TECNICAS GENERALES

La técnica que consiste en la eliminación de residuos orgánicos e inorgánicos de una superficie, sin asegurar la eliminación de organismos vivos, se denomina: Esterilización. Desinfección de alto nivel. Limpieza. Asepsia.

¿Cuál es el agente químico principal utilizado para llevar a cabo el proceso de limpieza?. Antiséptico. Esterilizante. Detergente. Desinfectante de bajo nivel.

¿Cuáles son los métodos principales para realizar la limpieza del material sanitario con detergentes?. Lavado manual, a máquina o mediante ultrasonidos. Inmersión en lejía, frotado y aclarado. Incineración, autoclave y radiación. Solo mediante lavado automático para asegurar la asepsia.

Tras finalizar el proceso de limpieza manual o automática, ¿con qué tipo de agua se recomienda realizar el último aclarado del material instrumental?. Agua del grifo a temperatura ambiente. Agua destilada o desmineralizada. Agua oxigenada diluida. Agua corriente con solución jabonosa.

¿Cuál es la principal ventaja de utilizar el lavado por ultrasonidos para la limpieza del instrumental sanitario?. Es el único método que consigue la esterilización total del material. Permite limpiar eficazmente zonas de difícil acceso, como articulaciones o ranuras. Sustituye la necesidad de realizar un aclarado posterior con agua destilada. Es el método más económico y rápido para materiales de gran tamaño.

¿Cuál es la principal diferencia entre el proceso de desinfección y el de esterilización?. La desinfección elimina todos los microorganismos, incluidas las esporas, mientras que la esterilización no. La desinfección elimina organismos vivos pero no asegura la eliminación de endosporas. La desinfección solo elimina residuos inorgánicos mediante métodos físicos. La desinfección es un proceso exclusivamente mecánico que no utiliza productos químicos.

¿Cuál es la característica principal que define al proceso de desinfección en comparación con la esterilización?. Elimina toda forma de vida microbiana, incluyendo las esporas. Elimina microorganismos patógenos y formas vegetativas, pero no asegura la eliminación de endosporas. Es un proceso que solo se puede realizar mediante calor seco. Se utiliza exclusivamente para material que va a ser introducido en cavidades estériles.

¿Cómo se define el proceso de limpieza según los protocolos de higiene hospitalaria?. Proceso de destrucción de todos los microorganismos viables. Eliminación de residuos orgánicos o inorgánicos de las superficies sin eliminar necesariamente organismos vivos. Aplicación de productos químicos para eliminar el 100% de las bacterias. Fase posterior a la esterilización para abrillantar el instrumental.

En el mantenimiento del instrumental, ¿Cuál es la función de realizar un aclarado final con agua destilada?. Asegurar que el material sea considerado como estéril de forma inmediata. Eliminar restos de detergente y evitar depósitos de cal o corrosión por minerales. Sustituir el uso de detergentes enzimáticos en el lavado manual. Actuar como un desinfectante de nivel intermedio antes del secado.

¿En qué caso es especialmente recomendado el uso de la limpieza por ultrasonidos?. Cuando el material es de plástico y no soporta altas temperaturas. Para instrumental con diseños complejos, articulaciones o zonas de difícil acceso. Como método único para eliminar endosporas bacterianas. Para la limpieza de superficies grandes como suelos y paredes de quirófano.

Dentro de los métodos de desinfección, ¿Cuáles se consideran métodos físicos?. Detergentes enzimáticos y lejías. Calentamiento, irradiación ultravioleta y ultrasonidos. Uso de alcoholes y aldehídos. Clorhexidina y povidona yodada.

¿Cómo se clasifican los métodos químicos de desinfección según su aplicación en tejidos vivos u objetos inertes?. Físicos y mecánicos. Antisépticos (para piel/mucosas) y desinfectantes (para superficies/objetos). Calor seco y calor húmedo. Esterilizantes y fungicidas.

¿Cuál es la diferencia principal entre un antiséptico y un desinfectante?. El antiséptico se utiliza sobre objetos inertes y el desinfectante sobre tejidos vivos. El antiséptico se utiliza sobre tejidos vivos y el desinfectante sobre objetos inertes o superficies. El antiséptico elimina esporas y el desinfectante no. No existe diferencia, ambos términos son sinónimos en el ámbito hospitalario.

¿A qué grupo de métodos de desinfección pertenecen la ebullición y la pasteurización?. Métodos químicos por inmersión. Métodos físicos por calor húmedo. Métodos mecánicos por ultrasonidos. Métodos físicos por calor seco.

Respecto al uso de la irradiación ultravioleta (UV) como método de desinfección, ¿Qué precaución principal debe tomarse?. Debe aplicarse siempre con el personal presente para vigilar el equipo. No debe utilizarse en presencia de personas, ya que puede causar lesiones en piel y ojos. El material debe estar sumergido en agua destilada durante la irradiación. Solo es efectiva si se combina con el uso de glutaraldehído al 2%.

¿Cuál es el nombre técnico del desinfectante químico comúnmente conocido como lejía y ampliamente utilizado en el medio hospitalario?. Glutaraldehído. Hipoclorito sódico. Clorhexidina al 2%. Peróxido de hidrógeno.

Respecto al uso del hipoclorito sódico como desinfectante en el ámbito hospitalario, ¿Cuál de las siguientes afirmaciones es correcta?. Es un antiséptico de elección para heridas abiertas. Debe utilizarse preferiblemente sobre instrumental metálico de precisión. Se inactiva en presencia de materia orgánica, por lo que requiere limpieza previa. Su nombre comercial más común es el Betadine.

¿Qué proceso garantiza la eliminación de todas las formas de vida microbiana, incluyendo las endosporas bacterianas más resistentes?. Desinfección de alto nivel con glutaraldehído. Esterilización. Limpieza por ultrasonidos. Pasteurización a 90°C.

Dentro de los procesos destinados a la eliminación total de microorganismos y esporas, ¿Cuáles se consideran métodos físicos de esterilización?. Glutaraldehído, óxido de etileno y formaldehído. Calor, irradiaciones y filtración. Detergentes, antisépticos y lejías. Ebullición, pasteurización y desinfectantes clorados.

¿Cuál de los siguientes grupos de agentes se clasifican como métodos químicos de esterilización, indicados para material termolábil?. Calor seco, calor húmedo y radiaciones gamma. Óxido de etileno, glutaraldehído al 2%, formaldehído y peróxido de hidrógeno. Hipoclorito sódico, alcohol de 70° y clorhexidina. Ebullición, pasteurización y filtración.

¿Qué método de esterilización es el más adecuado para tratar instrumental clínico que no soporta altas temperaturas (material termolábil)?. Autoclave de vapor a 134°C. Radiaciones infrarrojas. Óxido de etileno. Horno Pasteur.

¿Cuál de los siguientes agentes se considera un método químico de esterilización "en frío", especialmente indicado para endoscopios y material óptico?. Hipoclorito sódico al 5%. Glutaraldehído al 2%. Alcohol etílico de 96°. Povidona yodada.

El óxido de etileno es un método de esterilización química muy eficaz, pero ¿Cuál es su principal inconveniente en el medio hospitalario?. No es capaz de eliminar endosporas. Es un gas tóxico, inflamable y requiere un largo periodo de aireación del material. Deteriora gravemente los materiales de plástico y goma. Solo puede utilizarse a temperaturas superiores a los 100°C.

Dentro de los métodos físicos de esterilización, ¿Cuál es el que utiliza aire caliente y requiere temperaturas de entre 160°C y 170°C?. Autoclave de vapor. Radiación ultravioleta. Calor seco o estufa Pasteur. Microondas.

¿Qué método de esterilización química utiliza una cámara de vacío y bajas temperaturas, siendo muy seguro para el personal al descomponerse en agua y oxígeno?. Formaldehído. Óxido de etileno. Plasma de peróxido de hidrógeno. Inmersión en fenoles.

¿Qué parámetros de temperatura y tiempo son los más habituales para la esterilización por calor seco (Horno Pasteur o Estufa)?. 100°C durante 10 minutos. 121°C durante 20 minutos. 160°C - 170°C durante aproximadamente 2 horas. 200°C durante 5 minutos.

En la esterilización por calor húmedo (Autoclave), ¿Cuáles son los ciclos estándar de temperatura y presión más utilizados?. 100°C a 1 atmósfera de presión. 121°C (a 1 atm de presión sobre la normal) o 134°C (a 2 atm de presión sobre la normal). 160°C a 3 atmósferas de presión. 90°C con humedad relativa del 50%.

Sobre la esterilización por radiaciones ionizantes (Rayos Gamma), ¿Qué precaución o característica es correcta?. Es un método que el auxiliar de enfermería realiza diariamente en el control de planta. Requiere instalaciones especiales con blindaje de hormigón o plomo debido a su alta peligrosidad. Solo es eficaz si el material está húmedo. No se puede utilizar en materiales plásticos porque los funde.

Sobre el método de esterilización por radiaciones ionizantes (Rayos Gamma), ¿Qué afirmación es correcta?. Se utiliza habitualmente en las centrales de esterilización de los hospitales por su bajo coste. Es el método de elección para esterilizar tejidos humanos, fármacos y material de un solo uso en industrias especializadas. No requiere medidas de protección radiológica al no dejar residuos. Se considera un método de calor húmedo por la energía que desprende.

¿Cuál es la principal ventaja física de las radiaciones ionizantes (Rayos Gamma) en el proceso de esterilización industrial?. Su nula peligrosidad para los operarios. Su alto poder de penetración, que permite esterilizar el material dentro de su envase definitivo. Que requiere tiempos de exposición muy cortos, de apenas unos segundos. Que puede aplicarse sobre tejidos vivos como método antiséptico.

¿Cuál es la temperatura y presión estándar en un ciclo normal de autoclave para esterilizar material metálico y textil?. 100°C y 1 atmósfera de presión. 121°C y 1 atmósfera de presión (sobre la presión atmosférica normal). 170°C sin presión, solo aire caliente. 63°C durante 30 minutos con humedad.

Un endoscopio es un material delicado que no soporta el calor del autoclave (termolábil). ¿Cómo debe esterilizarse según la normativa hospitalaria?. Mediante calor seco a 160°C durante 2 horas. Con métodos químicos "en frío" como el Óxido de Etileno o Glutaraldehído al 2%. Lavándolo exclusivamente con agua destilada y jabón neutro. Sometiéndolo a radiación ultravioleta en la sala de enfermería.

¿Por qué se dice que el Óxido de Etileno es un método de esterilización complejo y que requiere precauciones especiales?. Porque no es capaz de eliminar endosporas bacterianas. Porque requiere un largo periodo de aireación para eliminar su toxicidad y riesgo de inflamabilidad. Porque necesita temperaturas superiores a los 200°C para ser eficaz. Porque se utiliza exclusivamente sobre la piel del paciente en quirófano.

¿Cuál es la finalidad principal de utilizar agentes como el óxido de etileno, el glutaraldehído o el plasma de peróxido de hidrógeno en el hospital?. Desinfectar superficies grandes como suelos y paredes de forma económica. Esterilizar instrumental termolábil (sensible al calor) mediante procesos a baja temperatura o "en frío". Sustituir a la limpieza manual del instrumental quirúrgico. Actuar como antisépticos de elección para la higiene de manos del personal.

¿Cuál es el único método que garantiza con total seguridad que el proceso de esterilización ha sido eficaz y ha eliminado toda vida microbiana?. Los indicadores físicos (manómetros y termómetros). El cambio de color de la tira química adhesiva. Los indicadores biológicos (ampollas con esporas). La comprobación visual de que el paquete está seco.

¿En qué consisten los indicadores biológicos utilizados en el autoclave?. En tiras de papel que cambian de color al detectar humedad. En dispositivos que contienen esporas vivas de microorganismos muy resistentes (Geobacillus stearothermophilus). En sensores que miden la presión atmosférica del hospital. En un cultivo de la sangre del paciente tras la cirugía.

En la central de esterilización recibimos un laparoscopio (instrumental con componentes ópticos y plásticos) que se dañaría irreversiblemente a temperaturas superiores a 60°C. ¿Cuál sería el método de elección para su procesamiento?. Esterilización por calor seco a 160°C durante 120 minutos. Esterilización por calor húmedo en autoclave a 121°C. Esterilización "en frío" mediante gas de óxido de etileno o plasma de peróxido de hidrógeno. Desinfección por ebullición a 100°C durante 15 minutos.

¿Cuál de las siguientes es una consecuencia técnica derivada de una deficiente limpieza o esterilización en el ámbito clínico y de laboratorio?. Un aumento innecesario del gasto eléctrico de la central. La aparición de errores importantes en los cálculos, experimentos o resultados de analíticas. Que el instrumental pese más debido a los restos de suciedad. La obligatoriedad de jubilar al personal encargado del proceso.

¿Qué tipo de microscopio utiliza un condensador que bloquea la parte central del haz de luz, creando un cono hueco que hace que la muestra aparezca brillante sobre un fondo negro?. Microscopio de campo claro. Microscopio de campo oscuro. Microscopio invertido. Microscopio electrónico.

El microscopio óptico común, donde la luz pasa a través de la muestra y se concentra en el objetivo formando una imagen ampliada sobre un fondo iluminado, se denomina: Microscopio de contraste de fases. Microscopio de campo claro. Microscopio de luz polarizada. Microscopio de fluorescencia.

¿Cuál es la utilidad principal del microscopio de contraste de fases en el laboratorio clínico?. Observar muestras coloreadas con tinción de Gram. Observar células vivas, microorganismos y procesos biológicos (como la división celular) sin necesidad de teñirlos. Observar estructuras óseas de gran grosor. Realizar exclusivamente frotis sanguíneos.

El microscopio de Contraste Interferencial Diferencial (DIC o Nomarski) se caracteriza por utilizar luz polarizada para crear una imagen con: Colores fluorescentes. Un halo de luz brillante alrededor de la muestra. Efecto de relieve o tridimensionalidad. Fondo totalmente negro.

¿En qué tipo de microscopio los objetivos se sitúan por DEBAJO de la platina y la fuente de luz por ENCIMA, siendo ideal para la micromanipulación y la fertilización in vitro?. Microscopio óptico compuesto. Microscopio invertido. Microscopio de luz polarizada. Microscopio estereoscópico.

La propiedad de algunos cuerpos (como el cartílago) de desdoblar un rayo de luz polarizada en dos rayos perpendiculares se denomina: Fluorescencia. Birrefringencia. Difracción. Refracción simple.

Respecto a la observación de virus en el laboratorio clínico, ¿Qué afirmación es correcta?. El microscopio de campo oscuro es el ideal por su fondo negro. El microscopio de contraste de fases permite ver su morfología gracias al halo de luz. Ningún microscopio óptico tiene resolución suficiente para ver virus; se requiere un microscopio electrónico. Se observan perfectamente en el microscopio invertido durante una fecundación in vitro.

Si un técnico necesita observar una muestra transparente y gruesa, buscando una imagen que presente un marcado efecto de relieve (3D) para diferenciar estructuras, utilizará: Microscopio de campo claro tras una tinción de Gram. Microscopio de contraste de fases. Microscopio de Contraste Interferencial Diferencial o Nomarski. Microscopio de luz polarizada.

En el microscopio invertido, una de las características que lo hace único para la micromanipulación es que: La imagen se ve derecha y no invertida. El condensador y la fuente de luz se sitúan por encima de la platina. Utiliza aceite de inmersión en todos sus objetivos por defecto. Solo sirve para muestras muertas y teñidas.

¿Qué técnica de microscopía elegirías para observar células vivas que no pueden ser teñidas, sabiendo que la imagen final mostrará un "halo de luz brillante" alrededor de las estructuras?. Microscopio de campo claro. Microscopio de luz polarizada. Microscopio de contraste de fases. Microscopio electrónico de barrido.

Al trabajar con muestras que contienen materiales birrefringentes (como cristales o fibras de colágeno), el método de elección es: La microscopía de luz polarizada. El microscopio invertido de campo claro. El microscopio de campo oscuro para resaltar los bordes. La tinción con azul de metileno y observación en campo claro.

¿En qué propiedad física se basa la microscopía de fluorescencia?. En la capacidad de la muestra para reflejar la luz visible de manera infinita. En absorber luz de una determinada longitud de onda y emitirla con menor energía y mayor longitud de onda. En la capacidad de la muestra para atravesar el vidrio del objetivo. En el desdoblamiento de un rayo de luz en dos rayos perpendiculares.

Sobre el microscopio de luz ultravioleta (UV), ¿Cuál de las siguientes afirmaciones es CORRECTA?. Utiliza elementos ópticos de vidrio común, ya que este transmite muy bien la luz UV. La luz UV tiene una longitud de onda muy alta, por lo que su resolución es baja. Requiere elementos ópticos de cuarzo y filtros especiales para proteger la retina del usuario. No permite detectar ni cuantificar ácidos nucleicos.

¿Qué diferencia existe entre la fluorescencia y la fosforescencia según los apuntes técnicos?. No hay diferencia, son sinónimos. La fosforescencia es la capacidad de reflejar la luz durante un periodo de tiempo largo tras cesar la exposición a la fuente luminosa. La fluorescencia dura mucho más tiempo que la fosforescencia tras apagar la luz. La fosforescencia solo ocurre en el microscopio electrónico.

¿Cuál es la fuente de luz característica que utiliza un microscopio confocal?. Una lámpara de arco de xenón de baja potencia. Un sistema de rayos láser muy potente que permite seleccionar la longitud de onda. Luz solar filtrada por un condensador de cuarzo. Una bombilla halógena convencional.

¿Qué ventaja principal ofrece la microscopía confocal frente a la de fluorescencia convencional?. Es mucho más barata y fácil de mantener. Permite seccionar ópticamente la muestra y observar procesos dinámicos como la apoptosis o fagocitosis. Solo permite ver muestras muertas y fijadas en parafina. No requiere el uso de fluorocromos o fluoróforos.

¿Cómo se denomina técnicamente a la parte de la molécula responsable de que se produzca el fenómeno de la fluorescencia?. Fotóforo. Fluorocromo o fluoróforo. Cromógeno. Bioindicador.

En la microscopía de fluorescencia, ¿Qué relación existe entre la radiación que absorbe la muestra y la que emite?. La radiación emitida tiene siempre mayor energía que la absorbida. La muestra absorbe una radiación de determinada longitud de onda y emite otra de MAYOR longitud de onda (menor energía). La longitud de onda no varía, solo cambia el brillo. La radiación de absorción es siempre de color rojo y la de emisión de color azul.

¿Por qué es imprescindible conocer las propiedades de absorción del fluorocromo antes de iniciar la observación?. Porque la radiación de absorción determinará la fuente de luz a utilizar y la longitud de onda de emisión (el color observado). Para saber si la muestra va a explotar al contacto con la luz. Solo para calcular el tiempo que tardará en caducar la muestra. No es necesario conocerlo, el microscopio lo detecta automáticamente sin configuración previa.

¿Cuál es la principal característica que permite al microscopio electrónico alcanzar una resolución 40.000 veces superior al óptico?. El uso de lentes de cristal de cuarzo de alta pureza. El uso de un haz de electrones en lugar de un haz de luz. La aplicación de colorantes fluorescentes más potentes. La capacidad de aumentar el tamaño de la muestra físicamente.

En la microscopía electrónica, ¿de qué factores depende el aumento obtenido si no se cambian los objetivos?. Del tipo de muestra y de la cantidad de colorante utilizado. Del diámetro del haz de electrones y del voltaje aplicado para acelerarlos. Únicamente del tamaño de la muestra. De la luz ambiental que haya en el laboratorio.

Sobre el Microscopio Electrónico de Transmisión (MET), ¿Cómo se interpretan las zonas claras y oscuras de la imagen en 2D?. Las zonas más claras son las más densas y las oscuras las menos densas. Las zonas más densas ofrecen más resistencia a los electrones y aparecen más oscuras. El color oscuro indica que la muestra está viva. No hay zonas oscuras, toda la imagen es fluorescente.

¿Qué tipo de microscopio electrónico permite obtener imágenes en 3D de la superficie de la muestra sin necesidad de realizar cortes tan finos?. Microscopio electrónico de transmisión (MET). Microscopio electrónico de barrido (MEB). Microscopio óptico de campo oscuro. Microscopio de luz ultravioleta.

¿Para qué utilidad clínica o de investigación es IMPRESCINDIBLE el uso del microscopio electrónico?. Para la observación y caracterización de virus. Para realizar un recuento de glóbulos rojos en sangre. Para observar la movilidad de parásitos en heces. Para realizar una tinción de Gram básica.

¿Qué tipo de microscopio utiliza una sonda con el grosor de un átomo en su punta y permite la manipulación de átomos individuales?. Microscopio electrónico de transmisión. Microscopio de sonda de barrido. Microscopio de contraste de fases. Microscopio invertido.

En el microscopio de Efecto Túnel (STM), ¿Cuál es el requisito indispensable que debe cumplir la muestra para poder ser observada?. Debe estar viva y en movimiento. Debe ser conductora de la electricidad. Debe ser transparente y muy gruesa. Debe estar teñida con fluorocromos.

¿Cuál es la principal ventaja del Microscopio de Fuerza Atómica (AFM) frente al de Efecto Túnel (STM)?. Que permite observar muestras NO conductoras de la electricidad. Que es mucho más barato y sencillo de usar. Que utiliza un haz de rayos láser en lugar de una sonda. Que solo sirve para ver virus en 2D.

Sobre el Microscopio de Fuerza Atómica (AFM) en modo "contacto", ¿Qué inconveniente técnico presenta según la ficha?. No tiene resolución suficiente para ver átomos. Requiere que la muestra sea metálica obligatoriamente. Puede resultar agresivo y deformar la superficie de la muestra. No puede generar imágenes tridimensionales.

¿Cuál es la función principal del aceite de inmersión cuando se utiliza el objetivo de 100x?. Engrasar las lentes para que no se desgasten. Evitar la refracción de la luz al tener un índice de refracción similar al vidrio, mejorando la resolución. Teñir la muestra de forma automática durante la observación. Desinfectar la platina después de usar muestras biológicas.

Para realizar la limpieza de las lentes del microscopio tras usar aceite de inmersión, ¿Qué material es el adecuado según el protocolo de laboratorio?. Un pañuelo de papel común o papel higiénico. Papel especial para óptica y, si es necesario, una mezcla de alcohol-éter o xilol. Algodón humedecido con agua del grifo. Una gasa estéril con lejía.

¿Con qué nombre se conoce a la pieza giratoria del microscopio que sujeta los diferentes objetivos y permite cambiarlos?. Platina. Revólver. Condensador. Brazo o estativo.

Si estamos observando una muestra y queremos realizar un enfoque fino y preciso a gran aumento, ¿Qué mando debemos utilizar?. Tornillo macrométrico. Tornillo micrométrico. Diafragma. Carro móvil.

¿Cuál es la fórmula para calcular el aumento total de una imagen observada al microscopio?. Aumento del objetivo + Aumento del ocular. Aumento del objetivo x Aumento del ocular. Aumento del objetivo / Aumento del ocular. Solo depende del número de lentes del revólver.

¿Cómo se denomina a la distancia mínima que debe existir entre dos puntos para que el microscopio los pueda distinguir como objetos separados?. Límite de resolución o poder de resolución. Campo de visión. Distancia focal. Apertura numérica.

Cuando la imagen observada presenta una deformación en los bordes o falta de nitidez en los colores por defectos en las lentes, hablamos de: Birrefringencia. Aberraciones (cromáticas o esféricas). Efecto túnel. Contraste de fases.

¿Qué elemento del microscopio regula la cantidad de luz que entra en el condensador para mejorar el contraste de la muestra?. El revólver. El diafragma. El tornillo macrométrico. El ocular.

Sobre el sistema de iluminación, ¿Qué función cumple el condensador?. Ampliar la imagen de la muestra. Concentrar el haz de luz sobre la preparación. Cambiar el color de la muestra. Sujetar el portaobjetos.

¿Qué sucede con el campo de visión (la zona de la muestra que vemos) a medida que aumentamos el número de aumentos del objetivo?. El campo de visión aumenta (vemos más superficie). El campo de visión disminuye (vemos menos superficie pero con más detalle). El campo de visión no varía. La imagen desaparece por completo.