VET - Microbiología I

Las formas L son: Bacterias desprovistas de su membrana citoplasmática. Formas propias de una determinad fase del ciclo de diferenciación celular. Formas que adquieren algunas bacterias al crecer en medios con penicilina. Todas las anteriores son correctas.

Los microorganismo auxotrofos: Necesitan una fuente orgánica de carbono. Necesitan factores de crecimiento. Crecen solo en presencia de sustancias inorgánicas. B y C son correctas.

El transporte activo y el mediado por grupos de translocación: Ambos son sistemas de transporte inespecíficos. Ambos intervienen a favor de un gradiente de concentración, en la dirección termodinámicamente mas favorable. Se parecen en que ambos actúan contra un gradiente de concentración. A y B son correctas.

El aceptor último de electrones en la respiración anaerobia es: Un compuesto inorgánico distinto del oxígeno. Siempre un compuesto orgánico. Siempre el oxígeno. Ninguna es correcta.

Los plásmidos R: Son responsables de la variación S-R. Son plásmidos que determinan resistencia a la penicilina, pero no son conjugativos. Determinan la resistencia a antibióticos. A y C son correctas.

La resistencia cruzada frente a antibióticos es la resistencia: Frente a antibióticos que comparten algún mecanismo de acción. Que adquieren las bacterias a determinados antibióticos, merced a la conjugación. De un animal a ser infectado por dos gérmenes distintos. Todas las anteriores son correctas.

La resistencia a los antibióticos codificada por plásmidos: Obedece al mismo mecanismo de acción que el codificado por genes cromosómicos. Consiste en la codificación de enzimas específicos que alteran el antibiótico haciéndolo ineficaz. Difiere de la codificada por genes cromosómicos en que lo que se altera es el blanco o lugar de acción del antibiótico sobre la célula. A y C son correctas.

Para considerar a un microorganismo como patógeno: Es indispensable que se transmita con facilidad y que se desarrolle en el organismo superior. Solo en necesario que sea capaz de producir enfermedad. Es necesario que produzca toxinas. B y C son correctas.

DL50 ​​​​​​es: Una medida de la virulencia de un microorganismo. La temperatura a la que se destruye el 50% de las bacterias de un cultivo. El número de bacterias que sobreviven a un tratamiento esterilizante. Todas las anteriores son ciertas.

El "esqueleto" o "armazón" del peptidoglucano contiene: Alanina. N-acetilglucosamina. L-Lisina. Glucosa.

Las bacterias Gram positivas difieren de las Gram negativas en: Grosor de la pared. La posesión de cápsula. La motilidad. Todas las anteriores.

Los protoplastos se diferencian de la bacteria de origen en: Su capacidad biosintética. La estructura de su ADN. La forma, cuando son capaces de dividirse. No pueden diferenciarse.

Las bacterias lofótricas son las que: Carecen de flagelos. Poseen un penacho de flagelos en un extremo. Tienen flagelos distribuidos por toda la superficie celular. Poseen un penacho de flagelos en ambos extremos.

El ADN bacteriano: Es una molécula bicatenaria circular, unida a la membrana citoplasmática en el momento de su división. Se encuentra unido a ribosomas. Se encuentra unido a proteínas básicas semejantes a las histonas de los eucariotas. Todas las anteriores son correctas.

El esporo es una estructura: Muy sensible a los choques osmóticos. Propia sólo de algunas bacterias. Muy resistente la temperatura, producida por todas las bacterias. Todas las anteriores son ciertas.

La cápsula es importante, sobre todo: Por ser una estructura que protege a la bacteria frente a la desecación. Como órgano de virulencia para las bacterias patógenas capsuladas. Por su papel como órgano productor de enzimas. Todas las anteriores son ciertas.

Tiempo de generación es: La vida media de una bacteria o población bacteriana. El necesario para que una población bacteriana se duplique. El necesario para que una población bacteriana llegue al máximo crecimiento. El necesario para que una población bacteriana inicie el 25% de crecimiento.

El número de células de una especie bacteriana en un cultivo en un momento determinado, es función de. El estado físico del medio (líquido o sólido). El tiempo transcurrido desde la siembra. La modalidad de siembra. Todas las anteriores son ciertas.

Una mutante de E. coli necesita timina para su crecimiento. Las bacterias se cultivan en un medio con poca timina. Si estas bacterias se siembran después en un medio rico en timina, se produce: Crecimiento logarítmico continuo. División sincrónica de la población. Ausencia de crecimiento, ya que las bacterias han muerto en el cultivo anterior. Ninguna de las anteriores es correcta.

Las formas de involución son: Las que se producen como consecuencia de un choque osmótico. Formas que presentan algunas bacterias al ser tratadas con lisozima. Formas que se presentan en cultivos viejos, son degenerativas. Ninguna es correcta.

¿Cuál de las siguientes características define mejor a las formas L bacterianas?: Carecen de membrana citoplasmática. Presentan una pared celular engrosada. Carecen total o parcialmente de pared celular. Son formas bacterianas exclusivamente reproductivas.

Una bacteria auxótrofa para un aminoácido: Puede sintetizarlo en cualquier medio. Necesita que dicho aminoácido esté presente en el medio. No necesita fuente de carbono. Es incapaz de reproducirse.

¿Qué característica diferencia principalmente el transporte mediante translocación de grupos del transporte activo clásico?. No requiere proteínas transportadoras. La sustancia transportada se modifica químicamente durante el transporte. Siempre ocurre a favor del gradiente. No requiere energía metabólica.

Los plásmidos R pueden: Codificar exclusivamente la formación de cápsulas. Conferir resistencia a uno o varios antibióticos. Sustituir al cromosoma bacteriano en todas las bacterias. Impedir cualquier transferencia genética.

La resistencia cruzada aparece cuando: Una bacteria adquiere resistencia mediante conjugación. Un mecanismo de resistencia confiere protección frente a varios antibióticos. Dos bacterias diferentes infectan al mismo hospedador. Una bacteria produce resistencia exclusivamente frente a un antibiótico.

¿Cuál de los siguientes mecanismos puede producir resistencia a los antibióticos?. Alteración de la diana del antibiótico. Aumento obligatorio de la cápsula. Pérdida de los ribosomas. Transformación del ADN en ARN.

La DL50 de un microorganismo es: La dosis que destruye el 50 % de un cultivo bacteriano. La dosis capaz de matar al 50 % de una población experimental. El tiempo necesario para reducir la población bacteriana a la mitad. La concentración que inhibe el crecimiento del 50 % de las bacterias.

El peptidoglucano bacteriano está constituido por: Cadenas alternas de NAG y NAM unidas a péptidos. Exclusivamente aminoácidos. Fosfolípidos y proteínas. Cadenas de glucosa y fructosa.

El material genético de la mayoría de las bacterias se localiza en: Un núcleo rodeado de membrana. El nucleoide, sin membrana nuclear. Los ribosomas. La cápsula bacteriana.

¿Cuál de las siguientes bacterias es conocida por formar endosporas?. Escherichia coli. Bacillus subtilis. Neisseria gonorrhoeae. Treponema pallidum.

La cápsula bacteriana favorece la virulencia principalmente porque: Produce ATP. Impide la replicación del ADN. Dificulta la fagocitosis. Destruye directamente los antibióticos.

Una población bacteriana presenta un tiempo de generación de 30 minutos. Partiendo de 100 células, ¿Cuántas habrá tras 2 horas en condiciones ideales?. 400. 800. 1.600. 3.200.

Durante la fase estacionaria del crecimiento bacteriano: Las bacterias dejan de realizar cualquier actividad metabólica. La tasa de división se equilibra aproximadamente con la tasa de muerte. Todas las bacterias mueren simultáneamente. La población se duplica a intervalos constante.

Las formas de involución bacterianas aparecen principalmente: Durante la conjugación. En cultivos envejecidos o bajo condiciones desfavorables. Por la acción exclusiva de la penicilina. Durante la formación de endosporas.

¿Cuál es el paso crítico en la tinción de Gram y por qué?. La fijación, porque permite conservar la estructura bacteriana. La aplicación de cristal violeta, porque determina la clasificación bacteriana. La decoloración, porque permite diferenciar bacterias Gram positivas y Gram negativas. La aplicación de safranina, porque elimina el colorante primario de las bacterias.

¿Para qué se utiliza la tinción de Stamp?. Para identificar bacterias ácido-alcohol resistentes, como las micobacterias. Para identificar Brucella entre otras, mediante su resistencia a la decoloración con ácidos. Para diferenciar bacterias Gram positivas de Gram negativas. Para identificar bacterias que presentan cápsula.

¿Cómo se observa la motilidad bacteriana en fresco?. Mediante una tinción simple, observando las bacterias fijadas al portaobjetos. Mediante una preparación en fresco entre portaobjetos y cubreobjetos o en un porta excavado, observando bacterias refringentes que se desplazan. Mediante una tinción argéntica, observando bacterias de color marrón oscuro o negro. Mediante fijación por calor y posterior tinción con azul de metileno.

¿Qué característica permite identificar la motilidad bacteriana en una preparación en fresco?. La presencia de bacterias agrupadas y teñidas de azul. La aparición de bacterias inmóviles con contornos oscuros. El desplazamiento activo de las bacterias, que puede observarse con movimientos en zigzag. La aparición de bacterias adheridas permanentemente al portaobjetos.

¿Cómo se prepara una extensión bacteriana cuando se parte de un cultivo sólido?. Se añade directamente el colorante sobre la colonia sin realizar ninguna preparación. Se deposita una gota de solución salina sobre el portaobjetos y se suspende en ella una pequeña cantidad de la colonia con el asa. Se introduce el portaobjetos directamente en el cultivo y se deja secar. Se mezcla la colonia con azul de metileno antes de colocarla sobre el portaobjetos.

¿Cuál es la finalidad de la fijación por calor en la preparación de una extensión bacteriana?. Favorecer la multiplicación bacteriana antes de la tinción. Permitir que las bacterias recuperen su movilidad. Matar los microorganismos y fijarlos al vidrio para facilitar su posterior tinción. Aumentar la permeabilidad de la membrana para permitir la reproducción bacteriana.

¿Qué aspecto presenta una preparación bacteriana después de una tinción simple con azul de metileno?. Las bacterias aparecen de color rojo y dispersas. Las bacterias aparecen agrupadas y teñidas de azul. Toda la preparación aparece de color marrón oscuro o negro. Las bacterias aparecen incoloras sobre un fondo oscuro.

¿Qué aspecto presenta una preparación bacteriana sometida a una tinción argéntica?. Las bacterias aparecen teñidas de azul intenso. Las bacterias aparecen de color rosa sobre un fondo verde. Las bacterias aparecen transparentes y refringentes. Toda la preparación aparece de color marrón oscuro o negro.

¿Cuándo se utiliza la esterilización mediante vapor fluente?. Cuando el medio de cultivo puede soportar temperaturas superiores a 120 °C sin alterar sus propiedades. Cuando el medio de cultivo no puede someterse a temperaturas superiores a 100 °C sin perder alguna de sus propiedades. Cuando se necesita esterilizar un medio mediante calor seco a temperaturas elevadas. Cuando se pretende esterilizar un medio utilizando vapor a presión superior a la atmosférica.

¿Qué dispositivo se utiliza para realizar la esterilización mediante vapor fluente?. Un autoclave convencional de alta presión. Una estufa de esterilización por calor seco. Un autoclave de presión atmosférica. Un horno de Pasteur.

¿Qué factores deben tenerse en cuenta para interpretar correctamente un antibiograma?. Únicamente la concentración inicial del antibiótico y la temperatura de incubación. La concentración inicial del antibiótico, su solubilidad, su capacidad de difusión en el agar y la ausencia de contaminación externa. Exclusivamente el diámetro del halo de inhibición, independientemente de las características del antibiótico. La solubilidad del antibiótico y el tipo de bacteria, sin que las condiciones de esterilidad influyan en el resultado.

¿Por qué es importante evitar la contaminación externa durante la realización de un antibiograma?. Porque puede aumentar artificialmente la concentración del antibiótico. Porque impide que el antibiótico se difunda por el agar. Porque la presencia de microorganismos contaminantes puede alterar los resultados y hacer que el antibiograma no sea válido. Porque provoca que todos los microorganismos aparezcan como resistentes.

¿Qué indica la ausencia de coloración en la prueba de reducción de nitratos tras añadir los reactivos A y B?. Que la bacteria carece de enzimas reductoras y, por tanto, no puede reducir los nitratos. Que los nitratos se han reducido completamente a nitritos, dando lugar a una reacción negativa. Que es necesario añadir zinc para comprobar si todavía quedan nitratos sin reducir o si estos ya se han reducido a productos posteriores, como nitrógeno molecular. Que la bacteria ha reducido los nitratos a nitritos y la reacción debe considerarse inmediatamente positiva.

¿Qué indica la aparición de color rojo tras añadir zinc en una prueba de reducción de nitratos que previamente no había mostrado coloración?. Que la bacteria ha reducido los nitratos a nitrógeno molecular. Que todavía había nitratos sin reducir y el zinc los ha reducido químicamente a nitritos, indicando que la bacteria no había reducido los nitratos. Que la bacteria ha reducido los nitritos a amonio. Que la bacteria posee necesariamente nitrato reductasa.

¿Qué interpretación tiene la ausencia de coloración incluso después de añadir zinc?. Que la bacteria no ha realizado ninguna reacción metabólica. Que los nitratos siguen presentes, pero no pueden reaccionar con el zinc. Que los nitratos ya se han reducido más allá de nitritos, por lo que la reacción se considera positiva para la reducción de nitratos. Que la prueba es necesariamente inválida.

¿Por qué se utiliza un tubo testigo en la prueba de la descarboxilasa?. Para comprobar si la bacteria es capaz de producir gas durante la fermentación de la glucosa. Para comprobar la acidificación del medio debida al metabolismo de la glucosa y utilizarla como referencia para interpretar la reacción de descarboxilación. Para demostrar que la bacteria produce enzimas capaces de hidrolizar el aminoácido. Para comprobar si la bacteria puede crecer en ausencia de oxígeno.

¿Qué es un medio de cultivo enriquecido?. Un medio que contiene exclusivamente sustancias inorgánicas para favorecer el crecimiento de bacterias autótrofas. Un medio al que se añaden nutrientes adicionales para favorecer el crecimiento de microorganismos exigentes desde el punto de vista nutricional. Un medio que contiene sustancias inhibidoras para impedir el crecimiento de microorganismos no deseados. Un medio que permite diferenciar microorganismos según sus características metabólicas mediante cambios de color.

¿Qué efecto produce una bacteria productora de H₂S en un medio SIM?. Produce un cambio de color a rojo debido a la formación de compuestos alcalinos. Produce un precipitado blanco por la reacción del H₂S con el hierro del medio. Produce un precipitado negro debido a la formación de sulfuro ferroso (FeS), indicando un resultado positivo para la producción de H₂S. Produce una coloración amarilla debido a la fermentación de los aminoácidos.

Se obtiene un recuento de 75 colonias bacterianas en una placa sembrada con 0,1 mL de una dilución 1:100. ¿Cuál es la concentración bacteriana original expresada en UFC/mL?. 750 UFC/mL. 7.500 UFC/mL. 75.000 UFC/mL. 750.000 UFC/mL.

En la prueba de fermentación de azúcares: El medio (sustrato) es agua de peptona con el azúcar a investigar. En la reacción o encima utilizaremos glucosa, lactosa y sacarosa (un tubo por azúcar). Si es de color amarillo y con gas en la campana es capaz de fermentar ese azúcar con producción de ácido y gas. Todas las anteriores son ciertas.

¿Cuál de las siguientes pruebas necesita un tiempo y un período de incubación de 24h a 37º?. Fermentación de azúcares. Reacción de Hugh-Leifson. Rojo de metilo. Todas las anteriores.

¿Cuál de las siguientes pruebas necesita un tiempo y un período de incubación de 24h a 37º?. Voges Proskauer. Hidrolisis Almidón. Producción de sulfhídrico a partir de AA azufrados. Todas las anteriores.

La prueba de ONPG: Su medio es caldo ONPG (solución de O-nitrofenil-β-D-galactopiranosido) en tampón fosfato pH=7) al 25% en agua de peptona. La reacción o enzima es fermentador tardío de la lactosa. Solo se realiza en bacterias sospechosas de no tener la galactósido permeasa. La técnica de siembra se suspende en solución salina estéril añadiendo ONPG. Todas las anteriores son ciertas.

El tiempo y temperatura de incubación en la prueba ONPG es: 24h - 37º. 30 minutos. 48h - 37º. 18h - 37º.

En la interpretación de la prueba ONPG: Si el color es amarillo es positivo a la fermentación de la lactosa. Si el color no cambia entonces es negativo a la fermentación de la lactosa. Si es de color amarillo y con gas en la campana es capaz de fermentar la lactosa con producción de ácido y gas. Si es de color amarillo y sin gas en la campana es capaz de fermentar la lactosa con producción de ácido. Si el color cambia a rojo tras la adicción del Rojo de Metilo: positivo (utiliza la vía ácido- mixta en la fermentación de la glucosa) Si no hay cambio de color es negativo. Si hay cambio a color rosado/rojo tras la adicción del reactivo de Barrit y esperar diez minutos con agitación a intervalos: positivo (utiliza la vía butilenglicólica en la fermentación de la glucosa). Si no hay cambio de color es negativo.

Si en el tubo abierto el color es amarillo y en el cerrado también es amarillo es positivo a la fermentación y también a la oxidación (metabolismo fermentativo) es Facultativo. Si en el tubo abierto es amarillo y en el cerrado es azul es positivo a la oxidación pero negativo a la fermentación (metabolismo respiratorio) es Aerobio estricto. Si hay acidificación (amarillo) en el tubo con parafina es positivo a la fermentación y negativo a la oxidación. Es anaerobio estricto (fermentativo). Esta interpretación corresponde con la prueba: Voges Proskauer. Rojo metilo. Reacción de Hugh-Leifson. Hidrolisis de almidón.

El medio caldo glucosa-fosfato (Medio de Clark y Lubs o medio RM/VP), se utiliza para la prueba: Rojo de Metilo. Voges Proskauer. El medio de Kligler. A y B son correctas.

En la prueba de Reacción de Hugh-Leifson, indica la correcta: Dos tubos con medio glucosado semisólido. Uno con parafina (anaerobiosis) y otro sin parafina (aerobiosis). Indicador de pH azul de bromotimol (azul a pH básico y amarillo a pH ácido). La reacción o enzima presenta metabolismo oxidativo/fermentativo. Relación con el Oxígeno. La técnica de siembre se basa en la picadura en ambos tubos, no tocando la capa de parafina. Todas las anteriores son ciertas.

En la prueba Voges Proskauer, señala la correcta: La forma acetilada de la acetoina (que es precursora del 2,3-butilen glicol por la fermentación de la glucosa) se oxida y pasa a diacetilo, que es roja, en presencia de O2 atmosférico y ambiente alcalino. Reactivo de Barrit: Solución de α- naftol 5% en etanol KOH 40 % en agua. Se añade y se lee tras solo 10 min. Potencia el color rojo de la diacetilo. La técnica de siembra es agitación del inóculo en el caldo. Todas las anteriores son ciertas.

La interpretación si observamos halos es positivo • Si son transparentes= actividad de la β- amilasa (total) • Si hay halos pero de color pardo-rojizo= actividad de la α-amilasa ( parcial). Si no hay halos es negativo, corresponde con la prueba: Hidrólisis almidón. El medio Kligler. Decarboxilación de AA por acción de las decarboxilas. Oxidasa.

¿Cuál es el medio y el reactivo en la prueba de hidrólisis de almidón?. Agar almidón - Lugol. Agar almidón - reactivo de Barrit. Caldo glucosa-fosfato - Lugol. Caldo glucosa-fosfato - reactivo de Barrit.

La prueba del medio de Kligler investiga la capacidad de: Fermentar la glucosa. Fermentar la lactosa. Producción de H2S. Todas son correctas.

En el medio de Kligler: Es importante no superar las 24h de incubación. Es necesario más de 24h de incubación. La incubación son 30 minutos. No necesita incubación.

La decarboxilación de AA por acción de las decarboxilas (enterobacterias) utiliza el medio: Falkov sin peptona. Agua de peptona. Agar doble azúcar hierro (glucosa y lactosa como fuente de carbono y peptonas como fuente de nitrógeno + sulfato ferroso). Rojo fenol (indicador de color). Agar urea de Christensen.

La producción de indol a partir del triptófano utiliza el medio: Falkov sin peptona. Agua de peptona. Agar doble azúcar hierro (glucosa y lactosa como fuente de carbono y peptonas como fuente de nitrógeno + sulfato ferroso). Rojo fenol (indicador de color). Agar urea de Christensen.

El medio Kligler utiliza el medio: Falkov sin peptona. Agua de peptona. Agar doble azúcar hierro (glucosa y lactosa como fuente de carbono y peptonas como fuente de nitrógeno + sulfato ferroso). Rojo fenol (indicador de color). Agar urea de Christensen.

La utilización de la urea como fuente de N: Se siembra en picadura. Utiliza agar urea de Christensen. Sin añadir reactivo, si el medio cambia de color a un rojo-violeta-rosa es positivo, si el medio no cambia de color es negativo. Todas las anteriores son ciertas.

¿Qué prueba se siembra con la técnica estría por agotamiento?. Fenil alanina desaminasa. Licuación de la gelatina. Oxidasa. Capacidad de producir coagulasa.

El reactivo de Griess-Ilosvay se utiliza en la prueba: Capacidad reductora sobre los Nitratos. Utilización de la urea como fuente de N. Utilización de Citrato como fuente de C. Capacidad de producir Coagulasa.

La capacidad de producir coagulasa utiliza el reactivo: NH3 al 28-30%. HCl 1N. Agua oxigenada al 30%. Cloruro férrico al 10%.

La capacidad de producir DNasa utiliza el reactivo: NH3 al 28-30%. HCl 1N. Agua oxigenada al 30%. Cloruro férrico al 10%.

La capacidad de producir catalasa utiliza el reactivo: NH3 al 28-30%. HCl 1N. Agua oxigenada al 30%. Cloruro férrico al 10%.

Fenil alanina desaminasa utiliza el reactivo: NH3 al 28-30%. HCl 1N. Agua oxigenada al 30%. Cloruro férrico al 10%.

En el medio SIM, ¿Qué resultado muestra que es inmóvil?. SH2 negativo - Indol positivo. SH2 negativo - Indol negativo. SH2 positivo - Indol positivo. SH2 positivo - Indol negativo.