarrollar ciertos vectores virales ideales en la práctica?. Porque no existen líneas celulares que acepten ADN exógeno. Porque la expresión de proteínas de replicación viral suele ser tóxica para las células. Debido a que los virus nunca infectan células en cultivo.

¿Cuál es la función principal de la técnica Southern blot tras la selección de colonias?. Contar el número de células vivas. Confirmar la integración estable del ADN exógeno en el genoma. Medir la temperatura del biorreactor.

¿Por qué se utilizan siRNA en experimentos de transfección transitoria?. Para integrar el ADN en el genoma de forma permanente. Para aumentar la producción de proteínas recombinantes. Para silenciar o reducir la expresión de genes de interés de forma específica.

¿Qué porcentaje del material genético transfectado suele integrarse en el genoma en una transfección estable?. El 100% de lo introducido. Un porcentaje muy pequeño; la mayoría permanece como elemento episomal. Exactamente la mitad del plásmido.

Las células unipotentes desempeñan un papel clave en: Desarrollo del sistema nervioso. Mantenimiento de tejidos con alta tasa de renovación. Formación del embrión completo.

Las neuroesferas contienen células que pueden diferenciarse en: Neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. Células musculares. Células epiteliales.

El cigoto se considera una célula: Totipotente. Pluripotente. Multipotente.

La transdiferenciación se diferencia de la reprogramación porque: Utiliza factores de Yamanaka. No pasa por un estado pluripotente. Solo ocurre en embriones.

Las cardiosferas requieren factores como: VEGF y ácido ascórbico. Ácido retinoico y NGF. Colágeno y laminina.

Los ensayos funcionales en neuronas evalúan: La síntesis de colágeno. La transmisión de impulsos eléctricos. La división mitótica.

Las cardiosferas derivan de: Células musculares esqueléticas. Neuronas. Células madre cardíacas o iPSCs.

El ácido retinoico actúa regulando: La expresión génica mediante receptores RAR. La síntesis de colágeno. La división asimétrica.

El uso de vectores no virales permite: Aumentar el riesgo de mutagénesis. Reducir la eficiencia de la transcripción. Evitar la integración en el genoma.

¿Quién descubrió las células madre pluripotentes inducidas (iPSCs)?. Watson y Crick. Shinya Yamanaka. Charles Darwin.

Los métodos integrativos se caracterizan por: Insertar material genético en el genoma. No alterar el ADN. Usar únicamente proteínas.

¿Dónde se encuentran principalmente los condrocitos?. En el tejido nervioso. En el cartílago. En el epitelio intestinal.

Las iPSCs se validan por su capacidad de: Mantenerse indiferenciadas permanentemente. Formar teratomas in vivo. No expresar marcadores de pluripotencia.

Los factores de Yamanaka son: Oct3/4, Sox2, Klf4 y c-Myc. Actina, tubulina, colágeno y elastina. VEGF, FGF, BMP y NGF.