Tema 24 - Esterilización

En términos operativos, la esterilización se define como: Eliminación de microorganismos patógenos, sin garantizar esporas. Reducción de la carga microbiana hasta niveles seguros clínicamente. Inhibición del crecimiento bacteriano sin destrucción total. Destrucción de todos los microorganismos, incluidas las formas de resistencia (esporas).

Respecto a la relación entre desinfección y esterilización, ¿qué afirmación es correcta?. Un objeto desinfectado siempre está esterilizado. Todo objeto esterilizado está desinfectado, pero no todo objeto desinfectado está esterilizado. Esterilización y desinfección son equivalentes si se usan biocidas de alto nivel. La desinfección elimina esporas si se prolonga el tiempo.

El Nivel de Garantía de Esterilidad (SAL) citado en el tema se corresponde con una probabilidad de microorganismo viable de: 1 en 1.000.000. 1 en 100.000. 1 en 10.000. 1 en 1.000.

¿Cuál de las siguientes opciones corresponde a un método físico de esterilización mencionado?. Glutaraldehído al 2%. Óxido de etileno. Filtros microporosos. Ácido peracético.

Antes de esterilizar material séptico o contaminado, el tema enfatiza que debe: Secarse al aire y envolverlo directamente. Someterse a limpieza previa, ya que la esterilización no sustituye la limpieza. Pasar siempre por un ciclo “flash” para reducir biocarga. Desinfectarse químicamente y omitirse la limpieza.

La esterilización por calor húmedo en autoclave se basa principalmente en: Oxidación de proteínas por aire caliente. Radiación ionizante que lesiona materia celular. Filtración por tamaño de poro. Vapor saturado a presión que provoca alteraciones en proteínas celulares.

En un autoclave, la correspondencia indicada en el tema para 2 kg de presión es: 120 °C (≈ 1 atm). 134 °C (≈ 2 atm). 144 °C (≈ 3 atm). 126 °C (≈ 2 atm).

El test de Bowie-Dick se utiliza principalmente para comprobar: Letalidad microbiológica mediante esporas. Viraje de indicadores por temperatura alcanzada. Presencia de residuos químicos postproceso. Ausencia de aire/gases no condensables y correcta penetración del vapor (prueba de vacío).

Según el documento, el Bowie-Dick se realiza (en el ejemplo descrito) con un ciclo a: 121 °C durante 15 minutos. 134 °C durante 10 minutos. 134 °C durante 3 minutos. 144 °C durante 1 minuto.

¿Cuál se considera un inconveniente del autoclave destacado en el tema?. No permite automatización del proceso. No puede esterilizar textiles ni gasas. No admite control del ciclo por registros. Puede deteriorar materiales de goma/plástico y afectar instrumental de filo.

La esterilización “flash” se caracteriza por: Ser el método recomendado para esterilización rutinaria. Exigir empaquetado complejo para mantener esterilidad prolongada. Utilizar radiación gamma para ciclos urgentes. Resolver urgencias, no recomendándose su uso como método de rutina.

En esterilización por calor seco, el mecanismo de acción indicado incluye: Hidratación y condensación del vapor sobre el material. Ruptura por cavitación en ultrasonidos. Ionización por radiación beta. Oxidación física y/o coagulación de proteínas por acción exclusiva del calor.

El flameado (calor seco) se aplica típicamente a: Material textil (paños, gasas, ropa). Material de goma termosensible. Material plástico termolábil. Material metálico (p. ej., asas de siembra), expuesto a la llama.

En el horno de Pasteur/estufa Poupinel, ¿qué combinación tiempo-temperatura aparece en el tema como referencia?. 180 °C durante 30 minutos. 170 °C durante 30 minutos. 160 °C durante 60 minutos. 150 °C durante 60 minutos.

Respecto al calor seco, una limitación destacada es que: No sirve para material termorresistente. Penetra con facilidad en aceites y polvos. La penetración del aire caliente es lenta y desigual, requiriendo tiempos prolongados. Requiere envoltorios porosos como el autoclave.

La esterilización por radiaciones ionizantes (radiación en frío) se describe como basada en: Filtración por membrana microporosa. Oxidación por aire caliente. Rayos cargados de energía (iones) que lesionan materia biológica. Neutralización por aldehídos a baja temperatura.

Según el texto, las radiaciones gamma se asocian con: Proceso barato sin necesidad de protección del personal. Esterilización de termosensibles; es cara y requiere protección especial. Uso habitual para “flash” en quirófano. Uso exclusivo para líquidos y medios de cultivo.

En la descripción aportada, la esterilización por rayos gamma puede requerir (según el tema) del orden de: 30–60 minutos. 1–2 horas. 3–8 horas (según humedad y temperatura). 12–24 horas.

Sobre rayos ultravioleta, el documento señala como condición práctica: Distancia del emisor a 5–10 cm del material. Distancia aproximada de 40 cm de la superficie. Necesidad de inmersión del material en solución activadora. Necesidad de empaquetado hermético para evitar recontaminación.

¿Qué afirmación sobre rayos ultravioleta encaja con el tema?. Son altamente eficaces por llegar uniformemente a todas las superficies. Se recomiendan como método principal en central de esterilización. Tienen inconvenientes (no llegan uniformemente a todas las superficies), por lo que se usan poco. Esterilizan igual que el autoclave, pero sin presión.

La esterilización por productos químicos se menciona con una precaución clave: No requiere control alguno si el tiempo se cumple. Solo puede aplicarse a material termorresistente. Es siempre inocua para tejidos a contacto inmediato. Debe evitarse que queden residuos; sin aireación adecuada pueden producir lesiones/irritación.

El óxido de etileno se describe en el tema como: Un líquido no inflamable e inocuo por inhalación. Un oxidante que siempre se usa puro para aumentar eficacia. Un gas incoloro, tóxico y altamente inflamable, que se presenta diluido con gases inertes para reducir riesgo. Un método físico basado en presión y temperatura.

En relación con la acción bactericida del óxido de etileno, el documento indica que depende de: Solo de la temperatura de exposición. Solo de la humedad relativa. Solo del tiempo de exposición. Concentración del gas, temperatura, humedad relativa y tiempo de exposición.

Entre los materiales/indicaciones citadas para óxido de etileno, se incluye: Polvos y sustancias oleosas (aceites libres de agua, parafina, grasas), además de vidrio/porcelana/material de laboratorio. Exclusivamente textiles (gasas y paños). Únicamente instrumental metálico de filo. Solo material que soporte 180 °C sin degradación.

La esterilización por plasma de peróxido de hidrógeno se caracteriza (según el tema) por: Requerir aireación prolongada postciclo. Permitir empaquetado estándar en celulosa/algodón. Ciclo rápido (aprox. 30 minutos) y baja temperatura, con difusión de H₂O₂ en fase plasma. Ser el método más barato disponible en hospital.

Un inconveniente remarcado del plasma gas es: Genera residuos tóxicos persistentes. Esteriliza con ciclos de 7–10 horas como mínimo. No permite monitorización del proceso. No se puede empaquetar el material y se describe como corrosivo/caro.

El documento menciona que el plasma: Es tóxico para el medio ambiente por subproductos clorados. No es tóxico para el medio ambiente y se convierte en H₂O y O₂. Se neutraliza con óxido nitroso. Requiere siempre ventilación reforzada por formaldehído.

El glutaraldehído al 2% se describe como: Antiséptico cutáneo de elección para piel intacta. Agente de radiación en frío. Bactericida muy potente capaz de destruir esporas, hongos y virus; usado por inmersión para desinfección y también para esterilización. Indicador colorimétrico para control químico.

Sobre el formaldehído, el tema indica que en caliente puede usarse en: Autoclave de vapor saturado con prevacío. Estufa eléctrica (p. ej., tipo Marion) emitiendo vapores, con tiempos mínimos del orden de 7–10 horas. Horno de Pasteur a 180 °C durante 30 minutos. Filtración por membrana de 0,22 μm.

Se menciona la esterilización aeróbica por ozono como técnica para: Esterilizar exclusivamente instrumental óptico por inmersión. Esterilizar tejidos humanos implantables. Esterilizar/ambientalizar quirófanos, aire del ambiente, habitaciones y zonas comunes mediante difusión. Sustituir el control biológico en autoclaves.

El control físico del ciclo de esterilización incluye, según el tema: Revisión de registros de presión, tiempo y temperatura (gráfica o tira de impresora) antes de extraer la carga. Uso exclusivo de tiras colorimétricas adhesivas. Uso exclusivo de esporas atenuadas en ampollas. Solo inspección visual del embalaje.

Si el control físico (registros de presión/tiempo/temperatura) no es correcto, el documento indica que se debe: Reprocesar únicamente el indicador químico, manteniendo la carga. Alargar la caducidad por doble barrera. Guardar el material y usarlo antes de 24 horas. Desechar el contenido del ciclo (no liberar la carga) y reesterilizar.

Otro control físico citado consiste en introducir en la cámara: Un detector ambiental de óxido de etileno. Un paquete con esporas de B. subtilis. Un sensor térmico/termómetro que registra las temperaturas alcanzadas. Un test Bowie-Dick impreso con algodón.

Una limitación del control físico con termómetro/sensor (según se describe) es que: No registra temperaturas, solo presión. Si está en una zona concreta, puede no reflejar la temperatura alcanzada en distintos puntos de la carga. Sustituye siempre al control biológico semanal. Solo sirve para ciclos de óxido de etileno.

El control químico se basa en: Ampollas con esporas que luego se siembran en cultivo. Registro gráfico del esterilizador (tiempo-presión-temperatura). Indicadores colorimétricos (tiras/cintas) que viran si se alcanzan condiciones determinadas. Medición del nivel de ozono residual ambiental.

Según el documento, los indicadores químicos descritos están compuestos por franjas con: Proteínas desnaturalizables por presión. Sales metálicas que cambian de color al alcanzar ciertas temperaturas (y, en algunos, más parámetros). Alcoholes polihidroxilados que se evaporan con el calor. Enzimas fluorescentes activadas por radiación UV.

¿Dónde se recomienda ubicar indicadores químicos, según el tema?. Solo en el exterior del paquete, nunca dentro. Solo en el filtro del contenedor rígido. En el exterior (cinta) y también dentro del paquete y/o en zonas de difícil acceso del autoclave. Únicamente en el panel de control del esterilizador.

Respecto al control biológico, el documento afirma que: Es opcional si el control químico viró correctamente. Es el único universalmente aceptado para verificar la eficacia de la esterilización. Se basa en medir únicamente la humedad relativa. Se limita a revisar la integridad del envoltorio.

El control biológico se basa en el uso de: Cintas autoadhesivas con viraje de color. Termómetros de máxima y mínima. Esporas atenuadas en ampollas de vidrio/plástico colocadas en el interior de los paquetes. Detectores ambientales de gases esterilizantes.

Según el tema, las esporas para control biológico incluyen (asociación correcta): B. stearothermophilus para óxido de etileno y B. subtilis para vapor. B. atropheus para vapor y B. stearothermophilus para UV. B. subtilis para radiación gamma y B. stearothermophilus para ozono. B. subtilis (var. niger) o B. atropheus para óxido de etileno; B. stearothermophilus para vapor.

En el caso del óxido de etileno, el documento indica que el control biológico debe emplearse: Una vez al mes. Una vez por turno. En cada ciclo. Solo cuando haya una reparación del equipo.

Para ciclos de vapor, el documento indica el uso de B. stearothermophilus al menos: Una vez por semana. Una vez al trimestre. Una vez al año. Solo si falla un indicador químico.

En la verificación del control biológico, si hay crecimiento al introducir esporas en medio de cultivo, implica: Esterilización correcta sin incidencias. Que el empaquetado fue demasiado poroso. Que el indicador químico era de clase inferior. Posibles defectos del esterilizador y fallo de eficacia del proceso.

Para una conservación adecuada del material estéril, el almacén debe cumplir (según el tema) entre otros: Paredes rugosas para aumentar la ventilación pasiva. Acceso abierto para facilitar la rotación. Paredes lisas sin rugosidades para facilitar limpieza y acceso restringido. Humedad superior al 70% para evitar electrificación.

Las condiciones climáticas ideales citadas para almacenamiento incluyen: Temperatura 10–15 °C y humedad 60–80%. Temperatura 18–30 °C y humedad 20–40%. Temperatura 20–30 °C y humedad 40–50%. Temperatura 15–25 °C y humedad 40–60%.

El documento menciona como criterio de ventilación en el almacén: 2 renovaciones/hora. 4 renovaciones/hora. 6 renovaciones/hora. 12 renovaciones/hora.

Tras el ciclo, antes de almacenar, el tema indica que el material: Debe abrirse para verificar olor y descartar humedad. Debe enfriarse solo si fue óxido de etileno. Debe dejarse enfriar para evitar condensaciones. Debe humedecerse ligeramente para mejorar la conservación.

En el transporte de material estéril a distintos servicios, el texto indica como práctica habitual: Material voluminoso en bolsas de plástico cerradas; pequeño en carros herméticos. Material voluminoso en carros herméticos; material pequeño en bolsas de plástico cerradas. Todo el material en bandejas abiertas para evitar condensación. Todo el material en cajas metálicas sin filtro.

El tema indica que el material estéril que se almacene en plantas debería utilizarse en: 6–12 horas. 12–24 horas. 24–48 horas. 72–96 horas.

En condiciones normales de conservación, la caducidad aceptada para “triple barrera” es: 6 meses. 12 meses. 1 mes. Máximo 3 meses.