Técnicas de identificación de poblaciones celulares

¿Qué es la citometría de flujo?. Un método de separación celular sencillo, desarrollado para el fraccionamiento de linfocitos T y B. Una técnica de análisis de poblaciones celulares en suspensión. Una técnica que elimina las poblaciones celulares no deseadas mediante la capacidad lítica del complemento. Un método para la separación celular que no requiere componentes magnéticos, sino microesferas de plástico no magnéticas.

¿Cómo se realizan las mediciones en la citometría de flujo?. Sobre determinados grupos de células. Sobre cada célula. Sobre una selección de células. Sobre un promedio de la población.

Con relación a los requisitos que debe cumplir una suspensión celular que se analizará mediante citometría de flujo, indica cuál de los siguientes es falso: Que sea representativa del tejido objeto de análisis. Que sea una suspensión de alta calidad, con muchos agregados y restos y alto coeficiente de variación. Que preserve las características celulares. Que contenga suficiente muestra celular.

¿Qué nombre reciben y a qué se refieren los dos parámetros físicos de las células que se cuantifican con el citómetro de flujo?. Forward scattering (dispersión lateral a 90 grados) y side scattering (dispersión frontal a 0 grados). Forward scattering (dispersión lateral a 0 grados) y side scattering (dispersión frontal a 90 grados). Forward scattering (dispersión frontal a 90 grados) y side scattering (dispersión lateral a 0 grados). Forward scattering (dispersión frontal a 0 grados) y side scattering (dispersión lateral a 90 grados).

¿Qué sistema de los que componen el citómetro de flujo contiene filtros para eliminar y separar la luz recogida?. El sistema electrónico. El sistema de iluminación. El sistema hidráulico. El sistema óptico.

¿Qué operaciones incluye la calibración y puesta a punto del citómetro?. Control de calidad diario y verificación de la alineación de cada láser respecto de la celda de flujo. Calibración del láser y verificación de la alineación de cada láser respecto de la celda de flujo. Calibración del láser, control de calidad diario y verificación de la alineación de cada láser respecto de la celda de flujo. Calibración del láser y control de calidad diario.

¿Qué fase del procedimiento de mantenimiento del citómetro finaliza con el apagado de la bomba del tanque de la solución de flujo, el ordenador y el láser?. La que tiene lugar durante las determinaciones analíticas. La que tiene lugar tras la última determinación analítica. La que se realiza tras cada ronda de determinaciones analíticas. La que se produce antes de comenzar las determinaciones analíticas.

¿En qué consiste la información obtenida del análisis mediante citometría de flujo?. El porcentaje de células positivas y negativas para cada canal, y la intensidad media de fluorescencia. La concentración de células y partículas, y el porcentaje de células positivas y negativas para cada canal. La concentración de células y partículas, y la intensidad media de fluorescencia. La concentración de células y partículas, el porcentaje de células positivas y negativas para cada canal, y la intensidad media de fluorescencia.

¿Qué nombre recibe el tipo de presentación de los resultados del citómetro de flujo en la que cada célula o evento aparecen representados como un punto?. Histograma monoparamétrico. Diagrama de dispersión o dot-plot. Histograma biparamétrico. de contornos o contour-plot.

¿Qué elementos a escala subcelular se pueden analizar mediante citometría de flujo?. Proteínas, ácidos nucleicos e inmunocomplejos. Protoplastos vegetales, células animales, levaduras y bacterias. Organismos pluricelulares, esferoides e hibridomas. Viriones, liposomas, cromosomas, orgánulos y núcleos.

¿Qué nombre reciben los linfocitos para la determinación de los cuales se utiliza un anticuerpo monoclonal anti-CD3?. Linfocitos B totales. Linfocitos T totales. Linfocitos B. Linfocitos T y B.

Con relación al fenotipaje de leucemias y linfomas, indica cuál de las afirmaciones siguientes es falsa: La técnicas de citometría de flujo para evaluar la respuesta al tratamiento en el mieloma múltiple no tienen suficiente sensibilidad para identificar tempranamente pacientes que podrían beneficiarse de nuevas terapias postrasplante. El nivel de sensibilidad de la citometría de flujo es de hasta 0,001%. Las técnicas de citometría de flujo tienen la sensibilidad necesaria para poder detectar células plasmáticas tumorales tres meses después del trasplante. La citometría de flujo tiene especial relevancia en el estudio de síndromes linfoproliferativos.

¿Cómo se puede realizar el inmunofenotipaje de superficie de cualquier célula?. Marcando antígenos de su membrana con anticuerpos monoclonales o policlonales conjugados con fluorocromos. Marcando anticuerpos de su membrana con antígenos monoclonales o policlonales conjugados con fluorocromos. Marcando anticuerpos de su membrana con fluorocromos conjugados con antígenos monoclonales o policlonales. Marcando fluorocromos de su membrana con anticuerpos monoclonales o policlonales conjugados con antígenos.

Con relación al inmunofenotipado de superficie, indica cuál de las siguientes aplicaciones es falsa: Identificación de alérgenos circulantes y detección de degranulación provocada por basófilos. Diagnóstico de deficiencias en moléculas de adhesión. Detección de leucocitos activados en sangre periférica o en preparaciones celulares estimuladas. Detección de aloanticuerpos y autoanticuerpos circulantes o unidos a células.

¿Cuál es la principal ventaja del empleo de microesferas con distintas intensidades de fluorescencia para detectar y cuantificar proteínas solubles mediante citometría de flujo?. La posibilidad de determinar múltiples muestra al mismo tiempo, a partir de una sola proteína. La posibilidad de determinar una sola proteína, a partir de múltiples muestras. La posibilidad de determinar múltiples proteínas al mismo tiempo, a partir de una sola muestra. La posibilidad de determinar múltiples proteínas al mismo tiempo, a partir de dos muestras.

Con relación a la depleción por complemento, indica cuál de las afirmaciones siguientes es falsa: Es una técnica rápida, pero cara. No causa daños a las células. Produce buenos rendimientos. Es una técnica rápida y barata.

¿En qué consiste la selección positiva de la separación celular inmunomagnética?. En que la población deseada es marcada químicamente y aislada en la fracción celular retenida. En la eliminación de las células no deseadas mediante marcado magnético y elución de la fracción que contiene la población deseada no marcada. En que la población deseada es marcada magnéticamente y aislada en la fracción celular retenida. En que la fracción celular retenida es marcada magnéticamente y aislada en la población deseada.

Afirmación correcta para considerar que una suspensión celular es adecuada como muestra. No debe tener agregados. Todas son correctas. Debe ser representativa del tejido estudiado. Debe preservar convenientemente las características celulares.

¿Durante cuánto tiempo se debe incubar la suspensión celular en la separación con microesferas de plástico no magnéticas?. 20-30 minutos. 10-20 minutos. 5-10 minutos. 5-30 minutos.

Función de los filtros dicroicos. Dispersan la luz de determinadas longitudes de onda. Impiden el paso de determinadas longitudes de onda. Absorben luz de determinada longitud de onda. Reflejan la luz de determinadas longitudes de onda.

La luz dispersada en ángulo recto (SSC) es proporcional a: El tamaño de la célula. La complejidad del interior celular. Las características antigénicas de la célula. Ninguna opción es correcta.

¿Cuál es la fuente de luz en un citómetro de flujo?. Todas son correctas. Un láser. Una bombilla de luz blanca. Una bombilla de hidrógeno.

¿Cuál es la mayor aplicación en la actualidad de la citometría de flujo?. Caracterización de diferentes subpoblaciones de linfocitos. Analizar grandes cantidades de células de un modo multiparamétrico. Realización de estudios funcionales con distintas poblaciones celulares. Ninguna es correcta.

El citómetro de flujo se basa en hacer pasar una ______________ u otras partículas, alineadas y de una en una, a gran velocidad delante de uno o varios __________ que recogen y miden diversas características ________________. Suspensión de células - detectores - físicas y/o químicas. Célula - detectores - físicas. Célula - amplificadores - físicas y/o químicas. Suspensión de células - láseres - físicas y/o químicas.

La separación de poblaciones celulares se realiza mediante el. Separador de células activado por fluorescencia. Separador de poblaciones activado por fluorescencia. FACS. A y C son correctas.

Componentes del citómetro. Sistema hidráulico. Sistema de iluminación. Sistema electrónico. Sistema óptico. Sistema de adquisición y análisis de datos.

La calibración y puesta en marcha del citómetro consta de (indica la incorrecta). Calibración del láser. Control de calidad diario. Verificación de la alineación de cada láser respecto de la celda de flujo. Controles conocidos para monitorizar la reproducibilidad.

El control de calidad diario utiliza(indica la incorrecta). Controles conocidos para monitorizar la reproducibilidad. Controles negativos. Controles positivos. Patrones de muestra problema.

La verificación de la alineación de cada láser respecto a la celda de flujo se realiza con. Microesferas multicolores fluorescentes. Controles conocidos. Patrones de normalidad. Estándares de normalidad.

En qué ámbito NO se utiliza la citometría de flujo. Rutina clínica. Investigación clínica. Microbiología clínica y básica. Bioquímica clínica.

El inmunofenotipado de superficie. Identifica subpoblaciones celulares mediante Ac monoclonales. Identifica subpoblaciones celulares mediante Ag monoclonales. Identifica subpoblaciones celulares mediante Ag policlonales. Identifica subpoblaciones celulares mediante Ac policlonales.

Detección de proteínas de superficie con Ac monoclonales. LT totales. LT cooperadores. LT citotóxicos. LB.

Relaciona, fenotipaje de leucemias y linfomas. Detección de la enfermedad mínima residual. Evaluar la respuesta al tratamiento en el mieloma múltiple. Estudio de síndromes linfoproliferativos. Estudiar la expresión de inmunoglobulinas.